ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Инсулинорезистентность при хронической болезни почек

Башмаков Ю.Э., Федосеев А.Н., Денисова В.Е.

1) Академия постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий» Федерального медико-биологического агентства России, Москва, Россия; 2) Городская клиническая больница № 24, ДЗМ, Москва, Россия
Данная статья представляет собой обзор публикаций, касающихся особенностей проявлений инсулинорезистентности у больных хронической болезнью почек (ХБП).
Инсулинорезистентность у больных ХБП даже в отсутствие ожирения или сахарного диабета может быть следствием снижения почечной функции и может ускорять течение почечного заболевания.
К факторам играющим существенную роль в развитии инсулинорезистентности у больных ХБП относятся образ жизни, включающий снижение физической активности или нездоровое питание, и хроническое нарушение почечной функции, проявляющаеся метаболическим ацидозом, недстатком витамина D, почечной анемией и повышением концентрации уремических токсинов в крови. Ожирение и сахарный диабет в свою очередь ухудшают чувствительность тканей к инсулину.
В настоящее время не подвергается сомнению, что механизм развития ИР у больных ХБП включает хроническое системное воспаление, окислительный стресс, дизрегуляцию секреции адипокинов и активацию РААС.
Недорогие и практичные динамические (например, пероральный глюкозотолерантный тест) и статические (например, индекс инсулинорезистентности HOMA-IR) модели оценки инсулиночувствительности дают достаточно точную количественную оценку чувствительности к инсулину у пациентов с ХБП.
Инсулинорезистентность повышает риск сердечно-сосудистой заболеваемости и смертности и риск развития сердечно-сосудистых и почечных осложнений у больных ХБП, что вызывает необходимость своевременного принятия эффективных мер профилактики и лечения этого состояния, включающих модификацию образа жизни, целенаправленную фармакотерапию, а в терминальной стадии заболевания почек – заместительную почечную терапию.

Ключевые слова

хроническая болезнь почек
инсулинорезистентность
пероральный глюкозотолерантный тест
эугликемический гиперинсулинемический клэмп
индекс инсулинорезистентности
фармакотерапия инсулинорезистентности

Инсулинорезистентность (ИР) определяется как снижение биологического действия инсулина на его органы-мишени (прежде всего печень и скелетные мышцы) [1]. В основе ее лежит нарушение передачи сигналов инсулина на рецепторном или пострецепторном уровнях, проявляющаяся в нарушении захвата, метаболизма или накопления глюкозы в мышечной, печеночной и жировой тканях [2].

Клиническим проявлением ИР служат нарушение толерантности к глюкозе, гиперинсулинемия, гипергликемия и дислипидемия. ИР может быть как физиологической (например, при беременности), так и патологической (например, при сахарном диабете 2 типа – СД2), как первичной (например, при СД2) так и вторичной, часто сопровождающей заболевания обмена веществ (например, акромегалия, синдром Кушинга, феохромоцитома, гипертиреоз) [3, 4, 132, 163].

Чувствительность тканей к инсулину может изменяться под воздействием таких факторов, как масса тела, количество висцерального жира и концентрация свободных жирных кислот и глюкокортикоидов в крови [5, 6]. Инсулин подавляет печеночный глюконеогенез и гликолиз, ингибирует липолиз в жировой ткани и стимулирует поглощение глюкозы скелетными мышцами [1]. При ИР в условиях снижения чувствительности к инсулину и необходимости поддержания физиологического уровня глюкозы крови синтез и секреция инсулина β-клетками островков Лангерганса поджелудочной железы увеличиваются, что ведет к хронической гиперинсулинемии [7].

По мере прогрессирования ИР дальнейшего повышения секреции инсулина поджелудочной железой становится недостаточно для поддержания нормогликемии, что ведет к клиническим проявлениям СД2 [8], причем хроническая гипергликемия подавляет экспрессию рецепторов инсулина в скелетных мышцах, печеночной и жировой тканях, что еще больше снижает их чувствительность к инсулину [9–14].

