ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Современные возможности терапии тяжелых микозов у детей раннего возраста

Г.Н. Буслаева

Тяжелые грибковые поражения довольно часто встречаются у детей раннего возраста, особенно у недоношенных новорожденных. Их основным патогеном является Candida albicans. В настоящее время в арсенале врачей имеется несколько групп противогрибковых препаратов, но не все они могут использоваться при тяжелых микозах у детей. По этим показаниям в настоящее время используются амфотерицин В, включая его липидные формы, флуцитозин (в России практически не применяется), флуконазол и эхиноканоиды (каспофунгин). Рассматриваются фармакологические свойства этих противогрибковых препаратов, обсуждается их клиническая эффективность у детей раннего возраста. Приводятся собственные результаты автора в отношении лечения грибковых менингитов у детей первого года жизни и переноси

Тяжелые грибковые поражения довольно часто встречаются у детей раннего возраста, особенно у недоношенных новорожденных. Так, среди недоношенных с массой тела при рождении менее 1500 г их частота составляет 2–4,5 %, а летальность – от 25 до 50 % [1–12]. Факторы риска развития инвазивных микозов включают незрелость иммунной системы (особенности фагоцитоза и недостаточность Т-клеточного звена), интенсивные и порой агрессивные методы выхаживания, использование антибиотиков широкого спектра действия [3, 5, 7, 13–17]. Основным патогеном при развитии болезни до последнего времени остается Candida albicans, хотя все чаще отмечают и другие виды Candida – C. parapsilosis, C. tropicalis, C. glabrata и C. lusitaniae [4, 13, 18]. Инфицирование ребенка происходит преимущественно в родах, когда контаминируется кожа, но возможно развитие нозокомиального варианта болезни при инфицировании в стационаре через предметы окружающей среды, медицинский инструментарий и при транслокации грибов в кровь из кишечника при кандидоносительстве [3, 18, 19].

В настоящее время в арсенале врачей имеется несколько групп противогрибковых препаратов, но не все из них с одинаковой степенью можно использовать у детей (табл. 1).

Не все из перечисленных препаратов обладают системным действием и применяются для лечения системных микозов. Так, нистатин и натамицин не всасываются из желудочно-кишечного тракта, поэтому оказывают лишь местное действие и используются при кандидозе кишечника. Кроме того, натамицин выпускается в виде таблеток, покрытых кишечнорастворимой оболочкой, что требует их проглатывания целиком. Кетоконазол в силу многочисленных побочных эффектов у детей раннего возраста используется только по жизненным показаниям. Данных об использовании итраконазола и тербинафина у детей до 2 лет недостаточно, чтобы рекомендовать эти лекарственные средства для широкого применения.

Механизм действия препаратов различен. Полиеновые антибиотики, азолы и аллиламины нарушают синтез эргостерола, составляющего основу мембраны клетки гриба. В результате этого нарушается проницаемость клеточной стенки, и клетка гриба гибнет. Поскольку амфотерицин В тропен не только к грибковому эргостеролу, но и к холестерину животных клеток, при его применении возможно возникновение многочисленных побочных реакций. Пиримидиновые производные нарушают синтез РНК в клетке гриба. Эхинокандины обладают уникальным действием, поскольку они блокируют синтез 1,3-бета-глюкана клеточной стенки грибов, отсутствующего у млекопитающих.

Фармакологические свойства антимикотиков

Амфотерицин В

Препарат используется с 1956 г. Является продуктом жизнедеятельности Streptomyces nodosus. Обладает широким спектром действия и активен в отношении практически всех возбудителей системных микозов. В сравнительно небольших концентрациях действует на многие условно-патогенные и патогенные грибы и эффективен при таких заболеваниях, как аспергиллез, бластомикоз, кандидоз, криптококкоз, кокцидиоидоз, гистоплазмоз, плесневые микозы и др. Амфотерицин В минимально абсорбируется из желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), поэтому используется только внутривенно. Попав в кровоток, он освобождается от диоксихолата и более чем на 90 % связывается с сывороточными белками, в первую очередь с бета-липопротеидами. Распределение лекарственного вещества в тканях представлено в табл. 2.

Обращает на себя внимание плохое проникновение препарата в ликвор и ЦНС, даже при наличии воспалительного процесса (менингита). Средний период полувыведения составляет около 15 дней, но эти данные получены на взрослых пациентах, исследования у новорожденных недостаточны.

Данные о фармакокинетике амфотерицина В у новорожденных скудны. В литературе есть описание лишь двух исследований [20, 21], результаты которых не во всем совпадают (табл. 3)

Обращала на себя внимание большая вариабельность показателя клиренса после 5 дней применения препарата.

