ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Значение нарушений механизмов самозащиты почки при хроническом гломерулонефрите

Н.В. Чеботарева, И.Н. Бобкова, Л.В. Козловская, О.А. Ли

ГОУ ВПО “Первый МГМУ им. И.М. Сеченова” Минздравсоцразвития России, Москва
В обзоре рассмотрены механизмы самозащиты ткани почки (индуцибельные и конституциональные), противостоящие процессам иммунного воспаления и фиброза при хроническом гломерулонефрите. Детально обсужден ряд противовоспалительных факторов, представляющих перспективное направление терапевтического воздействия при прогрессирующих заболеваниях почек.

Ключевые слова

хронический гломерулонефрит
механизмы самозащиты
противовоспалительные цитокины
липоксины
ингибиторы протеолиза
белки теплового шока

Среди механизмов, определяющих течение и исход заболеваний почек, наиболее изученными в настоящее время являются повреждающие (эффекторные) звенья патогенеза – формирование клеточного воспалительного инфильтрата, высвобождение воспалительных цитокинов, метаболитов
арахидоновой кислоты и кислородных радикалов, активация компонентов комплемента. Однако степень повреждения ткани почки зависит от баланса локально воздействующих повреждающих факторов и противостоящих им медиаторов самозащиты, при этом активация факторов локальной самозащиты тканей в ответ на повреждение представляет собой универсальную запрограммированную реакцию.

Находясь в воспалительном микроокружении, клетки почечной ткани могут приобретать толерантность к воспалительным стимулам – потенциал самозащиты от дальнейшего повреждения [1]. Эндогенные протективные медиаторы, которые могут изменять течение патологического воспалительного процесса в почке, представляют особый интерес для понимания основных закономерностей прогрессирования поражения почек. В основе формирования “противовоспалительного статуса” ткани почки лежит активация факторов самозащиты на
различных уровнях – вне- и внутриклеточном, а также на поверхности клеток (см. таблицу). В обзоре представлены протективные факторы, введение которых экспериментальным животным эффективно подавляет воспаление при различных иммуновоспалительных заболеваниях и является перспективным для разработки новых направлений терапевтического воздействия на человека.

Ингибиторы воспалительных медиаторов

Одним из механизмов ограничения воспаления в почке является выделение специфических ингибиторов провоспалительных медиаторов, которые могут секретироваться как клетками воспалительного инфильтрата, так и резидентными клетками ткани почки.

Антагонист рецептора интерлейкина-1 (ИЛ-1ra)

Интерлейкин-1 (ИЛ-1) – провоспалительный цитокин, продуцируется клетками воспаления, вызывает высвобождение и экспрессию других воспалительных медиаторов (цитокинов/факторов роста, хемокинов, биоактивных липидов, металло-протеиназ и реактивных радикалов кислорода, адгезивных
рецепторов), пролиферацию резидентных клеток, накопление экстрацеллюлярного матрикса [2]. Естественным ингибитором ИЛ-1 является антагонист рецептора ИЛ-1 (ИЛ-1ra) [3]. В здоровых почках крыс экспрессия ИЛ-1ra не определяется, однако она существенно увеличивается при экспериментальном анти-БМК-нефрите. В этой модели экспрессия ИЛ-1ra достигает пика (10–20-кратного повышения) через 6 часов после индукции и персистирует до 4 суток. Но этого количества эндогенного ИЛ-1ra оказывается недостаточно для подавления ИЛ-1-индуцированного воспаления, поскольку для осуществления протективного эффекта ИЛ-1ra должно быть заблокировано более 95 % рецепторов к ИЛ-1 [4, 5].

Баланс ИЛ-1 и ИЛ-1ra лежит в основе регуляции воспалительного ответа. Величина продукции ИЛ-1ra тесно связана с генетическими факторами; продемонстрировано значение аллеля-2 ИЛ-1ra (IL1RN-2) как предиктора развития заболеваний почек [6]. Так, носители аллеля IL1RN-2 отличаются низкой продукцией (низкие продуценты) защитного ИЛ-1ra моноцитами в ответ на воспалительные стимулы, но при сохранении уровня продукции провоспалительного ИЛ-1 [7]. У гомозиготных носителей этого аллеля отмечается прогрессирующее течение гломерулонефрита и диабетической нефропатии с быстрым формированием терминальной почечной недостаточности – в среднем через 1,5 и 2,2 года соответственно [8, 9]. В исследовании V. Rauta у больных IgA-нефропатией уровень экскретируемого с мочой ИЛ-1ra был ниже, чем у здоровых лиц. Уровень экскреции ИЛ-1ra и ИЛ-1 не коррелировал с величиной протеинурии, длительностью болезни и гистологической картиной в биоптатах почки. Однако при более высоком индексе ИЛ-1ra/ИЛ-1 процессы накопления мезангиального матрикса, а также степень интерстициального воспаления и фиброза были менее выражены, чем при низком
или нормальном соотношении ИЛ-1ra/ИЛ-1β [10]. Кроме того, высокая концентрация ИЛ-1ra в сыворотке крови и моче больных протеинурическими формами IgA-нефропатии определяли хороший ответ на иммуносупрессивную терапию и меньший риск нарушения функции почек [11]. В исследовании G. Sturfelt и соавт. выявлены также низкие значения ИЛ-1ra в сыворотке крови больных с волчаночным нефритом в отличие от повышенных концентраций ИЛ-1ra у больных СКВ без поражения почек [12].