Методы оценки ИР

В настоящее время в клинической и исследовательской практике существует множество методов количественной оценки ИР различной степени сложности, инвазивности и трудоемкости [1].

Динамические модели основаны на пероральном или парентеральном введении глюкозы или глюкозы с инсулином в организм и в первую очередь отражают периферическую ИР (т.е. утилизацию глюкозы скелетных мышцах), тогда как статические модели основаны на определении глюкозы и инсулина крови натощак, фокусируясь в основном на печеночном глюконеогенезе [2, 7, 16]. Динамические модели обеспечивают более точную оценку чувствительности к инсулину по сравнению со статическими моделями, однако отнимают значительно больше времени и ресурсов и поэтому редко применяются в эпидемиологических исследованиях [2]. К группе динамических моделей оценки ИР относятся пероральный глюкозотолерантный тест (ПГТТ), наиболее простой, динамический и часто применяемый в клинической практике тест [17, 18], и внутривенный глюкозотолерантный тест, применяемый в основном в клинических исследованиях. Оба метода основаны на изменениях концентраций глюкозы и инсулина в крови в ответ на пероральную или внутривенную стандартную нагрузку глюкозой [19].

Другим динамическим является метод эугликемического гиперинсулинемического клэмпа (ЭГК), служащий на протяжении более чем 40 лет эталоном прямого количественного определения инсулинообусловленнoго поглощения глюкозы скелетными мышцами [20]. Для определения ИР этим методом требуется поддержание эугликемии на фоне подавления печеночного глюконеогенеза путем создания высокого уровня инсулина в плазме, что достигается непрерывной инфузией инсулина и глюкозы [20]. По достижении устойчивого уровня эугликемии (при стабильной концентрации инсулина в крови) количество вводимой глюкозы соответствует скорости ее захвата тканями, т.е. отражает инсулинообусловленный метаболизм глюкозы в тканях. При наличии резистентности к инсулину для поддержания эугликемии требуются меньшие количества глюкозы. Таким образом, скорость введения глюкозы представляет собой прямую меру чувствительности организма к инсулину [1, 8].

Хотя ЭГК и является самым точным и надежным методом оценки ИР, позволяющим определять степень поглощения глюкозы скелетными мышцами, он применяется в основном при проведении фармакодинамических клинических испытаний, например при разработке антидиабетических лекарственных средств, и практически не используется в клинической практике ввиду своей трудоемкости, инвазивности и необходимости дополнительного технического оснащения и специально обученного персонала [1, 8, 23]. Вместо него для оценки ИР обычно применяют недорогие и практичные косвенные статические тесты, использующие оценку чувствительности к инсулину по концентрации глюкозы и инсулина натощак и не требующие больших затрат времени [8].

Одним из таких тестов является наиболее часто используемый индекс HOMA-IR (Homeostasis Model Assessment of Insulin Resistance), который широко применяется в эпидемиологических исследованиях, при которых не требуется высокой точности оценки чувствительности к инсулину [24]. Результаты оценки ИР этим методом положительно коррелируют с концентрацией глюкозы или инсулина крови натощак и рассчитываются по формуле: HOMA-IR=уровень инсулина натощак (мкЕД/мл), уровень глюкозы натощак (ммоль/л)/22 [3, 26]. Другим популярным тестом является количественный индекс оценки чувствительности к инсулину QUICKI (Quantitative Insulin Sensitivity Check Index), который рассчитывается по формуле QUICKI=1/[log(I0)+log(G0)], где I0 – уровень инсулина натощак (мкЕД/мл) и G0 – уровень глюкозы натощак (мг/дл) [27].

Важно отметить, что у людей с нормальной функцией почек результаты как пероральной динамической ПГТТ, так и статической модели HOMA-IR достаточно хорошо коррелируют с таковыми, получаемыми посредством ЭГК, являющегося «золотым» стандартом оценки ИР (коэффициенты корреляции R=0,7–0,9) [8].