Широкий спектр действия амфотерицина В и большое число побочных реакций, возникающих при его применении, привели к поиску новых путей введения препарата. В настоящее время существуют 3 лекарственные формы, в которых антимикотик ассоциирован с липидами:

  • липосомальный амфотерицин В, в котором лекарственное вещество “встроено” в липидный бислой липосом;
  • коллоидная взвесь – липидные пузырьки-амфотерицин В (ABCD) – комплекс холестерила сульфата с амфотерицином В в отношении 1:1;
  • липидный комплекс амфотерицина В (ABLC) – где лекарственное средство связано с двумя липидами в отношении 1:1.

Относительно большие липосомные формы ABCD и ABLC в большей степени захватываются ретикулоэндотелиальной системой, и их клиренс из системного кровотока больше по сравнению с липосомальным амфотерицином В [22]. Высвобождение лекарственного средства из комплекса с липидами происходит при воздействии липаз, которые активно вырабатываются в очаге воспаления. Таким образом, происходит как бы целенаправленная доставка антимикотика в зону инфекционного процесса.

В России зарегистрирована только липосомальная форма амфотерицина В. Липосомы представляют собой пузырьки диаметром менее 100 нм, что позволяет им проникать через клеточные мембраны и воздействовать на патогены, расположенные как внутри-, так и внеклеточно.

Изучение фармакокинетических параметров различных форм амфотерицина В проводилось у взрослых пациентов; результаты представлены в табл. 4.

Как следует из таблицы, липосомальный амфотерицин В имеет меньший объем распределения и клиренс и наибольшую Cmax. Липидный комплекс распределяется в большем объеме и характеризуется высоким клиренсом. Период полувыведения у всех 4 форм амфотерицина В примерно одинаков [22–25].

Исследование фармакокинетики липосомального амфотерицина В у новорожденных проводилось лишь в одном рандомизированном исследовании [14]. При назначении больному препарата в дозе 3,5 мг/кг/сут его концентрация в сыворотке и суставной жидкости составила 0,57 и 0,79 мкг/мл соответственно. Данных о распределении в тканях у новорожденных и детей других возрастных категорий нет.

Флуцитозин

В России это лекарственное средство практически не используется. Относится к группе антиметаболических лекарств. Флуцитозин проникает в клетку посредством транспортного фермента и преобразуется сначала во флуороурацил, а затем в флуороуридиловую кислоту. Эти метаболиты могут включаться непосредственно в РНК, нарушая синтез белка. С другой стороны, в процессе метаболизма может образовываться флуородиоксиуридиловая кислота, прерывающая синтез ДКН и деление ядра. Известно, что в клетках млекопитающих не происходит трансформация флуцитозина во флуороурацил, т. е. препарат обладает селективным действием на клетки гриба.

Флуцитозин быстро и почти полностью всасывается из ЖКТ, минимально связывается с белками (менее 5 %). Выделяется лекарственное средство преимущественно с мочой в неизмененном виде, поэтому необходимо корригировать дозу у пациентов с почечной патологией. Флуцитозин довольно хорошо проникает в ликвор, где его концентрация составляет 65–90 % от сывороточной. Средние концентрации препарата в тканях у взрослых приближаются к таковой в сыворотке. Флуцитозин выводится при проведении перитонеального диализа.

У новорожденных фармакокинетические характеристики флуцитозина близки к таковым у взрослых. Однако изучение фармакодинамики позволяет говорить о том, что для недоношенных детей и доношенных с нарушением функции почек достаточно однократного введения флуцитозина в сутки.

К флуцитозину быстро развивается резистентность, в связи с чем он чаще используется в комбинации с амфотерицином В или флуконазолом.

Флуконазол

Это триазольное производное из группы азолов. Различные виды Candida имеют различную MIC по отношению к флуконазолу. Так, C. krusei и C. lipolytica изначально резистентны к препарату и демонстрируют самую высокую MIC. C. glabrata, наряду с C. lusitaniae и C. parapsilosis, обладают меньшей MIC, а самой чувствительной к этому антимикотику является C. albicans. C. tropicalis имеет промежуточную чувствительность.

Фармакокинетические характеристики флуконазола были изучены в нескольких исследованиях, их результаты представлены в табл. 5.

Флуконазол почти полностью абсорбируется из ЖКТ, независимо от рН желудочного сока и приема пищи. Лекарственное средство можно использовать парентерально, связывание с белками плазмы минимальное – 12 %. Препарат быстро проникает во все жидкости организма, включая ликвор, где его концентрация составляет, по данным разных исследований, от 50 до 90 % от плазменной. Выводится преимущественно почками (до 90 %), что должно учитываться при наличии почечной недостаточности. Фармакокинетические параметры флуконазола менее вариабельны по сравнению с амфотерицином В, однако показатели по флуконазолу все же зависят от гестационного возраста, сопутствующей патологии и т. п. Индивидуальную вариабельность фармакокинетических показателей можно частично объяснить ингибирующим эффектом флуконазола преимущественно на CYP2C9 и в меньшей степени на CYP3А4.