При введении ИЛ-1ra экспериментальным животным с тяжелым прогрессирующим анти-БМК-нефритом уменьшалось количество полулуний, капиллярных тромбов в клубочках, степень гломерулосклероза, а также тубулярной атрофии и интерстициального фиброза, что сопровождалось снижением протеинурии и сохранением функции почек [13]. Протективное противовоспалительное и антифиброгенное действие ИЛ-1ra наиболее выражено в тубулоинтерстициальном отделе почки, где отмечаются торможение экспрессии адгезивной молекулы ICAM-1 и уменьшение макрофагальной инфильтрации в эндотелии перитубулярных капилляров и на поверхности тубулярных клеток [14].

Тканевые ингибиторы матриксных металлопротеиназ (ТИМП)

Как показали исследования последних лет, ТИМП являются многофункциональными протеинами и способны оказывать разнообразные эффекты, связанные главным образом с регуляцией активности основных протеолитических ферментов – матриксных металлопротеиназ (ММП) [15]. ММП играют
ключевую роль в расщеплении компонентов экстрацеллюлярного матрикса (ЭЦМ), базальных мембран и цитоскелета клеток. Субстратом действия ММП помимо матриксных белков являются цитокины, факторы роста и их рецепторы, молекулы клеточной адгезии, хемокины, что объясняет регулирующую функцию системы ММП/ТИМП в механизмах воспаления, фиброза, в межклеточных и клеточно-матриксных взаимодействиях, клеточной миграции, в процессах эпителиально-мезенхимальной трансдифференциации [16, 17]. Установлены эффекты ТИМП, напрямую не связанные с ингибированием протеолитической активности ММП, в частности участие в регуляции процессов клеточного роста, пролиферации, апоптоза.

В физиологических условиях в почке функционирует сбалансированная система ММП/ТИМП. Нарушение соотношения компонентов этой системы может быть одним из патогенетических механизмов развития ряда острых и хронических заболеваний почек, в т. ч. и ХГН [18]. На определенных этапах увеличение
экспрессии в ткани почки ТИМП можно рассматривать как адаптивное, направленное на ограничение провоспалительных эффектов ММП. Увеличение уровня ТИМП, сопровождающееся снижением ММП, ассоциируется с усиленным накоплением фиброза в клубочках и особенно в интерстиции почки, что
приводит к развитию почечной недостаточности. В последние годы появилась возможность определения отдельных факторов системы протеолиза в моче больных ХГН, но исследования такого направления пока единичны.

Нами был проведен комплексный анализ изменений уровня в моче ММП и их ингибиторов (ТИМП и ПАИ-1) на разных стадиях течения ХГН в сопоставлении с выраженностью морфологических изменений в почке [19]. Мы установили, что с нарастанием активности заболевания (высокая протеинурия, нефротический синдром, остронефротический синдром) отмечается однонаправленный характер изменений всех факторов – увеличение в моче ММП и их ингибиторов (ТИМП и ПАИ-1), отличающееся только количественно. По нашему мнению, такие однонаправленные изменения носят адаптационный характер в условиях активного воспаления в почке. У больных ХГН со стойкой почечной недостаточностью (ПН) был отмечен дисбаланс в системе протеолиза, характеризующийся резким снижением уровня в моче ММП, ТИМП и непропорционально высокой активностью ПАИ-I. Такой
спектр мочевых биомаркеров, по нашему мнению, отражает дезадаптационные изменения в почке – ослабление механизмов протеолиза, усиление фиброгенеза, приводящее к развитию почечной недостаточности.

Полученное в последние годы подтверждение важной роли компонентов системы ММП/ТИМП в механизмах воспаления и фиброза в почке обосновывает новые подходы к нефропротекции путем целенаправленного воздействия на ММП и ТИМП, в частности, через нивелирование эффектов основных провоспалительных и профиброгенных цитокинов – ангиотензина II и трансформирующего фактора роста β1.

Инактиваторы лейкоцитов и резидентных клеток

В период выздоровления при остром гломерулонефрите инфильтрирующие почку воспалительные лейкоциты подвергаются инактивации, взаимодействуют с медиаторами защиты – противовоспалительными цитокинами и биоактивными липидами, играют важную роль в предотвращении персистирования (хронизации) воспаления.

Интерлейкин-10

Интерлейкин-10 (ИЛ-10) (молекулярный вес – 37кДА) многофункциональный противовоспалительный цитокин. Главными источниками ИЛ-10 in vivo являются лимфоциты и макрофаги [20], а также активированные резидентные клетки, аутокринным путем подавляющие продукцию различных воспалительных цитокинов соседними клетками [21]. Секреция ИЛ-10 начинается через несколько часов после действия провоспалительных факторов – иммунных комплексов, липополисахаридов, простагландинов, катехоламинов, цитокинов, главным образом – ФНО-α [22, 23].

Противовоспалительные факторы ткани почки

Основные иммунологические эффекты ИЛ-10 связаны с регуляцией баланса Т-хелперов первого типа/Т-хелперов второго типа (Th1/Th2) [20]. Активация Th1 через секрецию ФНО-α, ИЛ-2 и интерферона-γ ведет к стимуляции главным образом Т-лимфоцитов и макрофагов и развитию клеточного типа ответа (Т-клеточная цитотоксичность, активация макрофагов, клеточноопосредованное воспаление), тогда как Th2-цитокины (ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-6, ИЛ-10, ИЛ-13 и ИЛ-25) имеют противовоспалительные свойства,
ингибируя активацию макрофагов, пролиферацию Т-клеток и продукцию провоспалительных цитокинов, стимулируя гуморальное звено иммунитета – синтез антител IgE, IgA, некомплементарное связывание IgG [24]. Продукцию ИЛ-10 помимо Th2 осуществляют особые регуляторные противовоспалительные Т-клетки (CD4+, CD25+ и Tr1). Повышение уровня ИЛ-10 подавляет Th1-клеточно-опосредованное повреждение и сдвигает баланс Th1/Th2-преимущественно в сторону Th2-противовоспалительных цитокинов [25].

