ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Современные возможности терапии тяжелых инфекций: сульперазон (цефоперазон/сульбактам) и его роль в преодолении резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций

Д.В. Галкин, Р.С. Козлов

Современные возможности терапии тяжелых инфекций: цефоперазон/сульбактам и его роль в преодолении резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций
Цефоперазон/сульбактам является единственной в своем роде комбинацией цефалоспорина III поколения цефоперазона с ингибитором бета-лактамаз сульбактамом и, по данным современных российских исследований, сохраняет свою активность в отношении большинства нозокомиальных грамотрицательных возбудителей, характеризующихся высоким уровнем резистентности. Широкий спектр действия, охватывающий многие аэробные и анаэробные микроорганизмы, накопленный опыт клинического применения у взрослых и в педиатрии при инфекциях нижних отделов дыхательных путей, хирургических инфекциях, а также у пациентов с нейтропенической лихорадкой и сепсисом позволяют использовать цефоперазон/сульбактам в качестве препарата эмпирической монотерапии при тяжелых инфекциях в стационаре.

Введение

Распространение резистентных к большинству применяющихся антибактериальных препаратов (АБП) нозокомиальных штаммов грамотрицательных и грамположительных возбудителей, приводящее к высокой летальности и значительному увеличению затрат на терапию инфекций, представляет серьезную проблему для современного здравоохранения. Цефалоспорины (ЦС) завоевали широкую популярность в клинической практике вследствие хорошей эффективности и низкой токсичности. Однако их применение является одним из независимых факторов риска селекции грамотрицательных бактерий, продуцирующих бета–лактамазы расширенного спектра (БЛРС), в отношении которых не активны все ЦС, а также пенициллины и монобактамы. Цефоперазон/сульбактам – уникальная комбинация ЦС III поколения цефоперазона с ингибитором бета–лактамаз сульбактамом остается единственным ингибиторозащищенным бета–лактамным антибиотиком, сохраняющим активность в отношении БЛРС–продуцирующих штаммов [1, 6, 23]. Первоначально считалось, что применение комбинаций бета–лактамов с ингибиторами бета–лактамаз позволит расширить спектр активности первых только в отношении штаммов, вырабатывающих бета–лактамазы, однако в дальнейшем была выявлена их способность подавлять рост Bacteroides spp., Acinetobacter spp. и Neisseria spp. [2]. Связывание сульбактама с пенициллинсвязывающими белками 2 типа (ПСБ2) грамотрицательных бактерий приводит к увеличению антибактериальной активности комбинации [3, 4].

Роль бета–лактамаз в формировании резистентности нозокомиальных возбудителей

Известны пять основных механизмов формирования резистентности к бета–лактамам: ферментативная инактивация, снижение проницаемости клеточной стенки, активное выведение из микробной клетки (эффлюкс), модификация мишени и механизм “обходного пути”; при этом ведущим у грамотрицательных бактерий является первый [5, 7].

С момента открытия бета–лактамаз в 1940 г. до настоящего времени выявлено не менее 300 ферментов, отличающихся структурно и функционально по субстратному профилю, локализации кодирующих генов (плазмидная или хромосомная) и характеру их экспрессии (конститутивный или индуцибельный), а также по чувствительности к применяющимся в клинической практике ингибиторам: клавулановой кислоте, сульбактаму и тазобактаму [5, 6, 23]. Несмотря на большое количество различных бета–лактамаз, механизм действия у них сходный: инактивация антибиотика в результате гидролиза одной из связей бета–лактамного кольца.

В современной классификации бета–лактамазы разделены на три основные группы с учетом функциональных свойств и молекулярной структуры [8, 9]. Типы и распространенность бета–лактамаз значительно варьируют у разных микроорганизмов (табл. 1).

Особую клиническую проблему в России и за ее пределами представляет увеличение резистентности грамотрицательных нозокомиальных возбудителей, преимущественно энтеробактерий, к  бета–лактамам, обусловленной продукцией БЛРС. Частота инфекций, вызваемых БЛРС–продуцирующими бактериями, за последние 20 лет значительно возросла [23]. Важно то, что продукция БЛРС отмечается не только у многих видов семейства Enterobacteriaceae, но и у представителей других групп, например у Haemophilus spp., Neisseria spp., Pseudomonas spp., Acinetobacter spp. и Vibrio spp. [10–12]. Эти ферменты способны расщеплять практически все современные ЦС, а также другие бета–лактамы (кроме карбапенемов и цефамицинов).

В настоящее время БЛРС широко распространены практически во всех странах мира, их встречаемость составляет от 7 % в США до 45 % в странах Южной Америки, достигая 75 % для нозокомиальных штаммов клебсиелл [13–18]. Клиническое значение также имеет эпидемический характер распространения БЛРС, причем определенные штаммы или ферменты доминируют в масштабах как отдельных стационаров, так и обширных географических регионов [19–21].

За последние годы в России отмечено значительное увеличение частоты встречаемости БЛРС. Так, доля продуцентов БЛРС среди нозокомиальных штаммов Klebsiella pneumoniae достигла 84,3 %, среди штаммов Escherichia coli – 54,7 и 60,9 % – у Proteus mirabilis. В отдельных стационарах Москвы частота выделения БЛРС достигала 90 %. При этом среди БЛРС наблюдается увеличение частоты встречаемости СТХ–М–ферментов, которые по сравнению с “классическими” БЛРС ТЕМ и SHV типов обладают большей гидролитической активностью в отношении многих бета–лактамов, включая ЦС III и IV поколений [22].

Возможности выбора АБП значительно сокращаются также из–за того, что плазмиды c генами, кодирующими БЛРС, часто резистентны к аминогликозидам, ко–тримоксазолу и хинолонам [23–27]. Предрасполагающим фактором к развитию инфекций, вызванных БЛРС–продуцентами и хинолоноустойчивыми штаммами, является также ко–селекция резистентности, связанная с селективным давлением АБП на нозокомиальные штаммы и длительное пребывание в стационарах [28, 29].

Принимая во внимание способность БЛРС–продуцирующих бактерий инактивировать большинство бета–лактамов, в настоящее время выбор препаратов для эмпирической антибактериальной терапии (АБТ) тяжелых нозокомиальных инфекций в значительной степени ограничен. Продуценты БЛРС, как правило, чувствительны к ингибиторозащищенным бета–лактамам, карбапенемам и цефамицинам (цефокситин). Однако у этих бактерий могут отсутствовать белки внешней стенки, что приводит к появлению резистентности, не связанной с продукцией бета–лактамаз [30]. Учитывая клиническую необходимость наличия альтернативы карбапенемам, комбинации  бета–лактам/ингибитор бета–лактамаз являются наиболее перспективными для лечения инфекций, вызванных БЛРС–продуцирующими патогенами.