Эхинокандины

Это новая группа антимикотиков, являющихся полусинтетическими производными эхинокандина В, первично полученного из Aspergillus nidulans. In vitro эти препараты активны в отношении Candida spp., Aspergillus spp., Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis, Pneumocystis carinii and Coccidioides immitis [33, 34]. Грибы с ограниченным содержанием в клеточной мембране 1,3-бета-глюкана, являющегося точкой приложения эхинокандинов, резистентны к данной группе противогрибковых средств. К ним относятся, например, Cryptococcus neoformans.

Первым представителем эхинокандинов, внедренным в клиническую практику, является каспофунгин, а следующим, возможно, будет микафунгин (FK-463). К сожалению, данных о фармакокинетических характеристиках этих препаратов недостаточно, а те, что имеются, относятся только к взрослым пациентам. Известно, что каспофунгин практически не всасывается из ЖКТ, на 96 % связывается с белками плазмы, метаболизируется, период его полувыведения у взрослых – 9–10 часов. Около 3 % вводимого препарата определяется в неизмененном виде в моче. Количество метаболитов, их выведение и противогрибковая активность не определены. Некоторые исследователи отмечают лишь незначительное повышение сывороточной концентрации каспофунгина у больных с умеренной печеночной недостаточностью [35], что позволяет не проводить коррекцию дозы у пациентов с такой патологией.

Согласно единичным наблюдениям, фармакокинетические параметры каспофунгина у детей близки к таковым у взрослых [36], однако малое количество исследований не дает возможность экстраполировать данные на все возрастные группы.

Подобно каспофунгину, микофунгин плохо всасывается из ЖКТ. Препарат активно метаболизируется как в печени, так и внепеченочно, период полураспада составляет около 13 часов. В настоящее время известны 6 метаболитов, но их свойства и антимикотическая активность не определены [37].

Эффективность в отношении видов Candida

Pfaller M.A. и соавт. [38] представили данные о рекомендуемых MIC для различных антимикотиков в зависимости от вида Candida (табл. 6).

Клиническая эффективность антимикотиков у детей раннего возраста

Амфотерицин В

Определение эффективности амфотерицина В изучалось во многих исследованиях [39–50]. Показания к назначению антимикотика включали наличие системного кандидоза, кандидозного менингита, эндокардита, пневмонии. Поскольку часто амфотерицин В назначался в сочетании с флуцитозином и точно определить, какой именно препарат оказался эффективным, было невозможно, результаты обобщались. Дозы амфотерицина В колебались от 0,1 до 0,5–0,75 и даже 1 мг/кг/сут в некоторых исследованиях. Доза флуцитозина составляла от 50 до 200 мг/кг/сут. Терапия проводилась длительно, обычно более 30 дней. Показатель выживаемости составлял от 54 до 100 %. Среди умерших преобладали недоношенные новорожденные. Особый интерес представляют больные с менигнитом. В ряде исследований [26, 51–61] участвовали 17 детей раннего возраста, 15 из которых были недоношенными. Четверо из них не получили лечения, в результате чего 2 умерли, а у 2 выживших отмечались выраженные неврологические отклонения. Из 13 пролеченных детей 3 умерли, 10 выжили, но у 7 из них сформировалась обструкция ликворных путей на уровне сильвиева водопровода и отставание в психомоторном развитии. У остальных трех развитие соответствовало возрасту.

Липидныe формы амфотерицина В

Исследование эффективности при терапии различными липидными формами амфотерицина В проводилось лишь в отдельных работах [62–68]. Показаниями к назначению препарата служили системный кандидоз, кандидемия, менингит. Дозы колебались от 1 до 5 мг/кг/сут, а в одном исследовании они достигали 6,5 мг/кг/сут. Длительность терапии составляла от 2 до 79 дней (в среднем – 28 дней). Выживаемость была в пределах от 50 до 100 %. При этом было показано, что эффективность терапии липосомальным амфотерицином В (94 %) принципиально не отличается от таковой при использовании липидного комплекса – ABLC (86 %). Все умершие дети имели очень низкую массу тела при рождении.