Однако у пациентов со снижением функции почек корреляция между результатами статических индексов ИР (HOMA-IR, QUICKI) и результатами ЭГК выражена слабее по сравнению с корреляцией между результатами динамических тестов (ПГТТ) и ЭГК [2], т.к. при хронической болезни почек (ХБП) снижение почечного клиренса инсулина может повышать концентрацию инсулина натощак и опосредованно оказывать влияние на концентрацию глюкозы натощак [28], являющихся детерминантами статической оценки ИР в моделях HOMA-IR и QUICKI [8].

Более того, при интерпретации результатов статических тестов следует делать поправку на следующее: у больных ХБП основной вклад в нарушение чувствительности к инсулину играют скелетные мышцы, а концентрация глюкозы крови натощак, которая, как упомянуто выше, служит основным параметром статических тестов, в первую очередь определяется не снижением действия инсулина в мышечной ткани, а ночным печеночным глюконеогенезом [8]. Кроме этого важно также отметить, что у больных в терминальной стадии ХБП заместительная почечная терапия (перитонеальный диализ или гемодиализ) может оказывать непосредственное влияние на уровень гликемии, тем самым и на точность определения ИР методом статических тестов [23].

Оценка влияния почечной функции на результаты тестов оценки ИР дана в исследовании T. Jia et al. [28]. Авторы сравнили результаты оценки ИР, основанные на методах HOMA-IR или ПГТТ, с таковыми ЭГК у пожилых, не страдающих СД людей, которые были стратифицированы по скорости клубочковой фильтрации (СКФ): <60 мл/мин/1,73 м2 (n=495) и ≥60 мл/мин/1,73 м2 (n=579). Оказалось, что результаты оценки ИР у участников с СКФ<60 мл/мин/1,73 м2, полученные с помощью метода HOMA-IR слабее, хотя и не статистически значимо коррелировали с результатами ЭГК, чем у участников с более сохранной почечной функцией (RСКФ<60=0,67 vs. RСКФ>60 =0,71) [14].

В то же время точность оценки ИР на основе ПГTT при использовании Matsuda index, который рассчитывается по формуле: ISIMatsuda=10, 000/√G0×I0×Gmean×Imean, где G0 (мг/дл) и I0 (мкЕД/мл), концентрация глюкозы и инсулина в плазме крови натощак, а Gmean и Imean средняя концентрация глюкозы (мг/дл) и инсулина (мкЕд/мл) в плазме крови во время ПГТТ (0–120 минут) у участников с СКФ<60 мл/ мин/1,73 м2 превышала точность оценки ИР методом HOMAIR (RПГTT=0,74 vs RHOMA-IR=0,67) [8].

В совокупности эти данные свидетельствуют: при нарушении почечной функции как статические (например, HOMA-IR), так и динамические модели (например, ПГTT) гарантируют достаточную точность оценки ИР в клинической практике, хотя модель ПГТТ несколько превосходит статические модели в достоверности оценки [8].

ХБП и ИР

Клинические исследования последних лет показали, что ИР может проявляться на разных стадиях снижения почечной функции без взаимосвязи с избыточной массой тела [30–33, 133–136, 161], причем степень выраженности ИР положительно коррелирует со стадией ХБП даже в отсутствие СД [34].

Тот факт, что синдром резистентности к инсулину может возникать у лиц с заболеваниями почек различной этиологии (например, аутосомно-доминантным поликистозом почек или IgA-нефропатией) еще до существенного снижения СКФ указывает на то, что ни этиология нефропатии, ни наличие поздних проявлений/осложнений ХБП (уремия, почечная анемия, вторичный гиперпаратиреоз, недостаточность витамина D или метаболический ацидоз) не могут рассматриваться как определяющие факторы возникновения ИР у больных ХБП [1, 35].

ХБП и гомеостаз глюкозы

Продукция и утилизация глюкозы почками – важные компоненты метаболизма глюкозы в организме человека [36, 37]. Поэтому нарушение функции почек само по себе может служить одной из причин ИР [1].