Помимо влияния на баланс Т-хелперов ИЛ-10 ингибирует в мононуклеарных клетках продукцию воспалительных цитокинов, хемокинов, адгезивных молекул, реактивных радикалов кислорода и простагландинов, литических ферментов моноцитов – матриксных металлопротеиназ, супероксид-
анионов [26, 27, 28].

Противовоспалительный эффект ИЛ-10 был оценен в экспериментальных моделях гломерулонефрита. У крыс с нефротоксическим сывороточным нефритом, профилактически получавших инъекции ИЛ-10 за сутки до инициации нефрита, величина протеинурии была на 75 % ниже, чем в контроле [29]. В модели с анти-БМК-нефритом у мышей назначение ИЛ-10 оказывало не только профилактический, но и лечебный эффект. Рекомбинантный ИЛ-10 предотвращал образование полулуний, отложение фибрина в клубочках, накопление Т-лимфоцитов и макрофагов в ткани почки, что приводило к
снижению протеинурии и креатинина сыворотки [30].

Результаты применения ИЛ-10 при экспериментальном анти-Thy1-мезангиопролиферативном нефрите подтвердили не только противовоспалительную (уменьшение экспрессии ИЛ-1β и ICAM-1 в клубочках), но и антипролиферативную роль ИЛ-10 (уменьшение пролиферации мезангиальных клеток) [31].

В экспериментальных моделях нефротоксического нефрита и анти-БМК-нефрита активация Th1-клеток и уменьшение продукции ИЛ-10 ведут к клеточно-опосредованному повреждению клубочка – часто с формированием полулуний (экстракапиллярная пролиферация, накопление моноцитов и Т-клеток) [32]. У человека тяжелые и быстропрогрессирующие формы ГН с морфологической картиной анти-БМК-нефрита с полулуниями, ANCA-ассоциированого ГН, редкие случаи мембранозной нефропатии с формированием полулуний характеризуются активацией преимущественно Th1-зависимого механизма гиперчувствительности замедленного типа с дефицитом ИЛ-10 [33, 34, 35]. При пролиферативных формах нефрита, в т. ч. при диффузном пролиферативном волчаночном нефрите, выявляется более низкий, чем при непролиферативных формах (мембранозная нефропатия, нефрит с минимальными изменениями), уровень цитокинов Th2, включая ИЛ-10 [36]. Таким образом, у больных с преимущественным Th1-клеточным иммунным ответом и дефицитом противовоспалительных,
антипролиферативных цитокинов, в первую очередь ИЛ-10, развиваются тяжелые прогрессирующие формы поражения почек – часто с формированием полулуний, требующих наиболее активного лечения.

С учетом эффективности применения ИЛ-10 при экспериментальном нефрите можно предполагать положительные результаты и в лечении гломерулонефрита у человека. Особенно это касается нефритов с тяжелым прогрессирующим течением с доминированием Th1-клеточного иммунного ответа
(морфологически – пролиферативные формы с образованием полулуний).

Протективная роль регуляторных иммунных клеток при повреждении почечной ткани

Исследованиями последних лет продемонстрирована не только повреждающая, но и протективная роль клеток почечного инфильтрата (Т-лимфоцитов, макрофагов и дендритных клеток) в торможении гломерулярного и тубулоинтерстициального воспаления. В некоторых экспериментальных моделях заболеваний почек установлено, что отдельные подтипы CD4+ Т-хелперных клеток являются протективными или регуляторными: мигрируя в очаг повреждения, они блокируют патогенные подтипы Т-клеток, уменьшают воспаление и тормозят развитие заболевания [37]. Позже была показана принадлежность этих клеток к субпопуляции CD4+CD25+ (Tрег), участвующей в механизме формирования иммунологической толерантности к собственным антигенам и обеспечивающей негативный контроль иммунного ответа, в т. ч. аутоиммунного. При заболеваниях почек “адаптивные”
Трег могут оказывать супрессивное действие на эффекторные и цитотоксические Т-лимфоциты почечного инфильтрата при непосредственном клеточном контакте, а также путем продукции противовоспалительных цитокинов и усиления апоптоза [38, 39]. Более того, Трег снижают активацию и пролиферацию других клеток воспалительного инфилтрата – макрофагов дендритных клеток, В-, NK-клеток и нейтрофилов [40].

Хорошо известна роль в механизмах прогрессирования заболеваний почек макрофагов, однако появились данные о том, что макрофаги могут иметь и протективное значение, участвуя в процессе репарации почечной ткани после повреждения. Эти макрофаги относятся к “альтернативному”
фенотипу – М2. Активация макрофагов по альтернативному пути происходит под действием Th2-цитокинов – ИЛ-4 или ИЛ-13 (М2а), а также иммунных комплексов в комбинации с ИЛ-1β или липополисахаридами (М2в) или при добавлении ИЛ-10, ТФР-β, глюкокортикоидов (М2с)[ 41]. В результате формируется М2-иммуногрегуляторный/иммуносупрессивный фенотип, участвующий в разрешении воспалительного процесса и репарации [42]. Наряду с подавлением секреции
провоспалительных медиаторов иммунными клетками М2 характеризуются повышенной способностью к фагоцитозу, усиленной продукцией противовоспалительных и трофических факторов: ИЛ-1ра, аргиназы-1 (тормозящей продукцию NO), ТФР-β [43, 44].