На практике антимикробная активность различных комбинаций бета–лактамов с ингибиторами значительно варьирует. Снижение активности ингибиторозащищенных бета–лактамов может быть обусловлено гиперпродукцией БЛРС или одновременной выработкой нескольких бета–лактамаз [31–33]. Исследование БЛРС–продуцирующих возбудителей инфекций из 35 отделений реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) в Европе показало, что резистентность нозокомиальных штаммов к пиперациллину/тазобактаму увеличилась с 31 % в 1994 г. до 63 % в 1997–1998 гг. [34]. Поэтому крайне важными для выбора эмпирической АБТ наряду со сведениями о распространенности БЛРС–продуцентов в масштабах региона являются локальные данные о резистентности.

Среди существующих на сегодняшний день ингибиторозащищенных бета–лактамов цефоперазон/сульбактам потенциально обладает наибольшей активностью в отношении БЛРС–продуцирующих штаммов, поскольку цефоперазон более стабилен к действию бета–лактамаз класса А по сравнению с полусинтетическими пенициллинами (ампициллин, амоксициллин и др.) [35].

Механизм действия и спектр активности цефоперазона/сульбактама

Цефоперазон/сульбактам – комбинация цефоперазона с сульбактамом в соотношении 1 : 1 является в настоящее время единственным ингибиторозащищенным ЦС. Цефоперазон, открытый в 1978 г. [36], является полусинтетическим ЦС III поколения, сульбактам – конкурентный необратимый ингибитор бета–лактамаз, представляющий собой полусинтетический сульфон пенициллановой кислоты [37].

Ингибитор вступает в необратимую связь с бета–лактамазой, что приводит к ацилированию и последующему гидролизу образовавшегося комплекса, позволяя основному компоненту комбинации достичь своей мишени в бактериальной клетке. Сульбактам полностью нарушает способность бета–лактамаз взаимодействовать с бета–лактамами.

Сульбактам также потенцирует бактерицидную активность бета–лактамов в отношении грамотрицательных бактерий, действуя на ПСБ2. Это свойство наряду с характерной для большинства пенициллинов и ЦС активностью в отношении ПСБ1 и ПСБ3 обеспечивает более быстрый бактерицидный эффект цефоперазона/сульбактама [7, 40].

Имеются убедительные данные, что цефоперазон/сульбактам не только высокоактивен в отношении продуцентов бета–лактамаз, но оказывает эффект, сравнимый с цефоперазоном, в отношении грамотрицательной и грамположительной флоры, не продуцирующей эти ферменты. Добавление сульбактама значительно расширяет антимикробный спектр в отношении штаммов, резистентных к цефоперазону, включая Enterobacter spp., Serratia marcescens, Acinetobacter spp. и Bacteroides fragilis [38].

При изучении 220 клинических штаммов Enterobacteriaceae было установлено, что при добавлении сульбактама в концентрации 2 мг/л количество чувствительных in vitro к цефоперазону штаммов увеличилось с 95 до 99,5 %. Количество чувствительных штаммов B. fragilis при добавлении сульбактама увеличилось с 53 до 100 %. Добавление сульбактама (1 мг/л) к цефоперазону позволило снизить МПК90 для пенициллинорезистентных S. aureus и Staphylococcus epidermidis в 2 и 4 раза соответственно [39].

В ряде последующих исследований синергизм цефоперазона и сульбактама также был подтвержден. Эта комбинация усиливала эффект цефоперазона в отношении 80 % из 948 штаммов Enterobacterаiaceae и обладала более высокой активностью в сравнении с цефотаксимом, цефтазидимом и азтреонамом, уступая только имипенему [38].

Сравнительные результаты активности цефоперазона и цефоперазона/сульбактама, полученные в ряде исследований, представлены в табл. 2.

Грамположительные аэробы

В отношении этих микроорганизмов цефоперазон/сульбактам оказывает действие, аналогичное или несколько превосходящее таковое цефоперазона. Более выраженный антибактериальный эффект цефоперазона/сульбактама в сравнении с цефоперазоном проявляется в отношении пенициллинорезистентных патогенов [38, 39]. В исследовании 578 штаммов стафилококков (включая 414 штаммов S. aureus) из 40 медицинских центров США цефоперазон/сульбактам был высокоактивен в отношении штаммов, чувствительных к оксациллину (83 %), однако, как и все бета–лактамы, не действовал на метициллинорезистентные стафилококки [42]. Добавление сульбактама не влияло на МПК90 цефоперазона для штаммов, не продуцирующих бета–лактамазы, а также Streptococcus spp., но цефоперазон/сульбактам был более активен in vitro в отношении этих микроорганизмов по сравнению с тикарциллином/клавуланатом, цефтазидимом и др. [39].

Грамотрицательные аэробы

Комбинация цефоперазона с сульбактамом in vitro обладает в отношении многих представителей этого класса более высокой активностью, чем каждый из компонентов в отдельности [41]. Исследования в России и за рубежом свидетельствуют о сохранении высокой активности цефоперазона/сульбактама в отношении основных возбудителей нозокомиальных грамотрицательных инфекций.

При изучении 3905 штаммов неферментирующих бактерий активность цефоперазона/сульбактама в отношении Pseudomonas aeruginosa была ниже только в сравнении с карбапенемами (67 и 81 % чувствительных штаммов соответственно). В отношении Acinetobacter spp., Alcaligenes spp., Burkholderia spp. он не уступал карбапенемам и превосходил их по активности против Stenotrophomonas maltophilia и Flavobacterium spp. В целом из всех исследованных штаммов 70 % были чувствительны к цефоперазону/сульбактаму, а уровень резистентности к препарату не превысил 11 % [46].