Флуконазол

Флуконазол использовали преимущественно при системном кандидозе [39, 69–75] и кандидозном артрите [76]. Дозы препарата колебались в пределах 5–7 мг/кг/сут, лишь в двух работах препарат применяли в больших дозах: 16 и 10 мг/кг/сут (с последующим снижением до 5 мг/кг/сут). Флуконазол вводили внутривенно или применяли ступенчатую терапию – со сменой на применение внутрь. В нескольких случаях препарат назначали после схемы амфотерицин В + флуцитозин. Длительность терапии составляла от 1 до 80 дней (в среднем – 27 дней). При лечении флуконазолом выживали от 67 до 100 % пациентов, причем у части умерших при аутопсии уже не обнаруживались признаки грибковой инфекции. Часть авторов [30, 77] предлагают использовать флуконазол в комбинации с флуцитозином.

Изучалась и возможность применения флуконазола в профилактике тяжелых грибковых заболеваний [78]. Пятидесяти недоношенным новорожденным препарат назначали из расчета 3 мг/кг 1 раз в 3 дня в течение двух недель, через день в течение 3 и 4-й недель и ежедневно на 5 и 6-й неделях. При такой терапии ни у одного недоношенного новорожденного не было отмечено развития инвазивного микоза, хотя в контрольной группе заболевание развилось у 10 из 50 пациентов (20 %).

Собственный опыт лечения грибкового менингита

Наш опыт лечения грибковых менингитов у 36 детей первого года жизни представлен в табл. 7.

Амфотерицин В назначался в первоначальной дозе 0,1–0,25 мг/кг/сут с последующим увеличением до 0,5–0,75 мг/кг/сут, липосомальный амфотерицин В – 3 мг/кг/сут, флуконазол – 12–15 мг/кг/сут. Провести полный курс терапии липосомальным амфотерицином В не представилось возможным в связи с ограниченным количеством препарата. Гранулоцитарный колониестимулирующий фактор (ГКСФ; филграстим) использовался по жизненным показаниям как “терапия отчаяния” в тех случаях, когда стандартная терапия со сменой антимикотиков не давала положительного результата в течение двух месяцев и более. ГКСФ назначался по 5 мкг/кг/сут подкожно в течение 5 дней на фоне внутривенного введения флуконазола. К сожалению, говорить о безусловной эффективности какого-либо из использованных препаратов невозможно [79, 80]. Поэтому целесообразно проводить комбинированную терапию сразу двумя антимикотиками.

Токсичность антимикотиков

Амфотерицин В

При терапии амфотерицином В у пациентов всех возрастных групп, в т. ч. у новорожденных, часто отмечают различные побочные реакции. Это – нефротоксичность, электролитные нарушения, кардиотоксичность [81, 82].

Нефротоксичность характеризуется развитием полиурии, резистентной к антидиуретическому гормону, почечного тубулярного ацидоза, гипокалиемии и почечной недостаточности. Нефротоксичность связывают [83, 84] с вазоконстрикцией, возникающей в результате повышения уровня внутриклеточного кальция в гладкой мускулатуре артериол и повышения проницаемости клеточных мембран вследствие взаимодействия амфотерицина В с холестерином, составляющим их основу в клетках млекопитающих.

Кардиотоксичность может быть обусловлена нарушениями на уровне кальциевых каналов и снижением выведения из клетки натрия [85].

У новорожденных на фоне терапии амфотерицином В, как и у взрослых пациентов, отмечаются изменения уровня остаточного азота, креатинина и электролитов, хотя эти нарушения имеют обратимый характер. В некоторых исследованиях отмечена также гепатотоксичность препарата. Снижение дозы или увеличение интервалов между введениями амфотерицина В уменьшает риск развития нефротоксичности.

В наших исследованиях амфотерицин В был использован для лечения кандидоза ЦНС у 10 больных [77, 78]. При его назначении у всех больных выявлялись побочные реакции. К их числу относились повышение температуры до фебрильных цифр (7), беспокойство (5) и судороги (3), приступы цианоза (3), рвота (4), потеря сознания (1). В биохимическом анализе крови отмечались гипокалиемия до 3,8 ммоль/л (2), повышение уровня мочевины до 14,3 ммоль/л (2), повышение АСТ до 73 (4) и АЛТ до 68 (2).

Липосомальные формы амфотерицина В

Проведенные исследования позволяют утверждать, что липосомальные формы амфотерицина В переносятся лучше, чем амфотерицин В [62–68]. Побочные реакции выявлялись с частотой от 0 до 50 %, в то время как при терапии амфотерицином В – от 0 до 70 %. Преимущественно это были гипокалиемия, реже – повышение уровня остаточного азота и гепатотоксичность. Однако нефротоксичность отмечается с одинаковой частотой 22 % при терапии амфотерицином В и его липосомальной формой [86]. Отсутствие нарастания частоты побочных реакций, несмотря на увеличение дозы амфотерицина В в его липосомальной форме в 5 раз по сравнению с обычным амфотерицином В, свидетельствует о его лучшей переносимости.