Противовоспалительные эйкозаноиды

Липоксины

В последние годы появились данные, свидетельствующие об участии в резолюции воспаления эндогенных липидных медиаторов с противовоспалительными свойствами. В то время как в начальной фазе иммунного ответа преобладают липидные медиаторы воспаления (лейкотриены, простагландины), в дальнейшем происходит “переключение” на противовоспалительные липоксины. Липоксины – продукты метаболизма арахидоновой кислоты, которые продуцируются локально в очаге воспаления в процессе различных межклеточных взаимодействий: при контакте нейтрофилов с эпителиальными клетками или тромбоцитами происходит активация липоксигеназы (ЛО) с образованием липоксинов А4 и В4 [45]. При приеме аспирина ацетилирование циклооксигеназы-2 на
эндотелии в очаге воспаления приводит к синтезу аспирининдуцированных липоксинов (АИЛ) с более высоким, чем нативные липоксины, потенциалом – 15-эпи-липоксин А4 или 15-эпи-липоксин В4 [46].

Потенциальными активаторами синтеза липоксинов при межклеточных взаимодействиях являются Th2-цитокины – ИЛ-4 и ИЛ-13, повышающие экспрессию ЛО на моноцитах и эпителиальных клетках [47, 48]. Полагают, что липоксины выполняют роль эндогенных “стоп”-сигналов для миграции нейтрофилов в очаг воспаления [49]. Нативные липоксины, АИЛ и их синтетические аналоги ингибируют все этапы миграции нейтрофилов в очаг воспаления – хемотаксис, адгезию к эндотелиальным клеткам, “качение” вдоль слоя эндотелия, трансмиграцию через эндотелиальные клетки [50]. По-видимому, противовоспалительный потенциал липоксинов очень широк, т. к. назначение синтетического аналога 15-эпи-липоксина А4 в ранней фазе экспериментального анти-БМК-нефрита вело к ингибиции транскрипции 21-го гена провоспалительных медиаторов [51]. Липоксины способствуют формированию макрофагов М2, приводя к повышению их фагоцитарной активности, не сопряженной с высвобождением провоспалительных цитокинов [52], обладают антипролиферативным действием на мезангиальные клетки клубочков и являются потенциальными ингибиторами сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) [53, 54]. Кроме того, липоксины могут повышать почечный кровоток и уровень клубочковой фильтрации [55].

Продукция липоксинов была изучена при остром постстрептококковом гломерулонефрите (ОГН) у детей – ярком примере спонтанного выздоровления, при котором эндогенные механизмы самозащиты оказываются состоятельными, характеризуясь адекватным синтезом противовоспалительных факторов. Начало разрешения воспаления приходилось на пик экспрессии 15-ЛО и липоксина А4 (LXA4), по времени совпадало со значительным снижением количества лейкотриена В4 (LTB4) и инфильтрации ткани почки нейтрофилами [56].

В отличие от ОГН при хроническом течении гломерулонефрита отмечается уменьшение индекса LXA4/LTB4, свидетельствующее о выраженном дисбалансе между этими факторами [57]. Так, у больных с развитием нефрита при пурпуре Шенлейн –Геноха экспрессия 15-ЛО в ткани почки, а также уровень LXA4 в сыворотке крови и моче были ниже, чем у больных без поражения почек, эти показатели коррелировали с тяжестью нефрита [58].

Белки теплового шока

Белки теплового шока (БТШ) – внутриклеточные высокостабильные белки, которые контролируют образование и обмен других внутриклеточных белков и участвуют в поддержании целостности клетки, функционируя как молекулярные шапероны. БТШ объединяются в семейства по молекулярному весу:
малые БТШ (16–40кДа), БТШ 60кДа, БТШ 70кДа, БТШ 90кДа, 110БТШкДа. Наряду с конституциональными БТШ, которые экспрессируются в норме в количестве 5–10 % всех белков
клетки, существуют индуцибельные БТШ, составляющие до 15 % всех клеточных белков, синтез которых повышается в ответ на различные виды повреждающего внешнего воздействия: температурный, оксидантный, токсический, осмотический, а также воспалительный стресс. В ткани почки в норме экспрессируются многие БТШ, уровень их экспрессии изменяется после повреждения [59]. Так, экспрессия БТШ 70 резко возрастает при ишемической и токсической почечной недостаточности [60, 61], а также после ишемии-реперфузии [62]. Повышение уровня БТШ внутри клетки при повреждении играет роль в восстановлении структуры частично денатурированных протеинов и в деградации белков, не подлежащих восстановлению [63].

Цитопротективная функция низкомолекулярного БТШ 27 обусловлена взаимодействием с актиновым цитоскелетом, что обеспечивает стабилизацию актиновых волокон клетки в условиях воздействия (стресса), например, под влиянием ФНО-α [64]. Структура ножек подоцитов – неотъемлемой части фильтрационного барьера почки – напрямую зависит от состояния актиновых микрофиламентов и процессов их полимеризации, регулируется БТШ 27. Недостаточная экспрессия БТШ 27 в подоцитах может приводить к утрате нормальной структуры фильтрационного барьера клубочков почек и развитию протеинурии [65].