При анализе результатов определения чувствительности 9004 клинических БЛРС–продуцирующих штаммов грамотрицательных возбудителей в Индии цефоперазон/сульбактам был активен в отношении 76 % штаммов, несколько уступая пиперациллину/тазобактаму (81 %) [47]. В то же время, по данным мониторинга резистентности 420 нозокомиальных штаммов K. pneumoniae в ОРИТ России, цефоперазон/сульбактам превосходил по активности пиперациллин/тазобактам (30 и 42 % резистентных штаммов соответственно) [48]. Согласно данным других российских исследователей, у онкологических пациентов с тяжелыми инфекциями к цефоперазону/сульбактаму чувствительны 67 % штаммов P. aeruginosa, 78, 84 и 86 % штаммов, Proteus vulgaris и E. coli соответственно и 72–100 % штаммов Enterobacteriaceae, выделенных в ОРИТ у пациентов с инфекциями нижних дыхательных путей, раневыми инфекциями и бактериемией, уступая по активности только карбапенемам. Цефоперазон/сульбактам был наиболее активен в отношении A. baumannii [49, 50]. В исследовании ИРИС у пациентов с сепсисом в многопрофильных стационарах России наиболее активными АБП в отношении преобладающей группы возбудителей (Enterobacteriaceae – 37 % штаммов) были имипенем, цефоперазон/сульбактам и ципрофлоксацин, резистентность к которым составила 2, 7 и 9 % соответственно [51].

С учетом тенденции к увеличению количества нозокомиальных инфекций, вызванных A. baumannii, и высокого уровня (20–75 %) ассоциированной летальности важно помнить о преимущественной и стабильной активности цефоперазона/сульбактама в отношении этого возбудителя [52–54]. При сравнении активности бета–лактамов широкого спектра в отношении штаммов A. baumannii, выделенных в 1998–1999 гг. в Японии, чувствительность возбудителей к цефоперазону/сульбактаму оказалась наиболее высокой без тенденции к снижению [55]. Чувствительность 115 множественно резистентных клинических штаммов A. baumannii из разных стран Европы и США к цефоперазону/сульбактаму составила 83 % и была выше, чем у всех сравниваемых ингибиторозащищенных бета–лактамов [56].

Общие тенденции активности цефоперазона/сульбактама против наиболее значимых нозокомиальных возбудителей в различных регионах мира представлены в табл. 3.

Одной из принципиально значимых является возможность использования цефоперазона/сульбактама при выявлении БЛРС–продуцирующих грамотрицательных возбудителей, что подтверждается результатами исследования, проведенного в НИИ антимикробной химиотерапии (Смоленск). Было изучено 542 БЛРС–продуцента семейства Enterobacteriaceae: E. сoli (148 штаммов), K. рneumoniae (346), P. mirabilis (50). Из них 242 штамма (46 E. coli, 160 K. pneumoniae и 36 P. mirabilis) выделены от пациентов ОРИТ 23 российских стационаров в 1997–1998 гг., а 300 штаммов (100 E. coli, 186 K. pneumoniae и 14 P. mirabilis) – в ОРИТ 21 стационара различных регионов России в 2003 г. Следует отметить наиболее высокую in vitro активность цефоперазона/сульбактама по сравнению с другими комбинациями бета–лактам/ингибитор бета–лактамаз. Более 90 % всех продуцентов БЛРС, выделенных в 1997–1998 гг., были чувствительны к этой комбинации. В 2003 г. цефоперазон/сульбактам по–прежнему обладал наибольшей активностью среди всех ингибиторозащищенных бета–лактамов, однако доля чувствительных БЛРС–продуцирующих штаммов снизилась до 70,3 %. При анализе ко–резистентности оказалось, что большинство штаммов, устойчивых к амоксициллину/клавуланату, пиперациллину/тазобактаму и цефепиму, сохраняли чувствительность к цефоперазону/сульбактаму – 16,5, 30,4 и 12,7 % соответственно [22]. Результаты данного исследования по чувствительности БЛРС–продуцирующих штаммов энтеробактерий к некоторым АБП представлены в табл. 4.

Приведенные данные свидетельствуют не только о сохраняющейся высокой активности цефоперазона/сульбактама, но и о том, что уровень резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций различается в масштабах стационара или страны. Кроме того, он изменяется с течением времени и для выбора адекватной АБТ необходимо располагать локальными данными о чувствительности микроорганизмов к применяющимся препаратам.

Анаэробы

Добавление сульбактама к цефоперазону значительно расширяет спектр активности в отношении анаэробной флоры [39, 57]. Из 310 изученных анаэробных бактерий к цефоперазону/сульбактаму in vitro были чувствительны 100 % штаммов B. fragilis и Fusobacterium spp. Наряду с этим была продемонстрирована высокая активность препарата в отношении других анаэробов (Bacteroides spp., Clostridium perfringens, Peptostreptococcus spp.) [58]. В исследовании 394 анаэробов 95 % штаммов группы B. fragilis были чувствительны к цефоперазону/сульбактаму, а его активность в отношении продуцирующих бета–лактамазы штаммов Fusobacterium spp. оказалась 97 %. Все штаммы, не продуцирующие бета–лактамазы, были чувствительны к цефоперазону/сульбактаму [59]. По данным более поздних исследований, МПК90 цефоперазона/сульбактама были значительно ниже по сравнению с цефоперазоном в отношении 91 штамма множественно резистентных B. fragilis, а его активность in vitro была сравнима с имипенемом [60]. При тестировании Bacteroides spp. (23 штамма), Fusobacterium spp. (7), Porphyromonas spp. и Veilonella spp. (по 4), выделенных в стационарах Смоленска от пациентов с инфекциями различной локализации, цефоперазон/сульбактам, карбапенемы и метронидазол были наиболее активны в отношении > 99 % штаммов [61].

Фармакокинетика

В исследовании у здоровых добровольцев цефоперазон и сульбактам назначались каждые 12 часов путем внутривенной 15–минутной инфузии 75 мл раствора в течение 7 дней. Сывороточные концентрации каждого из препаратов были пропорциональны вводимой дозе, а их накопления при многократном введении не отмечалось. Значения основных фармакокинетических (ФК) параметров через 7 дней после инфузий цефоперазона и сульбактама представлены в табл. 5.

Исследование показало, что при назначении цефоперазона и сульбактама в комбинации ФК профиль не отличается от параметров, полученных при изолированном назначении каждого из компонентов. Небольшим (на 10 %), но статистически значимым является снижение почечного клиренса сульбактама при назначении его в комбинации, что приводит к снижению общего клиренса [62].

При сравнении ФК препарата в соотношении 2 : 1 у пяти групп пациентов с различными уровнями клиренса креатинина (КК) и у пациентов с терминальной стадией хронической почечной недостаточности, находящихся на гемодиализе, оказалось, что КК практически не изменялся в изучаемых группах только для сульбактама. Это обусловлено преимущественным метаболизмом цефоперазона в печени и выведением сульбактама почками, что диктует необходимость коррекции дозы цефоперазона/сульбактама у пациентов с КК < 30 мл/мин [63].