Флуконазол

При использовании азолов наиболее частые побочные реакции – нарушения со стороны желудочно-кишечного тракта. Тошнота и рвота отмечались у трети пациентов. Гепатотоксичность в виде транзиторного повышения трансаминаз зарегистрирована, по данным различных авторов, с частотой от 2 до 10 %. У новорожденных при терапии флуконазолом побочные реакции отмечаются реже и выражены в меньшей степени, чем при терапии амфотерицином В.

В наших исследованиях при использовании флуконазола у 360 больных побочные реакции не выявлялись ни в одном случае. Не было отмечено подъемов температуры, усиления срыгиваний и появления рвоты, аллергических реакций. Все биохимические показатели (мочевина, билирубин, АСТ, АЛТ) оставались в пределах нормы даже при длительном использовании препарата в максимальных дозах. При исходном повышении некоторых биохимических показателей (билирубин, мочевина, остаточный азот), связанном с сопутствующими заболеваниями, обратная их динамика была обычной и не отличалась от таковой у детей, не получавших терапию флуконазолом.

Таким образом, проблема терапии тяжелого инвазивного кандидоза у новорожденных детей, включая недоношенных, до настоящего времени представляется нерешенной. Определенные перспективы открываются с расширением рынка антимикотических препаратов, однако многие из них не рекомендованы к применению в раннем возрасте, что связано с отсутствием соответствующих исследований. Дальнейшее изучение фармакокинетических параметров противогрибковых средств в детском возрасте, особенно на первом году жизни, будет способствовать выбору рациональных и оптимальных терапевтических схем и, возможно, приведет к более оптимистическому прогнозу.