Таким образом, увеличение синтеза БТШ внутри клетки в ответ на различные повреждающие факторы, в т. ч. воспалительные, является адаптивным защитным механизмом, повышающим резистентность клеток к клеточному стрессу и предотвращающим гибель клеток за счет стабилизации и восстановления поврежденных белковых молекул [66]. БТШ могут высвобождаться во внеклеточную среду или экспрессироваться на поверхности клеток и таким образом контролировать воспаление [67].

Роль БТШ в Т-клеточной регуляции хронического воспаления

Белки теплового шока, особенно белки семейства 60 и 70, относятся к иммунодоминантным молекулам, т. е. пептидные последовательности микробных БТШ 60 и 70 являются основными эпитопами, стимулирующими противоинфекционный иммунный ответ. Для БТШ прокариотических (бактерий) и
эукариотических клеток (млекопитающих и человека) характерна высокая степень гомологии, достигающая 50–60 % (как, например, для семейства БТШ 60) [68]. Это может означать, что белки теплового шока являются потенциальными кандидатами для молекулярной мимикрии и способны
играть роль в развитии не только противоинфекционного иммунитета, но и аутоиммунитета [69]. Данные о повышении уровня БТШ 60 и 70 при иммунных, в т. ч. аутоиммунных заболеваниях – диабете, ревматоидном артрите, склеродермии, а также при трансплантации органов, свидетельствуют
в пользу этого предположения [70, 71]. В исследовании Н.А. Мухина и соавт. уровень антител к БТШ 70 были значительно выше у больных с системной красной волчанкой, дерматомиозитом и хроническим гломерулонефритом, чем у здоровых лиц [72].

Первым доказательством того, что БТШ оказывают противовоспалительный эффект, т. е. играют протективную роль при иммуновоспалительных заболеваниях, были результаты исследования с введением экспериментальным животным с аутоиммунным адьювантным артритом БТШ 60, свидетельствующие о последующем торможении развития заболевания [73].

При воспалении и повреждении клеток внутриклеточно расположенные белки теплового шока могут экспрессироваться на их поверхности или выделяться во внеклеточное пространство. Эпитопы БТШ распознаются Т-клетками, что приводит к формированию регуляторных противовоспалительных фенотипов реактивных Т-клеток [74]. В результате происходит “переключение” Th1-фенотипа на Th2 c повышением уровня противовоспалительных ИЛ-10 и ИЛ-4 в Т-лимфоцитах [75].

Противовоспалительный потенциал БТШ при заболеваниях почек мало изучен. Выявлено повышение внеклеточной экспрессии БТШ при экспериментальном нефрите [76], а также у больных с различными формами нефрита: при нефрите с минимальными изменениями, ФСГС; мембранозной нефропатии, пролиферативных формах гломерулонефрита, включая волчаночный нефрит [63, 77].

Заключение

Исследования последних лет были сосредоточены в основном на повреждающих механизмах развития заболеваний почек, однако в ткани почки существует многоуровневая конституциональная защитная система, экспрессирующая разнообразные медиаторы защиты, с помощью которых эта система противостоит факторам повреждения. Протективные механизмы, т. н. индуцированная защита, являются неотъемлемым компонентом процесса воспаления. Благодаря активации этой системы влияние воспалительных цитокинов (ИЛ-1, ФНО-α и др.) ограничивается соответствующими ингибиторами или
взаимодействующими цитокинами. Для системы самозащиты в почке характерно формирование каскадов защитных молекул. Например, ИЛ-10 может повышать экспрессию нескольких протективных ИЛ-1ра и рецептора к ФНО-α, а также БТШ в ткани почки. ИЛ-4 и ИЛ-13 стимулируют продукцию ИЛ-1ра и липоксинов. Главным источником противовоспалительных факторов, ограничивающих дальнейшее распространение воспаления, являются “альтернативные” клетки воспалительного
инфильтрата почки: регуляторные Т-лимфоциты (CD4+CD25+) и “альтернативные” М2-макрофаги. В основе противовоспалительного действия экспрессирующихся на поверхности БТШ (60 и 70) лежит активация регуляторных клеток инфильтрата и секреция ими противовоспалительных цитокинов.

Своевременная реализация противовоспалительной составляющей процесса воспаления – залог успешного его разрешения и выздоровления. Например, значительное повышение количества липоксинов в почке в период выздоровления при ОГН в эксперименте и у человека позволяет отнести их к важным молекулам-регуляторам, способным ограничить воспалительный процесс. Несостоятельность (недостаточность) эндогенных механизмов самозащиты почки приводит к персистированию эффекторного, повреждающего звена воспаления и способствует прогрессирующему течению болезни. О дисбалансе между про- и противовоспалительными
факторами при хронических прогрессирующих заболеваниях почек можно судить по индексам ИЛ1ра/ИЛ-1β, ММП/ТИМП, а также LXА4/LTВ4 в моче.

Усиление эндогенных защитных механизмов путем введения ключевых протективных факторов, способных модулировать воспаление в почке и “переключать” этот процесс в сторону ограничения/резолюции, представляет собой перспективное направление терапевтического воздействия при прогрессирующих заболеваниях почек.