У детей основные ФК параметры незначительно отличаются от таковых у взрослых [64]. У пожилых пациентов отмечено увеличение Т½, снижение клиренса и больший объем распределения цефоперазона/сульбактама; ФК цефоперазона и сульбактама изменялась при сопутствующем нарушении функции печени и почек [65].

Цефоперазон/сульбактам хорошо распределяется в тканях и жидкостях организма, включая желчь, желчный пузырь, кожу, червеобразный отросток, фаллопиевые трубы, яичники и матку (табл. 6). Вследствие хорошего проникновения наиболее обоснованным является применение цефоперазона/сульбактама при инфекциях желчевыводящих путей, интраабдоминальных инфекциях, инфекциях органов малого таза.

Клиническое применение

Инфекции дыхательных путей

В проспективном исследовании цефоперазон/сульбактам по клинической эффективности при инфекциях нижних дыхательных путей (94 %) был сравним с имипенемом, бактериологическую эрадикацию в обеих группах пациентов регистрировали с одинаковой частотой (92 %) [68]. В другом исследовании клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама при пневмонии и абсцессе легкого составила 93 % [69]. При лечении нозокомиальной пневмонии, вызванной преимущественно P. aeruginosa, клиническую эффективность препарата наблюдали у 71 % пациентов [70]. По сводным данным, положительный клинический эффект отмечен у 76 % взрослых пациентов с инфекциями дыхательных путей [71]. При анализе нескольких несравнительных исследований применения цефоперазона/сульбактама у детей с тяжелыми инфекциями верхних и нижних отделов дыхательных путей в Японии эффективность составила 72–99 % [72]. По данным отечественных исследователей, эффективность монотерапии цефоперазоном/сульбактамом при лечении пациентов с гнойно–деструктивными заболеваниями легких достигала 91 % [73].

Интраабдоминальные инфекции

Благоприятный исход при лечении инфекций брюшной полости зачастую зависит от адекватного хирургического устранения источника инфекции и назначения эффективной АБТ, активной в отношении аэробных и анаэробных возбудителей. Принимая во внимание широкий антимикробный спектр цефоперазона/сульбактама, его применение при инфекциях данной локализации вполне обоснованно. В проспективном сравнительном многоцентровом исследовании в США клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама значительно превосходила режим комбинированной терапии (гентамицин + клиндамицин) – 87 и 62 % соответственно. Бактериологической эрадикации смешанной аэробно–анаэробной флоры удалось добиться у 84 % пациентов, получавших цефоперазон/сульбактам, и лишь у 59 % пациентов, получавших комбинированную терапию [74]. Клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама была выше по сравнению с комбинированной терапией и по результатам другого исследования составила 70 % [75]. В рандомизированном исследовании клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама оказалась сравнима с таковой имипенема – 64 и 74 % соответственно [76].

Гинекологические инфекции

В многоцентровом исследовании цефоперазон/сульбактам назначался пациенткам с эндометритом, аднекситом, инфекциями органов малого таза и наружных половых органов, клиническая эффективность составила 93 % [66]. По данным несравнительного многоцентрового исследования, при гинекологических инфекциях эффективность цефоперазона/сульбактама достигала 84 % [77].

Осложненные инфекции мочевых путей

В одном из исследований цефоперазон/сульбактам сравнивали по эффективности с пиперациллином/тазобактамом у пациентов с осложненными инфекциями мочевых путей. Эффективность пиперациллина/тазобактама составила 86 %, цефоперазона/сульбактама – 74 %; при выделении бета–лактамазопродуцирующих бактерий – 80 и 74 % соответственно. Статистически достоверных различий между двумя режимами терапии не выявлено [78]. В ряде других многоцентровых исследований также была показана эффективность монотерапии цефоперазоном/сульбактамом у данной категории пациентов [66, 79].

Инфекции у пациентов с нейтропенией

У пациентов с нейтропенией ввиду быстрого прогрессирования инфекций, а также отсутствия возможности проведения адекватной дифференциальной диагностики между ранними бактериальными осложнениями и неинфекционными процессами эмпирическую АБТ следует начинать как можно раньше с учетом спектра распространенности и чувствительности к антибиотикам возбудителей в конкретном стационаре. Положительные клинические исходы при лечении цефоперазоном/сульбактамом у этой категории пациентов в нескольких рандомизированных исследованиях позволяют рассматривать его в качестве эффективного режима терапии. В одном из них при сравнении эффективности и безопасности имипенема и цефоперазона/сульбактама в комбинации с ванкомицином для лечения нейтропенической лихорадки у пациентов со злокачественными новообразованиями эффективность обеих комбинаций была одинакова, составив 73 и 74 % соответственно [80]. При сравнении эффективности имипенема и цефоперазона/сульбактама в качестве монотерапии у пациентов с нейтропенической лихорадкой оказалось, что положительного клинического исхода удалось добиться с одинаковой частотой (88 % – цефоперазон/сульбактам, 81 % – имипенем). Частота суперинфекций в обеих группах составила 16 %, но не ассоциировалась с грамотрицательными бактериями – продуцентами бета–лактамаз [81]. У детей с нейтропенией и злокачественными новообразованиями монотерапия цефоперазоном/сульбактамом была столь же эффективна, как и комбинированная терапия пиперациллин + амикацин (94 и 97 % соответственно) [82]. Опубликован ряд других исследований, демонстрирующих эффективность цефоперазона/сульбактама на уровне 80 % и выше при назначении в качестве стартовой монотерапии у пациентов с нейтропенией [83, 84].

Cепсис и другие тяжелые инфекции

Высокая клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама в качестве терапии широкого круга тяжелых инфекций была описана рядом исследователей, в т. ч. отечественных. Так, у онкологических больных с раневой инфекцией, нозокомиальной пневмонией и инфекциями мочевых путей сравнительные результаты лечения цефоперазоном/сульбактамом в монотерапии или в комбинации с аминогликозидами при синегнойной инфекции показали его высокую, на уровне имипенема и цефепима, клиническую эффективность [49]. При ретроспективном анализе эффективности применения цефоперазона/сульбактама в виде монотерапии или в комбинации с другими АБП у кардиохирургических пациентов в трех группах (стартовая эмпирическая терапия, этиотропная терапия и назначение цефоперазона/сульбактама в связи с неэффективностью предшествующей АБТ) положительных результатов лечения удалось добиться в 93, 100 и 73 % случаев соответственно, суммарная клиническая эффективность составила 94 % [85].