С другой стороны, при ХБП, особенно на ее поздних стадиях, снижение чувствительности к инсулину преимущественно обусловлено воздействием уремических токсинов на пост-рецепторную передачу сигнала инсулина в мышечных клетках [34, 38], приводящее к снижению утилизации глюкозы скелетными мышцами. При этом утилизация глюкозы клетками печени и ингибирующее действие инсулина на печеночный глюконеогенез также могут снижаться, хотя и в меньшей степени [39–42].

51-1.jpg (132 KB)

Известно, что по мере прогрессирования ХБП у большинства больных СД гликемический контроль спонтанно улучшается [43]. В поздних стадиях ХБП риск выраженной гипогликемии (<70 г/дл) существенно возрастает, причем вероятность развития тяжелой гипогликемии может увеличиваться в 5 раз [44], делая необходимым снижение дозировки или полное прекращение терапии инсулином или другими антигликемическими препаратами [43, 46–59]. В терминальной стадии ХБП суточная доза инсулина может снижаться на 28–60%, а примерно в 30% случаев у ранее инсулинозависимых больных СД инсулин вообще не требуется [23, 50, 51]. Такое снижение в его потребности во многом объясняется снижением почечного и печеночного клиренса инсулина [53, 54], почечного глюконеогенеза у пациентов с терминальной ХБП, гипогликемическим эффектом гемодиализа, особенно при использовании диализата с низким или нормальным уровнем глюкозы [49, 56, 57].

Причины и механизм ИР при ХБП

Причины ИР при ХБП многофакторны: малоподвижный образ жизни, нездоровое питание, курение, накопление висцерального жира, измененная кишечная флора, дизрегуляция секреции адипокинов со снижением уровня адипонектина, наличие статуса хронического системного воспаления, повышенная продукция активных форм кислорода, ответственных за окислительный стресс, активация ренин-ангиотензин-альдостероновой системы (РААС), эндотелиальная дисфункция, метаболический ацидоз, дефицит витамина D, почечная анемия и уремические токсины (см. рисунок) [58, 59]. Более того, СД и ожирение значительно усугубляют проявления ИР при ХБП [7, 23, 60, 63–65, 67, 68, 71, 140, 141, 147, 148, 162, 164].

52-1.jpg (196 KB)

В настоящее время доказано участие прои противовоспалительных цитокинов в механизме ИР у больных с нарушением функции почек:

1) ИР и ожирение связаны с повышением экспрессии фактора некроза опухоли α (ФНО-α, TNF-α) в жировой и мышечной тканях [69];

2) ИР ассоциирована с повышением уровня интерлейкина1β (ИЛ-1β), который снижает чувствительность β-клеток островков Лангерганса поджелудочной железы к инсулину и приводит к нарушению секреции и передачи сигналов инсулина в периферических тканях и макрофагах [70];

3) повышение уровня ИЛ-6 способствует развитию ИР, снижая экспрессию субстрата рецептора инсулина-1 (IRS1) и транспортера глюкозы-4 (GLUT-4) [71, 72] и повышая концентрацию триглицеридов в крови [73];

4) резистин, вырабатываемый мононуклеарными клетками периферической крови, принимает участие в патогенезе ИР, ожирения и СД2 [74];

5) лептин снижает концентрацию глюкозы крови, ингибируя глюконеогенез, и улучшает чувствительность тканей к инсулину, препятствуя накоплению триглицеридов в печени и скелетных мышцах [75–77]. Резистентность к лептину, обычно наблюдающейся при ожирении, ассоциирована с ИР и нарушением секреции инсулина, в т.ч. вследствие накопления триглицеридов в тканях-мишенях [63, 137];

6) ингибитор активатора плазминогена-1 (PAI-1), являющийся провоспалительным адипокином, играет важную роль в развитии ИР даже в отсутствие ожирения [79, 80];

7) повышение моноцитарного хемоаттрактантного протеина-1 (MCP-1), вызывающего дедифференцировку адипоцитов, способствует развитию ИР, ожирения и СД2 [25];

8) адипонектин, являющийся единственным противовоспалительным цитокином, повышает чувствительность тканей к инсулину [82–84, 137, 139, 143].