Список литературы

1. Kitamura M. TGF-β as an endogenous defender against macrophagetriggered stromelysin gene expression in the glomerulus. J Immunol 1998; 160:5163–5168.
2. Sedor J.R., Nakazato Y., Konieczkowski M. Interleukin-1 and the mesangial cell. Kidney Int 1992;41:595–599.
3. Arend W.P. Interleukin-1 receptor antagonist: A new member of the interleukin-1family. J Clin Invest 1991;88:1445–1451.
4. Tam F.W.K, Smith J., Cashman S.J. et al. Glomerular expression of interleukin receptor antagonist and interleukin-1β genes in antibody-mediated glomerulonephritis. Am J Pathol 1994;145:126–136.
5. Arene W.P., Welgus H.G., Thompson R.C. et al. Biologic properties of recombinant human monocyte-derivated interleukin-1 receptor antagonist. J Clin Invest 1990;85:1694–1697.
6. Luttropp K., Lindholm B., Carrero J.J. et al. Genetics/genomics in chronic kidney disease – towards personalized medicine? Seminars in Dialysis 2009;22(4):417–422.
7. Liu Z., Yang J., Chen Z. et al. Gene polymorphism in IL-1 receptor antagonist affects its production by monocytes in IgA nephropathy and Henoch-Schonlein nephritis. Chin Med J 2001;114(12):1313–1316.
8. Buraczynska M., Ksiazek P., Kubit P. et al. Interleukin-1 receptor antagonist gene polymorphism affects the progression of chronic renal failure. Cytokine 2006;36(3–4):167–172.
9. Hahn W.H., Cho B.S., Kim S.K. et al. Interleukin-1 cluster gene polymorphism in childhood IgA nephropathy. Pediatr Nephrol 2009;24(7): 1329–1336.
10. Rauta V., Teppo A-M., Tornroth T. et al. Lower urinary interleukin-1 receptor antagonist excretion in IgA nephropathy than in Henoch-Schonlein nephritis. Nephrol Dial Transplant 2003;18:1785–1791.
11. Zwiech R., Kacprzyk F., Szuflet A. et al. Prognostic values of serum concentration and urinary excretion of interleukin-1 receptor antagonist and tumor necrosis factor receptors type I and II in patients with IgA nephropathy. Pol Arch Med Wewn 2005;113(4):326–333.
12. Sturfelt G., Roux-Lombard P., Wollheim F.A. et al. Low levels of interleukin-1 receptor antagonist coincide with kidney involvement in systemic lupus erythematosus. British J Rheumatology 1997;36:1283–1289.
13. Chen A., Sheu L.F., Chou W.Y. et al. Interleukin-1 receptor antagonist modulates the progression of a spontaneously occurring IgA nephropaty in mice. Am J Kidney Dis 1997;30(5):693–702.
14. Nikolic-Paterson D.J., Lan H.Y., Hill P.A. et al. Supression of experimental glomerulonephritis by the interleukin-1 receptor antagonist: Inhibition of intercellular adhesion molecule-1 expression. J Am Soc Nephrol 1994; 4:1695–1700.
15. Visse R., Nagase H. Matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases: structure, function and biochemistry. Circ Res 2003; 92:827–839.
16. Wojtovicz-Praga S.M., Dickson R.M., Hawkins M.J. et al. Matrix metalloproteinases inhibitors. Invest New Drugs 1997;15:61–75.
17. Marti H.P. Role of matrix metalloproteinases in the progression of renal lesion. Press Med 2000;29:811–817.
18. Бобкова И.Н., Козловская Л.В., Ли О.А. Матриксные металлопротеиназы в патогенезе острых и хронических заболеваний почек // Нефрология и диализ 2008. № 2(10). C. 105–111.
19. Ли О.А., Бобкова И.Н., Козловская Л.В. Клиническое значение определения матриксных металлопротеиназ и их ингибиторов в моче больных хроническим гломерулонефритом // Терапевтический архив 2009. № 8. C. 10–14.
20. Asadullah K., Sterry W., Volk H.D. Interleukin-10 therapy – review of a new approach. Pharmacol Rev 2003;55:241–269.
21. Fouquerbay B., Boutard V., Phillipe C. et al. Mesangial cell-derived interleukin-10 modulates mesangial cell response to lipipolysaccharide. Am J Pathol 1995;147:176–182.
22. Stenvinkel P., Ketteler M., Jonson J.R. et al. IL-10, Il-6 and TNF-α: Central factors in the altered cytokine network of uremia – The good, the bad, and the ugly. Kidney Int 2005;67:1216–1233.
23. Wanidvoranun C, Strober W. Predominant role of tumor necrosis factor-α in human monocyte IL-10 synthesis. J Immunol 1993;151:6853–6861.
24. Chan R.W., Lai F.M., Li E.K. et al. Imbalance of Th1/Th2 transcription factors in patients with lupus nephritis. Rheumatology 2006;45:951–57.
25. Симбирцев А.С. Цитокины – новая система регуляции защитных реакций организма // Цитокины и воспаление 2002. № 1(1). C. 9–16.
26. de Waal Malefyt R., Abrams J. et al. Interleukin-10 inhibits cytokine synthesis by human monocytes: An autoregulatory role of IL-10 produced by monocytes. J Exp Med 1991;174:1209–1220.
27. Olszina D.P., Pajkrt D., Lauw F.N. et al. Interleukin-10 inhibits the release of CC chemokines during human endotoxemia. J Infect Dis 2000;181:613–20.