Одним из наиболее важных показаний для назначения цефоперазона/сульбактама является сепсис. В многоцентровом проспективном постмаркетинговом исследовании “ИРИС” в 15 многопрофильных стационарах 12 городов России изучали исходы сепсиса и оценивали клиническую и фармакодинамическую эффективность 7–14–дневного курса цефоперазона/сульбактама, назначавшегося в дозе 4–8 г в сутки 127 взрослым пациентам с бактериальным сепсисом без тяжелых нарушений иммунитета. При заключительной оценке эффективности и выживаемости на 28–30–й день наблюдали только 119 (94 %) пациентов, т. к. у семи (5 %) пациентов наступил летальный исход, а один больной выбыл из исследования в связи с развитием нежелательной лекарственной реакции. Клиническая эффективность цефоперазона/сульбактама в отношении пациентов, завершивших участие в исследовании, составила 96 % (77 % – выздоровление, 19 % – улучшение) [51].

Фармакоэкономические исследования цефоперазона/сульбактама в России

Одним из достоинств цефоперазона/сульбактама, рассмотренных выше, является возможность его применения в виде монотерапии при тяжелых бактериальных инфекциях. Несомненно, что наряду с карбапенемами цефоперазон/сульбактам является полноценной альтернативой комбинированным режимам АБТ при лечении инфекций, вызванных аэробно–анаэробными возбудителями. При этом с учетом его более высокой безопасности по сравнению с комбинациями АБП и меньшей стоимости относительно карбапенемов в ряде ситуаций цефоперазон/сульбактам является препаратом выбора для стартовой эмпирической терапии.

В ретроспективном сравнительном исследовании у пациентов с интраабдоминальными инфекциями изучали эффективность, безопасность и экономичность эмпирической терапии цефоперазоном/сульбактамом, карбапенемами и комбинацией цефепим + метронидазол. В целом положительный клинический эффект (выздоровление или улучшение) на уровне 85–88 % отмечался при назначении всех сравниваемых режимов. В то же время стоимость лечения одного больного цефоперазоном/сульбактамом была наименьшей и в целом составила 615 долл. США. Наиболее дорогостоящим было лечение карбапенемами (834–970 долл.), несколько дешевле – цефепимом (785 долл.). Несомненно, результаты этого исследования могут отличаться от данных при инфекциях иной локализации или полученных в других стационарах, однако в целом они подтверждают экономическую целесообразность применения цефоперазона/сульбактама в качестве монотерапии интраабдоминальных инфекций [86].

Профиль безопасности и основные лекарственные взаимодействия

По спектру нежелательных лекарственных реакций (НЛР) цефоперазон/сульбактам не отличается от других ЦС. Возможны аллергические реакции в виде крапивницы, макулопапулезной сыпи, лихорадки, эозинофилии, крайне редко – анафилактический шок. Иногда отмечаются диарея (по сравнению с другими ЦС возникает чаще, т. к. цефоперазон выводится с желчью), тошнота, рвота. Гематологические реакции редки и обратимы: анемия, нейтропения, тромбоцитопения, кровотечения (в основном обусловлены нарушением синтеза протромбина в печени), может наблюдаться положительная проба Кумбса. Незначительно (на 5–10 % от исходного) могут повышаться уровни трансаминаз и щелочной фосфатазы, а также отмечаться гиперкреатининемия, гипербилирубинемия и гипопротромбинемия [87, 88]. По данным мониторинга НЛР цефоперазона/сульбактама при лечении интраабдоминальных инфекций, наиболее часто наблюдали повышение уровня печеночных ферментов [75].

При применении цефоперазона/ сульбактама также имеется риск развития дисульфирамоподобных реакций (из–за увеличения концентрации ацетальдегида) при приеме алкоголя. Как и при применении других ЦС, возможны местные реакции: болезненность, флебиты.

Согласно данным зарубежных исследователей, частота развития НЛР при применении цефоперазона/сульбактама у 1233 пациентов составила 4,3 %, причем в 2,0 % они послужили причиной отмены препарата (в большинстве случаев диарея) [67].

В многоцентровом российском исследовании цефоперазона/сульбактама у пациентов с сепсисом у всех больных, получивших хотя бы одну дозу препарата, проводилась оценка безопасности. Из 127 пациентов, принявших участие в исследовании, у четверых (3,2 %) были зарегистрированы НЛР, по мнению врачей, “вероятно”, связанные с приемом препарата, – онемение языка или губ, сыпь на коже, гематурия, тошнота. У одной (0,8 %) пациентки развитие макрогематурии потребовало отмены препарата, у остальных НЛР разрешились после завершения курса терапии [51].

Коррекция дозы цефоперазона/ сульбактама рекомендуется при выраженной обструкции желчных путей, тяжелой печеночной и почечной недостаточности. Лечение недоношенных новорожденных, беременных и кормящих грудью проводится в том случае, если возможная польза превышает потенциальный риск.

Цефоперазон/сульбактам противопоказан лицам с гиперчувствительностью к компонентам препарата. Как и все другие бета–лактамы, он несовместим с аминогликозидами (комбинированную терапию проводят путем последовательной дробной внутривенной инфузии, в интервале между введением препаратов систему для переливания следует промывать растворителем), раствором Хартмана и 2 %–ным раствором лидокаина гидрохлорида.

Формы выпуска, дозирование

Цефоперазон/сульбактам зарегистрирован в России под торговой маркой Сульперазон® (Pfizer, Турция). Выпускается в виде порошка для приготовления раствора для инъекций (флаконы по 2 г) в соотношении компонентов препарата 1 : 1.

Доза у взрослых составляет 1–2 г каждые 12 часов; при тяжелых инфекциях – 8 г/сут. При КК < 30 мл/мин проводят коррекцию дозы: КК 15–30 мл/мин – 1 г каждые 12 часов, КК < 14 мл/мин – 0,5 г каждые 12 часов. Детям назначается в дозе 40–80 мг/кг/сут (при тяжелых инфекциях – 160 мг/кг/сут) в два–четыре введения.

Возможность внутривенного и внутримышечного введения обеспечивает удобство использования препарата у разных категорий пациентов с тяжелыми инфекциями. Внутривенная инфузия должна продолжаться 15–60 минут, болюсное внутривенное введение – 3 минуты.

Заключение

Цефоперазон/сульбактам является уникальной комбинацией цефалоспорина III поколения с ингибитором  бета–лактамаз, действующим на грамотрицательные бактерии, резистентные к другим ЦС, и сохраняющим in vitro активность в отношении штаммов, продуцирующих БЛРС. Возможность использования цефоперазона/сульбактама в качестве монотерапии инфекций, вызванных ассоциациями аэробных и анаэробных бактерий, и активность препарата в отношении полирезистентных штаммов A. baumannii обеспечивают перспективность его использования и при нозокомиальных инфекциях. Клинически важен накопленный опыт применения цефоперазона/сульбактама как в России, так и в других странах мира при инфекциях различной локализации у взрослых пациентов и в педиатрии.