Список литературы

  1. Baley JE, Kliegman RM, Fanaroff AA. Disseminated fungal infections in very low-birth-weight infants: clinical manifesta-tions and epidemiology. Pediatrics 1984;73:144–52.
  2. Baley JE, Silverman A. Systemic candidiasis: cutaneous mani-festations in low birth-weight infants. Pediatrics 1988;82:211–15.
  3. Faix RG, Kovarik SM, Shaw TR, et al. Mucocutaneous and invasive candidiasis among very low birth weight (less than 1500 grams) infants in intensive care nurseries: a prospective study. Pediatrics 1989;83(1):101–17.
  4. Johnson DE, Thompson TR, Green TP, et al. Systemic candi-diasis in very low-birth-weight infants (less than 1500 grams). Pediatrics 1984;73(2): 138–43.
  5. Weitkamp JH, Poets CF, Sievers R, et al. Candida infection in very low birth-weight infants: outcome and nephrotoxicity of treatment with liposomal amphotericin B (AmBisome). Infection 1998;26:11–15.
  6. Edwards MS. Fungal and protozoal infections. In: Fanaroff AA, Martin RJ, editors. Neonatal-perinatal medicine: diseases of the fetus and Infant. St Louis (MO): Mosby-Year Book Inc., 2002, р. 745–51.
  7. Weese-Mayer DE, Fondriest DW, Brouillette RT, et al. Risk factors associated with candidemia in the neonatal intensive care unit: a case-control study. Pediatr Infect Dis J 1987;6:190–96.
  8. Rowen JL, Tate JM. Management of neonatal candidiasis: Neo-natal Candidiasis Study Group. Pediatr Infect Dis J 1998;17(11):1007–11.
  9. Stoll BJ, Gordon T, Korones SB, et al. Early-onset sepsis in very low birth weight neonates: a report from the National Institute of Child Health and Human Development Neonatal Research Network. J Pediatr 1996;129(1):72–80.
  10. Leibovitz E. Neonatal candidosis: clinical picture, management controversies and consensus, and new therapeutic options. J Antimicrob Chemother 2002;49(Suppl. 1):69–73.
  11. Saiman L, Ludington E, Dawson JD, et al. The National Epidemiology of Mycoses Study Group. Risk factors for Candida species colonization of neonatal intensive care unit patients. Pediatr Infect Dis J 2001;20(12):1119–24.
  12. Saiman L, Ludington E, Pfaller M, et al. Risk factors for candidemia in neonatal intensive care unit patients: the National Epidemiology of Mycosis Survey Study Group. Pediatr Infect Dis J 2000;19(4):319–24.
  13. Ng PC. Systemic fungal infections in neonates. Arch Dis Child 1994;71:F130–35.
  14. Evdoridou J, Roilides E, Bibashi E, et al. Multifocal osteoar-thritis due to Candida albicans in a neonatc: serum level monitoring of liposomal amphotericin B and literature review. Infection 1997;25(2):112–16.
  15. Anderson DC, Pickering LK, Feigin RD. Leukocyte function in normal and infected neonates. J Pediatr 1974;85(3):420–25.
  16. Shigeoka AO, Charette RP, Wyman ML, et al. Defective oxidative metabolic responses of neutrophils from stressed neonates. J Pediatr 1981; 98(3):392–98.
  17. Cairo MS. Neonatal neutrophil host defense: prospects for immunologic enhancement during neonatal sepsis. Am J Dis Child 1989;143(1):40–46.
  18. Baley JE, Kliegman RM, Boxerbaum B, et al. Fungal coloniza-tion in the very low birth weight infant. Pediatrics 1986;78:225–32.
  19. WelbelSF, McNeil MM, Kuykendall RJ, et al. Candida parap-silosis bloodstream infections in neonatal intensive care unit patients: epidemiologic and laboratory confirmation of a common source outbreak. Pediatr Infect Dis J 1996;15(11): 998–1002.
  20. Starke JR, Mason Jr EO, Kramer WG, et al. Pharmacokinetics of amphotericin B in infants and children. J Infect Dis 1987;155(4):766–74.
  21. Baley JE, Meyers C, Kliegman RM, et al. Pharmacokinetics, outcome of treatment, and toxic effects of amphotericin B and 5-fluorocytosine in neonates. J Pediatr 1990;116(5):791–97.
  22. Boswell GW, Buell D, Bekersky I. AmBisome (liposomal amphotericin B): a comparative review. J Clin Pharmacol 1998;38(7):583–92.
  23. AmBisome. In: Physician's desk reference. 54th ed. Montvale (NJ): Medical Economics Co. Inc., 2000, р. 1090–92.
  24. Abelcet. In: Physician's desk reference. 54th ed. Montvale (NJ):Medical Economics Co. Inc., 2000, р. 1653–55.
  25. Harm IM, Prentice HG. Lipid-based amphotericin B: a review of the last 10 years of use. Int J Antimicrob Agents 2001;17(3):161–69.
  26. Hill HR, Mitchell TG, Matsen JM, et al. Recovery from disseminated candidiasis in a premature neonate. Pediatrics 1974;53(5):748–52.
  27. Wiest DB, Fowler SL, Garner SS, et al. Fluconazole in neonatal disseminated candidiasis [letter]. Arch Dis Child 1991;66(8):1002.
  28. Krzeska I, Yeats RA, Pfaff G. Single dose intravenous pharmacokinetics of fluconazole in infants. Drugs Exp Clin Res 1993;19(6):267–71.
  29. Sax6n H, Hoppu K, Pohjavuori M. Pharmacokinetics of fluconazole in very low birth weight infants during the first two weeks of life. Clin Pharmacol Ther 1993;54(3):269–77.