28. Kuga S., Otsuka T., Niiro H. et al. Supression of superoxide anion production by interleukin-10 is accompanied by a downregulation of the genes for subunit proteins of NADPH oxidase. Exp Hematol 1996;24:151–57.
29. Fouqueray B., Suberville S., Isaka Y. et al. Reduction of proteinuria in antiglomerular basement membrane nephritis by interleukin-10 (IL-10) gene transfer. J Am Soc Nephrol 1996;7:1698–1701.
30. Tipping P.G., Kitching A.R., Huang X.R. et al. Immune modulation with interleukin-4 and interleukin-10 prevent crescent formation and glomerular injury in experimental glomerulonephritis. Eur J Immunol 1997;27:530–537.
31. Kitching A.R., Katerelos M., Mudge S.J. et al. Interleukin-10 inhibits experimental mesangial proliferative glomerulonephritis. Clin Exp Immunol 2002;128:36–43.
32. Coelho S.N., Saleem S., Konieczny B.T. et al. Immunologic determinants of susceptibility to experimental glomerulonephritis: role of cellular immunity. Kidney Int 1997;51:646–652.
33. Cairns L.S., Phelps R.G., Bowie L. et al. The fine specificity and cytoline profile of T-helper cells responsive to the alfa3 chain of type IV collagen in Goodpasture’s disease. J Am Soc Nephrol 2003;14:2801–2812.
34. Masutani K., Tokumoto M., Nakashima H. Strong polarization toward Th1 immune response in ANCA-associated glomerulonephritis. Clin Nephrol 2003;59:395–405.
35. Tipping P.G., Kitching A.R. Th1 and Th2:what’s new? Clin and Exp Immunol 2005;142:207–215.
36. Romagnani S. Biology of human Th1 and Th2 cells. J Clin Immunol 1995;15:121–129.
37. Wang Y.P., Kairaitis L., Tay Y.C. et al. Reconstitution of CD4+ T cells protects renal injury in SCID mice with adriamycin nephropathy (abstract). J Am Soc Nephrol 2001;12:644.
38. Pandiyan P., Zheng L., Ishihara S. et al. CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells induce cytokine deprivation-mediated apoptosis of effector CD4+ T cells. Nat Immunol 2007;8:1353–1362.
39. Scheffold A., Murphy K.M., Hofer T. Competition for cytokines: T(reg) cells take all. Nat Immunol 007;8:1285–1287.
40. Taams L.S., van Amelsfort J.M., Tiemessen M.M. et al. Modulation of monocyte/macrophage function by human CD4+/CD25+ regulatory T cells. Hum Immunol 2005;66:222–230.
41. Martinez F.O., Sica A., Mantovani A., et al. Macrophage activation and polarization. Front Biosci 2008;13:453–461.
42. Wang Y., Wang Y.P., Zheng G. et al. Ex vivo programmed macrophages ameliorate experimental chronic inflammatory renal disease. Kidney Int 2007;72:290–299.
43. Mosser D.M. The many faces of macrophage activation. J Leukoc Biol 2003;73:209–212.
44. Wilson H.M., Walbaum D., Rees A.J. Macrophages and the kidney. Curr Opin Nephrol Hypertens 2004;13:285–290.
45. Papayianni A., Serhan C.N., Philips M.L. et al. Transcellular biosynthesis of lipoxin A4 during adhesion of platelets and neutrophils in experimental immune complex glomerulonephritis. Kidney Int 1995;47:1295–1302.
46. Claria J., Serhan C.N. Aspirin triggers previously undescribed bioactive eicosanoids by human endothelial cell-leukocyte interaction. Proc Natl Acad Sci USA 1995;92:9475.
47. Conrad D.J., Kuhn H, Mulkins M. et al. Specific inflammatory cytokines regulate the expression of human monocyte 15-lipoxygenase. Proc Natl Acad Sci USA 1992;89:217–221.
48. Brinckmann R., Topp M.S., Zalan I. et al. Regulation of 15-lipoxygenase expression in lung epithelial cells by interleukin-4. Biochem J 1996; 318:305–312.
49. McMahon B., Mitchell S., Brady H.R. et al. Lipoxins: Revelation on resolution. Trends Pharmacol Sci 2001;8:391–395.
50. Colgan S.P., Serhan C.N., Parcos C.A. et al. LipoxinA4 modulates transmigration of human neutrophils across intestinal epithelial monolaeyrs. J Clin Invest 1993;92:75–82.
51. Ohse T., Ota T., Kieran N. et al. Modulation of interferon-induced genes by lipoxin analogue in anti-glomerular basement membrane nephritis. J Am Soc Nephrol 2004;15:919–927.
52. Godson C., Mitchell S., Harvey K. et al. Cutting edge: Lipoxins rapidly stimulate nonphlogistic phagocytosis of apoptotic neutrophils by monocytederived macrophages. J Immunol 2000;164:1663–1667.
53. McMahon B., Mitchell D., Shattock R. et al. Lipoxin, leukotriene and PDGF receptors cross-talk to regulate mesangial cell proliferation. FASEB J 2002;16:1817–1819.
54. Fierro I.M., Kutok J.L., Serhan C.N. Novel lipid mediator regulators of endothelial cell proliferation and migration: Aspirin-triggered-15R-lipoxin A4 and lipoxin A4. J Pharmacol Exp Ther 2002;300:385–392.
55. Katoh T., Takahashi K., DeBoer D.K. et al. Renal hemodynamic actions of lipoxins in rats: A comparative physiological study. Am J Physiol 1992; 263:436–442.