Таким образом, сочетание природной активности цефоперазона/сульбактама в отношении ведущих возбудителей тяжелых инфекций в стационарах, низкого уровня приобретенной резистентности с доказанной клинической эффективностью и благоприятным профилем безопасности позволяет рассматривать этот препарат как один из самых перспективных в современной клинической практике при широком спектре показаний.

Список литературы

  1. Страчунский Л.С. Бета-лактамазы расширенного спектра – быстрорастущая и плохо осознаваемая угроза // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2005. № 7. С. 92–96.
  2. Williams JD Beta-lactamases and beta-lactamase inhibitors. Int J Antimicrob Agents 1999;12:S3–7.
  3. Noguchi JK, Gill MA. Sulbactam: a beta-lactamase inhibitor. Clin Pharm 1988;7:37–51.
  4. Cullman W, Stieglitz M, Opferkuch W. Sulbactam and clavulanic acid: studies of enzyme kinetics and synergy with ampicillin and mezlocillin. Drugs 1988;35:S71–76.
  5. Сидоренко С.В. Механизмы резистентности микроорганизмов. В кн. “Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии” / под ред. Страчунского Л.С., Белоусова Ю.Б., Козлова С.Н. М., 2002. С. 21–23.
  6. Эйдельштейн М.В. Бета-лактамазы аэробных грамотрицательных бактерий: характеристика, основные принципы классификации, современные методы выявления и типирования // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001. № 3. С. 223–42.
  7. Williams JD. Importance of beta-lactamases and clinical implications of their inhibitors. Drugs 1998;35:3–11.
  8. Bush K, Jacoby G, Mederios A. Functional classification scheme for beta-lactamases and its correlation with molecular structure. Antimicrob Agents Chemother 1995;39:1211–33.
  9. Livermore DM, Williams JD. Beta-lactams: mode of action and mechanisms of bacterial resistance. In: Lorian V (ed). Antibiotics in laboratory medicine. Baltimore: Williams & Wilkins 1991:503–78.
  10. Livermore DM. Beta-lactamases in laboratory and clinical resistance. Clin Microb Rev 1995;8:557–84.
  11. Du Bois SK, Marriott MS, Amyes SG. TEM- and SHV-derived extended spectrum beta-lactamases: relationship between selection, structure and function. J Antimicrob Chemother 1995;35:7–22.
  12. Wiedmann B, Kliebe C, Kresken M. The epidemiology of beta-lactamases. J Antimicrob Chemother 1989;24:S1–22.
  13. Hirakata Y, Matsuda J, Miyazaki Y, et al. Regional variation in the prevalence of extended-spectrum beta-lactamase-producing clinical isolates in the Asia-Pacific region (SENTRY 1998-2002). Diagn Microbiol Infect Dis 2005;52:323–29.
  14. Wei ZQ, Chen YG, Yu YS. Nosocomial spread of multi-resistant Klebsiella pneumoniae containing a plasmid encoding multiple beta-lactamases. J Med Microbiol 2005;54:885–88.
  15. Tonkic M, Goic-Barisic I, Punda-Polic V. Prevalence and antimicrobial resistance of extended-spectrum beta-lactamases-producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae strains isolated in a university hospital in Split, Croatia. Int Microbiol 2005;8:119–24.
  16. Romero L, Lopez L, Rodriguez-Bano J, et al. Long-term study of the frequency of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolates producing extended-spectrum beta-lactamases. Clin Microbiol Infect 2005;11:625–31.
  17. Navon-Venezia S, Ben-Ami R, Carmeli Y. Update on Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii infections in the healthcare setting. Curr Opin Infect Dis 2005;18:306–13.
  18. Jones R.N. Global epidemiology of antimicrobial resistance among community-acquired and nosocomial pathogens: a five-year summary from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997–2001). Semin Respir Crit Care Med 2003;24:121–34.
  19. Livermore DM, Hawkey PM. CTX-M: changing the face of ESBLs in the UK. J Antimicrob Chemother 2005;56:451–54.
  20. Gales AC, Jones RN, Forward KR. Emerging importance of multidrug-resistant Acinetobacter species and Stenotrophomonas maltophilia as pathogens in seriously ill patients: geographic patterns, epidemiological features, and trends in the SENTRY antimicrobial surveillance program (1997–1999). Clin Infect Dis 2001;32:S104–13.
  21. Bergogne-Berezin E, Towner KJ. Acinetobacter spp. as nosocomial pathogens: microbiological, clinical, and epidemiological features. Clin Microb Reviews 1996;9:148–(?).
  22. Эйдельштейн М.В., Страчунский Л.С. и др. Динамика распространенности и чувствительности БЛРС-продуцирующих штаммов энтеробактерий к различным антимикробным препаратам в ОРИТ России // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2005. № 7. С. 323–36.
  23. Paterson DL, Bonomo RA. Extended-spectrum beta-lactamases: a clinical update. Clin Microbiol Reviews 2005;18:7–86.
  24. Jacoby GA, Chow N, Waites KB. Prevalence of plasmid-mediated quinolone resistance. Antimicrob Agents Chemother 2003;47:559–62.
  25. Mammeri H, Van De Loo M, Poirel L, et al. Emergence of plasmid-mediated quinolone resistance in Escherichia coli in Europe. Antimicrob Agents Chemother 2005;49:74–76.
  26. Martinez-Martinez L, Pascual A, Jacoby GA. Quinolone resistance from a transferable plasmid. Lancet 1998;351:797–99.
  27. Wang M, Sahm DF, Jacoby GA, et al. Emerging plasmid-mediated quinolone resistance associated with the qnr gene in Klebsiella pneumoniae clinical isolates in the United States. Antimicrob Agents Chemother 2004;48:1295–99.
  28. Paterson DL, Mulazimoglu L, Casellas JM, et al. Epidemiology of ciprofloxacin resistance and its relationship to extended-spectrum beta-lactamase production in Klebsiella pneumoniae isolates causing bacteremia. Clin Infect Dis 2000; 30:473–78.
  29. Lautenbach E, Strom BL, Bilker WB, et al. Epidemiological investigation of fluoroquinolone resistance in infections due to extended-spectrum beta-lactamase-producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. Clin Infect Dis 2001;33: 1288–94.