  30. Marr B, Gross S, Cunningham C, et al. Candida sepsis and meningitis in a very-low-birth-weight infant successfully treated with fluconazole and flucytosine. Clin Infect Dis 1994;19(4):795–96.
  31. Wong SF, Leung MP, Chan MY. Pharmacokinetics of fluconazole in children requiring peritoneal dialysis. Clin Ther 1997;19(5):1039–47.
  32. Wenzl TG, Schefels J, Homchen H, et al. Pharmacokinetics of oral fluconazole in premature infants. Eur J Pediatr 1998;157(8):661–62.
  33. Graybill JR. The echinocandins, first novel class of antifungals in two decades: will they live up to their promise? Int J Clin Pract 2001;55:633–38.
  34. Groll AH, Piscitelli SC, Walsh TJ. Clinical pharmacology of systemic antifungal agents: a comprehensive review of agents in clinical use, current investigational compounds, and putative targets for antifungal drug development. Adv Pharmacol 1998;44:343–500.
  35. Stone J, Holland S, Li S, et al. Effect of hepatic insufficiency on the pharmacokinetics of caspofungin [abstract no. A-14]. 41st Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy,2001, Chicago.
  36. Nelly M, Blumer J. Caspofungin pharmacokinetics in two pediatric liver transplant patients. Clin Ther Res 2003;64:127–36.
  37. Mukai T, Ohkuma T, Nakahara K, et al. Pharmacokinetics of FK463, a novel echinocandin analogue, in elderly and non-elderly subjects [abstract no. A-30]. 41st Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2001 Dec 16–19; Chicago.
  38. Pfaller MA, Bale M, Buschelman B, et al. Quality control guidelines for National Committee for Clinical Laboratory Standards recommended broth macrodilution testing of amphotericin B, fluconazole, and flucytosinc. J Clin Microbiol 1995; 33(5):1104–07.
  39. Driessen M, Ellis J, Cooper P, et al. Fluconazole vs amphotericin B for the treatment of neonatal fungal septicemia: a prospective randomized trial. Pediatr Infect Dis J 1996;15:1107–12.
  40. Faix RG. Systemic Candida infections in infants in intensive care nurseries: high incidence of central nervous system in volvement. J Pediatr 1984;105:616–22.
  41. Smego R, Perfect J. Combined therapy with amphotericin B and 5-fluorocytosine for Candida meningitis. Rev Infect Dis 1984;6:791–801.
  42. Hall JE, Cox F, Karlson K, et al. Amphotericin B dosage for disseminated candidiasis in premature infants. J Perinatol 1987;7(3):194–98.
  43. Loke HL, Verber I, Szymonowicz W, et al. Systemic candidiasis and pneumonia in preterm infants. Aust Paediatr J 1988;24(2):138–42.
  44. Butler K, Rench M, Baker C. Amphotericin B as a single agent in the treatment of systemic candidiasis in neonates. Pediatr Infect Dis J 1990;9: 51–56.
  45. Leibovitz E, luster-Reicher A, Amitai M, et al. Systemic candidal infections associated with use of peripheral venous catheters in neonates: a 9-year experience. Clin Infect Dis 1992;14:485–91.
  46. Click C, Graves G, Feldman S. Neonatal fungemia and amphotericin B. South Med J 1993;86: 1368–71.
  47. Donowitz L, Hendley J. Short-course amphotericin B therapy for candidemia in pediatric patients. Pediatrics 1995;95:888–91.
  48. Fernandez M, Moylett EH, Noyola DE, et al. Candidal meningitis in neonates: a 10-year review. Clin Infect Dis 2000;31:458–63.
  49. Zenker PN, Rosenberg EM, Van Dyke RB, et al. Successful medical treatment of presumed Candida endocarditis in critically ill infarits. J Pediatr 1991;119(3):472–77.
  50. Sanchez PJ, Siegel JD, Fishbein J. Candida endocarditis: successful medical management in three preterm infants and review of the literature. Pediatr Infect Dis J 1991;10(3):239–43.
  51. Lilien LD, Ramamurthy RS, Pildes RS. Candida albicans men-ingitis in a premature neonate successfully treated with 5-fluorocytosine and amphotericin B: a case report and review of the literature. Pediatrics 1978;61(1):57–61.
  52. Dennis D, Miller MJ, Peterson CG. Candida septicemia. Surg Gynecol Obstet 1969;119:520–30.
  53. Kozinn PJ. Candida meningitis successfully treated with amphotericin B. N Engl J Med 1963;268:881–84.
  54. Klein JD, Yamachi T, Horlick SP. Neonatal candidiasis, menin gitis, and arthritis: observations and a review of the literature. J Pediatr 1972; 81(1):31–34.
  55. Adler S, Randall J, Plotkin SA. Candida! osteomyelitis and arthritis in a neonate. Am J Dis Child 1972;123(6):595–96.
  56. Mahboubi S, Kaufmann HJ. Schut L. Two instances of in flammatory aqueductal occlusion in prematures after neonatal candidal septicemia. Clin Pediatr (Phila) 1976;15(7):651–53.
  57. Ingomar CJ, Terslev E. Candida albicans meningitis hos en nyft: tilfaelde kompliceret med hydrocephalus. Ugeskr Laeger 1964:126:1110–12.
  58. Nezelof C, Sarrut S. Infections mortelles a Candida chez le nouveau-nd et le nourisson: six observations anatomohisto-logiques.