56. Wu S.-H., Liao P.-Y., Yin P.-L. et al. Elevated expression of 15-lipoxigenase and lipoxin A4 in children with acyte poststreptococcal glomerulonephritis. AnJ Pathol 2009;174:115–122.
57. Boutet P., Bureau F., Dengand G. et al. Inbalance between lipoxin A4 and leukotriene B4 in chronic mastitis-affected cows. J Dairy Sci 2003; 86:3430–3439.
58. Wu S.-H., Liao P.-Y., Yin P.-L. et al. Inverse temporal changes of lipoxin A4 and leukitrienes in children with Henoch-Schonlein purpura. Prostaglandins, Leukotrienes and essential fatty acids 2009;80(4):177–183.
59. Beck F.-X., Neuhofer W., Muller E. Molecular chaperones in the kidney: distribution, putative roles and regulation. An J Phy siol Renal Physiol 2000;279:203–215.
60. Aufricht C., Lu E., Thulin G. et al. ATP releases HSP72 from protein aggregates after renal ischemia. Am J Physiol Renal Physiol 1998;274:268–274.
61. Cowley B.D., Gudapaty S. Temporal alterations in regional gene expression after nephrotoxic renal injury. J Lab Clin Med 1995;125:187–199.
62. Harrison E.M., Sharpe E., Bellamy C.O. et al. Heat shock protein 90-binding agents protect renal cells from oxidative stress and reduce kidney ischemiareperfusion injury. Am J Physiol Renal Physiol 2008;295:397–405.
63. Venkataseshan V.S., Marquet E. Heat shock protein 72/73 in normal and diseased kidneys. Nephron 1996;73:442–449.
64. Mehlen P., Hickey E., Weber L.A. et al. Large unphosphorylated aggregates as the active form of hsp27 which controls intracellular reactive oxygen species and glutathione levels and generated a protection against TNFα in NIH-3T3-ras cells. Biochem Biophys Res Commun 1997;241:187–192.
65. Smoyer W.E., Gupta A., Mundel P. et al. Altered expression of glomerular heat shock protein 27 in experimental nephrotic syndrome. J Clin Invest 1996;97:2697–2704.
66. Welch W.J. Mammalian stress response: Cell physiology, structure/function of stress proteins, and implication for medicine and disease. Physiol Rev 1992;72:1063–1081.
67. Multhoff G., Hightower L.E. Cell surface expression of heat shock proteins and the immune response. Cell Stress Chaperones 1996;1:167–176.
68. Kaufmann S.H. Heat shock protein and the immune response. Immunol Todey 1990;11:129–136.
69. Lydyard P.M., van Eden W. Heat shock proteis: immunity and immunipathology. Immunol Todey 1990;11:228–229.
70. Jorgensen C., Gedon E., Jaquet C. et al. Gastric administration of recombinant 65kDa heat shock protein delays the severi of type II collagen induced arthritis in mice. J Rheumatol 1998;25:763–767.
71. Trieb К., Blahovec H., Margreiter R. et al. Heat shock protein expression in the transplanted human kidney. Transplant International 2005;14(5):281–286.
72. Мухин Н.А., Ляшко В.Н., Маргулис Б.А. и др. Амилоидоз и антитела к белкам теплового шока // Терапевтический архив 1992. № 64(5). C. 79–82
73. van Eden W., Tholet J.E.R., van der Zee R. et al. Cloning of the mycobacterial epitope recognized by T lymphocyte in adjuvant arthritis. Nature 1988;331:171–173.
74. Anderton S.M., van der Zee R., Prakken B. et al. Activation of T cells recognizing self 60-kDa heat shock protein can protect against experimental arthritis. J Exp Med 1995;181:943–952.
75. Paul A.G.A., van Kooten P.J.S., van Eden W. et al. Highly autoproliferative T cells specific for 60-kDa heat shock protein produce IL-4/IL-10 and IFN-γ and are protective in adjuvant arthritis. J Immunol 2000;165:7270–7277.
76. Birnbaum G., Kotilinek L., Miller S.D. et al. Heat shock protein s and experimental autoimmune encephalomyelitis. II: environmental infection and extra-neuraxaial inflammation after the course of chronic relapsing encephalomyelitis. J Neuroimmunol 1998;90:149–161.
77. Dodd S.M., Martin J.E., Swash M. et al. Expression of heat shock protein epitopes in renal disease. Clinical Nephrology 1993;39(5):239–244.

Об авторах / Для корреспонденции

Чеботарева Н.В. – отдел нефрологии НИИ уронефрологии и репродуктивного здоровья человека ГОУ ВПО “Первый МГМУ им. И.М. Сеченова” Минздравсоцразвития России. E-mail: natasha_tcheb@mail.ru;
Бобкова И.Н. – д.м.н., заведующая отделом нефрологии НИИ уронефрологии и репродуктивного здоровья человека ГОУ ВПО “Первый МГМУ им. И.М. Сеченова” Минздравсоцразвития России;
Козловская Л.В. – д.м.н., профессор кафедры терапии и профболезней медико-профилактического факультета ГОУ ВПО “Первый МГМУ им. И.М. Сеченова” Минздравсоцразвития России;
Ли О.А. – научный сотрудник отдела нефрологии НИИ уронефрологии и репродуктивного здоровья человека ГОУ ВПО “Первый МГМУ им. И.М. Сеченова” Минздравсоцразвития России

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.