  30. Greenwood D. Beta-lactam antibiotics: cephalosporins. In: Antibiotic and chemotherapy. Anti-infective agents and their use in therapy. Finch RG, Greenwood D, Norrby SR, Whitley RJ (eds). 8th ed. Churchill Livingstone. 2003:202–03.
  31. Shen D, Winokur P, Jones RN. Characterization of extended spectrum beta-lactamase-producing Klebsiella pneumoniae from Beijing, China. Int J Antimicrob Agents 2001;18:185–88.
  32. Chanawong A, M’Zali FH, Heritage J, et al. Three cefotaximases, CTX-M-9, CTX-M-13, and CTX-M-14 among Enterobacteriaceae in the Peoples’ Republic of China. Antimicrob Agents Chemother 2002;46:630–37.
  33. Bradford PA, Cheburin CE, Idemyor V, et al. Multiply resistant Klebsiella pneumoniae strains form two Chicago hospitals: identification of the extended-spectrum TEM-12 and TEM-10 ceftazidime-hydrolyzing beta-lactamases in a single isolate. Antimicrob Agents Chemother 1994; 38:761–66.
  34. Babbini GS, Livermore DM. Antimicrobial resistance amongst Klebsiella spp. collected from intensive care units in Southern and Western Europe in 1997–1998. J Antimicrob Chemother 2000;45:183–89.
  35. Livermore DM. Mechanisms of resistance to cephalosporin antibiotics. Drugs 1987;34: S64–88.
  36. Kumazawa J, Yagisawa M. The history of antibiotics: the Japanese story. J Infect Chemother 2002;8:125–33.
  37. Bryskier A, Aszondi J. Cephems for parenteral use. In: Antimicrobial Agents. Bryskier A (ed). ASM Press 2005.
  38. Jones RN, Barry AL, Packer RR, et al. In vitro antimicrobial spectrum, occurrence of synergy, and recommendations for dilution susceptibility testing concentrations of the cefoperazone-sulbactam combination. J Clin Microbiol 1987;25: 1725–29.
  39. Jones RN, Barry AL, Thornsberry C, et al. The cefoperazone-sulbactam combination: in vitro qualities including beta-lactamase stability, antimicrobial activity, and interpretative criteria for disk diffusion tests. Am J Clin Pathol 1985;84: 496–504.
  40. Williams JD. Beta-lactamase inhibition and in vitro activity of sulbactam and sulbactam/cefoperazone. Clin Infect Dis 1997;24:494–97.
  41. Fass RJ, Gregory WW, D’Amato RF, et al. In vitro activities of cefoperazone and sulbactam singly and in combination against cefoperazone-resistant members of the family Enterobacteriaceae and nonfermenters. Antimicrob Agents Chemother 1990;34:2256–59.
  42. Barry AL, Jones RN. In vitro activities of ampicillin-sulbactam and cefoperazone-sulbactam against oxacillin-susceptible and oxacillin-resistant staphylococci. Antimicrob Agents Chemother 1990;34:1830–32.
  43. Yamaguchi K, Mathai D, Biedenbach DJ, et al. Evaluation of the in vitro activity of six broad-spectrum beta-lactam antimicrobial agents tested against over 2000 clinical isolates from 22 medical centers in Japan. Japan Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1999;34:123–34.
  44. Pfaller MA, Jones RN, Doern GV, et al. Multicenter evaluation of antimicrobial resistance to six broad-spectrum beta-lactams in Colombia: comparison of data from 1997 and 1998 using the Etest method. The Colombian Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1999;35:235–41.
  45. Pfaller MA, Korten V, Jones RN, et al. Multicenter evaluation of the antimicrobial activity for seven broad-spectrum beta-lactams in Turkey using Etest method. The Turkish Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1999;35:–73.
  46. Wang F, Demei Z, Shi W, et al. The susceptibility of non-fermentative gram-negative bacilli to cefoperazone and sulbactam compared with other antibacterial agents. Int J Antimicrob Agents 2003;22:444–48.
  47. Mohanty S, Singhal R, Sood S, et al. Comparative in vitro activity of beta-lactam/beta-lactamase inhibitor combination against gram negative bacteria. Indian J Med Res 2005;122: 425–28.
  48. Reshedko G, Ryabkova E, Kretchikova O, et al. Antimicrobial resistance among nosocomial Klebsiella pneumoniae from Russian intensive care units. 45th ICAAC Abstracts. 2005;E-800: 167.
  49. Митрохин С.Д. Сульперазон в лечении тяжелых инфекций у онкологических больных // Антибиотики и химиотерапия. 2003. Т. 48. С. 26–29.
  50. Сидоренко С.В., Резван С.П., Еремина Л.В. и др. Этиология тяжелых госпитальных инфекций в отделениях интенсивной терапии и антибиотикорезиcтентность возбудителей // Антибиотики и химиотерапия. 2005. Т. 50. С. 33–41.
  51. Страчунский Л.С., Галкин Д.В., Козлов Р.С. и др. Эффективность цефоперазона/сульбактама при бактериальном сепсисе: результаты многоцентрового проспективного исследования “ИРИС” // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2003. № 5. С. 318–28.
  52. Bergogne-Berezin E, Joly-Guillon ML. Hospital infection with Acinetobacter spp.: and increasing problem. J Hosp Infect 1991;18:S250–55.
  53. Tilley PAG, Roberts FJ. Bacteremia with Acinetobacter species: risk factors and prognosis in different clinical settings. Clin Infect Dis 1994;18:896–900.
  54. Spencer RC. Predominant pathogens found in the European Prevalence of Infection in Intensive Care Study. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1996;15:281–85.
  55. Lewis MT, Yamagouchi K, Biedenbach DJ, et al. In vitro evaluation of cefepime and other broad-spectrum beta-lactams in 22 medical centers in Japan: a phase II clinical trial comparing two annual organism samples. Diagn Microbiol Infect Dis 1999;35:307–15.
  56. Higgins PG, Wisplinghoff H, Stefanik D, et al. In vitro activities of the beta-lactamase inhibitors clavulanic acid, sulbactam, and tazobactam alone or in combination with beta-lactams against epidemiologically characterized multidrug-resistant Acinetobacter baumannii strains. Antimicrob Agents Chemother 2004;48:1586–92.
  57. Dias MBS, Jacobus NV, Tally FP. In vitro activity of cefoperazone-sulbactam against Bacteroides species. J Antimicrob Chemother 1986;18: 467–71.