  59. Bayer AS, Edwards Jr JE, Seidel JS, et al. Candida meningitis:report of seven cases and review of the English literature. Medicine (Baltimore) 1976;55(6):477–86.
  60. Michelson PE, Rupp R, Efthimiadis B. Endogenous Candida endophthalmitis leading to bilateral corneal perforation. Am J Ophthalmol 1975;80(5):800–03.
  61. Pittard WB, Thullen JD, Fanaroff AA. Neonatal septic arthri-tis. J Pediatr 1976;88(4 Pt 1): 621–24.
  62. Adler-Shohet F, Waskin H, Lieberman JM. Amphotericin B lipid complex for neonatal invasive candidiasis. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed 2001;84(2):F131–33.
  63. Ldpez Sastre JB, Coto Cotallo CD, Fernandez Colomer B.Grupo de Hospitales Castrillo. Neonatal invasive candidiasis: a prospective multicenter study of 118 cases. Am J Perinatol 2003;20(3): 153–63.
  64. da Silva LP, Amaral JM, Ferreira NC. Which is the most appropriate dosage of liposomal Amphotericin-B (AmBisome) for the treatment of fungal infections in infants of very low birth weight? Pediatrics 1993;91(6):1217–18.
  65. Arishi H, Frayha HH, Kalloghlian A, et al. Liposomal amphotericin B in neonates with invasive candidiasis. Am J Perinatol 1997;14(9):573–76.
  66. Arishi H, Frayha HH, Kalloghlian A, et al. Liposomal amphotericin B in neonates with invasive candidiasis. Am J Perinatol 1998;15(11):643–48.
  67. Scarcella A, Pasquariello MB, Giugliano B, et al. Liposomal amphotericin B treatment for neonatal fungal infections. Pediatr Infect Dis J 1998;17(2):146–48.
  68. Juster-Reicher A, Leibovitz E, Linder N, et al. Liposomal amphotericin B (AmBisome) in the treatment of neonatal candidiasis in very low birth weight infants. Infection 2000;28(4):223–26.
  69. Wyble LE, Gal P, Ransom JL, et al. Fluconazole use and pharmacokinetics in three premature neonates. Pharmacotherapy 1991;11:269–70.
  70. Fasano C, OTCeeffe J, Gibbs D. Fluconazole treatment of neo-nates and infants with severe fungal infections not treatable with conventional agents. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1994; 13(4):351–54.
  71. Bilgen H, Ozek E, Korten V, et al. Treatment of systemic neonatal candidiasis with fluconazole [letter]. Infection 1995;23(6):394.
  72. Narang A, Agrawal P, Chakraborti A, et al. Fluconazole in the management of neonatal systemic candidiasis. Indian Pediatr 1996;33(10):823–26.
  73. Wainer S, Cooper PA, Gouws H, et al. Prospective study of fluconazole therapy in systemic neonatal fungal infection. Pediatr Infect Dis J 1997;16(8):763–67.
  74. Driessen M, Ellis JB, Muwazi F, et al. The treatment of systemic candidiasis in neonates with oral fluconazole. Ann Trop Paediatr 1997;17(3):263–71.
  75. Huttova M, Hartmanova I, Kralinsky K, et al. Candida fungemia in neonates treated with fluconazole: report of forty cases, including eight with meningitis. Pediatr Infect Dis J 1998;17(11): 1012–15.
  76. Merchant RH, Sanghvi KP, Sridhar N, et al. Nursery outbreak of neonatal fungal arthritis treated with fluconazole. J Trop Pediatr 1997;43(2): 106–08.
  77. Oleinik EM, Della-Latta P, Rinaldi MG, et al. Candida lusitaniae osteomyelitis in a premature infant. Am J Perinatol 1993;10(4):313–15.
  78. Kaufman D, Boyle R, Hazen KC, et al. Fluconazole prophylaxis against fungal colonization and infection in preterm infants. N Engl J Med 2001;345(23):1660–66.
  79. Алексеева В.В., Буслаева Г.Н., Самсыгина Г.А. Нейпоген в терапии тяжелых инфекционных заболеваний у детей. Тезисы V Российского Национального конгресса “Человек и лекарство”. Москва, 1998, 250.
  80. Самсыгина Г.А., Буслаева Г.Н. Кандидоз новорожденных и детей первого года жизни (пособие для практических врачей). М., 2004, 64 с.
  81. Bennett JE. Antifungal agents. In: Hardman GE, Limbird LE, editors. Goodman and Oilman's the pharmacological basis of therapeutics. 10th ed. New York: McGraw-Hill 2001, р. 1295–312.
  82. Raasch RH, Hopfer RL. Antifungal agents. In: Munson PL, editor. Principles of pharmacology: basic concepts and clinical applications, revised reprint. New York: Chapman and Hall 1995, р. 1401–11.
  83. Tollins JP, Raij L. Adverse effects of amphotericin B adminis-tration on renal hemodynamics in the rat: neurohumoral mechanisms and influence of calcium channel blockade. J Pharmacol Exp Ther 1998;245:594–99.
  84. Steinmetz PR, Hustead RF. Amphotericin B toxicity of epi-thelial cells. In: Porter GA, editor. Nephrotoxic mechanisms of drugs and environmental toxins. New York (NY): Kluwer Academic/Plenum Publishers 1982, р. 9S–8.
  85. Ramos KS, Chacon E, Acosta D. Toxic responses of the heart and vascular systems. In: Klassen CD, editor. Casarett and Doul's toxicology: the basic science of poisons. 5th ed. New York: McGraw-Hill 1996, р. 498–501.
  86. Frattarelli DAC, Reed MD, Giacoia GP, et al. Antifungals in Systemic Neonatal Candidiasis. Drugs 2004;64(9):949–98.
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.