  58. Wexler HM, Finegold SM. In vitro activity of cefoperazone plus sulbactam compared with that of other antimicrobial agents against anaerobic bacteria. Antimicrob Agents Chemother 1988; 32:403–06.
  59. Appelbaum PC, Spangler SK, Jacobs MR. Susceptibilities of 394 Bacteroides fragilis, non-B. fragilis Bacteroides species, and Fusobacterium species to newer antimicrobial agents. Antimicrob Agents Chemother 1991;35:1214–18.
  60. Goldstein EJ, Citron DM. Comparative in-vitro activity of cefoperazone/sulbactam and 11 other agents against multidrug resistant Bacteroides fragilis group species. J Antimicrob Chemother 1996;38:733–37.
  61. Galkin D, Kretchikova O, Sukhorukova M, et al. Antimicrobial susceptibility of gram-negative anaerobic bacteria from 2 hospitals in Smolensk, Russia. Proceedings of the 16th ECCMID. 2006. In print.
  62. Reitberg DP, Whall TJ, Ghung M, et al. Multiple-dose pharmacokinetics and toleration of intravenously administered cefoperazone and sulbactam when given as single agents or in combination. Antimicrob Agents Chemother 1988; 32:42–46.
  63. Reitberg DP, Marble DA, Schultz RW, et al. Pharmacokinetics of cefoperazone (2.0 g) and sulbactam (1.0 g) coadministered to subjects with normal renal function, patients with decread renal function, and patients with end-stage renal disease on hemodialysis. Antimicrob Agents Chemother 1988;32:503–09.
  64. Nakazawa S, Sato H, Narita A, et al. Fundamental and clinical studies of sulbactam/cefoperazone in the field of pediatrics. Jpn J Antibiot 1984;37:2427–87.
  65. Sсhwartz JI, Jauregui LE, Bachmann KA, et al. Multiple-dose pharmacokinetics of intravenously administered cefoperazone and sulbactam when given in combination to infected, seriously ill, elderly patients. Antimicrob Agents Chemother 1988;32:730–35.
  66. Cho N, Fukunaga K, Kunii K, et al. Basic and clinical study of sulbactam/cefoperazone in the obstetric/gynecology field. World Gynecol 1984;36:649–75.
  67. Data on file, Pfizer Inc.
  68. Li J, Zhu Y, Hu W, et al. A randomized clinical study of sulperazon vs. tienam in the treatment of LRTIs. Chin J Intern Med 1996;35:819–23.
  69. Ishibashi T, Takamoto M, Shinoda A, et al. Jpn J Antibiot 1990;43:239–56.
  70. Suwangool P, Leelasupasri S, Chuchottaworn C. Treatment of nosocomial pneumonia with cefoperazone/sulbactam. J Infect Dis Antimicrob Agents 1999;16:–68.
  71. Shimada K. Clinical evaluation of sulbactam/cefoperazone in internal medicine. Proceedings of Seoul Symposium. 1986:69–73.
  72. Various authors. Clinical studies on sulbactam/cefoperazone in pediatric field. Japan J Antibiot 1984;31:1787–820.
  73. Овсянкин А.В., Муконин А.А. Клинико-бактериологическое обоснование использования цефоперазона/сульбактама в комплексном лечении больных с гнойно-деструктивными заболеваниями легких // Антибиотики и химиотерапия. 2004. Т. 49. С. 25–29.
  74. Jauregul LE, Appelbaum PC, Fabian TC, et al. A randomized clinical study of cefoperazone and sulbactam versus gentamycin and clindamycin in the treatment of intra-abdominal infections. J Antimicrob Chemother 1990;25:423–33.
  75. Greenberg RN, Cayavec P, Danko LS, et al. Comparison of cefoperazone plus sulbactam with clindamycin plus gentamicin as treatment for intra-abdominal infections. J Antimicrob Chemother 1994;34:391–402.
  76. Akyurek N, Bedirli K, Kucuk Y. Randomized comparison of cefoperazone/sulbactam and imipenem/cilastatin in the treatment of intra-abdominal infections. Brit J Surg 1997;84:880.
  77. Nakahara K, Naitoh H, Murakami T, et al. Clinical investigations of sulbactam/cefoperazone in infections in the obstetrics and gynecological field. Ob/Gyn Chu-Shi J 1996;37:130–37.
  78. Kumazawa J, Matsumoto T, Kumamoto Y, et al. A comparative study of tazobactam/piperacilin (TAZ/PIPC) and sulbactam/cefoperazone (SBT/CPZ) for the treatment of complicated urinary tract infections. Nishinion J Urol 1995;7:339–59.
  79. Kawada Y. The significance of the combination of sulbactam and cefoperazone in the treatment of complicated urinary tract infections. Proceedings of Seoul symposium: sulbactam and bacterial resistance. 1986:66–68.
  80. Bodey G, Abi-Said D, Rolston K, et al. Imipenem or cefoperazone-sulbactam combined with vancomycin for therapy of presumed or proven infection in neutropenic cancer patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1996;15:625–34.
  81. Winston DJ, Bartoni K, Bruckner DA, et al. Randomized comparison of sulbactam/cefoperazone with imipenem as empirical monotherapy for febrile granulocytopenic patients. Clin Infect Dis 1998;26:576–83.
  82. El Haddad AMA. Comparison of cefoperazone-sulbactam versus piperacillin plus amikacin as empiric therapy in pediatric febrile neutropenic cancer patients. Curr Therap Res 1995;56: 1094–99.
  83. Horiuchi A, Hasegawa H, Kageyama T, et al. Efficacy of sulbactam/cefoperazone for the treatment of infections in patients with hematologic diseases. Diagn Microbiol Infect Dis 1989;12: 215S–219S.
  84. El Zawahry HM, Hamza MR, Essa SA, et al. Evaluation of cefoperazone-sulbactam for empiric antibiotic therapy of febrile granulocytopenic adult cancer patients with acute leukemia and lymphomas. Curr Ther Res 1996;57:232–38.
  85. Белобородова Н.В., Кузнецова С.Т., Попов Д.А. и др. Клинический опыт лечения тяжелых госпитальных инфекций с применением ингибиторозащищенного цефалоспорина III поколения цефоперазона/сульбактама // Антибиотики и химиотерапия. 2005. Т. 50. С. 33–41.
  86. Бекетов А.С., Сидоренко С.В., Писарев В.В. и др. Сравнительная клинико-экономическая оценка бета-лактамных антибиотиков при лечении интраабдоминальных инфекций // Антибиотики и химиотерапия. 2003. Т. 48. С. 34–41.
  87. Carlberg H, Alestig K, Nord CE, et al. Intestinal side effects of cefoperazone. J Antimicrob Chemother 1982;10:483.
  88. Norrby SR. Side effects of cephalosporins. Drugs 1987;34:S105–20.
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.