При этом важно отметить, что степень нарушения почечной функции отрицательно коррелирует с выраженностью статуса хронического системного воспаления, уровнем секреции провоспалительных цитокинов (например, ИЛ-1β, -6, ФНО-α) и некоторых провоспалительных протеинов (С-реактивного белка и фибриногена), играющих ключевую роль в развитии ИР [85].

Другим важным фактором, играющим роль в снижении чувствительности к инсулину при ХБП, является активация РААС, приводящая к увеличению продукции асимметричного диметиларгинина (АДМА) в адипоцитах и стимуляции экспрессии ИЛ-6 [86, 87]. Это способствует нарушению функции рецептора инсулина (IRS-1) с нарушением передачи инсулинообусловленнoго сигнала внутри клетки и последующим снижением функции GLUT-4, что в итоге ведет к нарушению захвата глюкозы мышечной и жировой тканями и развитию ИР [88]. При этом, например, показано, что блокада рецепторов ангиотензина II олмесартаном у пациентов с нарушенной функцией почек может оказывать позитивное воздействие на резистентность к инсулину [89].

Следующим фактором, способствующим развитию ИР, является метаболический ацидоз, который вызывает снижение аффинитета рецептора инсулина и нарушению инсулинообусловленной передачи сигналов в клетках органов-мишеней даже в начальных стадиях ХБП [90–92].

Механизм влияния ИР на ХБП

Инсулин играет важную роль в регуляции почечного кровотока и клубочковой фильтрации. В условиях резистентности тканей к инсулину биодоступность оксида азота (NO) снижается, что приводит к нарушению NO-зависимой релаксации почечных сосудов, внутрисосудистому рекрутированию лейкоцитов и моноцитов, агрегации и адгезии тромбоцитов, усилению выраженности статуса хронического воспаления и в итоге запускает механизмы, способствующие развитию почечного фиброза. Кроме этого снижение продукции NO вызывает нарушение канальцево-гломерулярной обратной связи – механизма, с помощью которого осуществляется ауторегуляция почечного кровотока и клубочковой фильтрации, что в свою очередь приводит к гиперфильтрации и задержке натрия в организме и может повышать риск развития артериальной гипертензии [126–131, 138, 142, 162, 166].

Меры воздействия на ИР

К мерам воздействия на ИР, которые улучшают клинический прогноз у пациентов с ХБП, относятся модификация образа жизни, лекарственная терапия (например, метформин, тиазолидиндионы, агонисты рецепторов глюкагоноподобного пептида-1 и ингибиторы натрий-глюкозного котранспортера 2) и заместительная почечная терапия.

Модификация образа жизни. Одним из самых эффективных методов лечения ИР, имеющим положительный эффект на развитие сердечно-сосудистых осложнений и продолжительность жизни больных ХБП, является изменение образа жизни включающее увеличение физической активности, отказ от курения и изменение диеты [147]. Показано, например, что увеличение физической активности повышает чувствительность к инсулину при ожирении [94], а низкобелковая диета, дополненная незаменимыми аминокислотами и кетоаналогами, уменьшая продукцию азотистых соединений, улучшает чувствительность к инсулину пациентов в поздних стадиях ХБП [45, 93].

Лекарственные средства. Метформин является сенсибилизатором инсулина и одним из наиболее часто используемых препаратов для лечения ИР при СД2, главным органом-мишенью которого является печень, где он угнетает глюконеогенез. Терапия метформином снижает массу тела [96] и уменьшает риск возникновения СД у людей с гипергликемией натощак или постпрандиальной гипергликемией [93, 98, 145]. Применение метформина пациентами на ранних стадиях ХБП ассоциировано с существенным – на 33% – снижением смертности [99]. Однако важно помнить, что т.к. метформин выводится из организма в неизмененном виде практически исключительно почками, его применение на поздних стадиях ХБП (СКФ<30 мл/мин) противопоказано по причине повышенного риска его накопления в организме и развития лактоацидоза.

Агонисты рецепторов глюкагоноподобного пептида-1, или миметики инкретина, усиливают глукозоопосредованную секрецию инсулина, замедляют опорожнение желудка и снижают постпрандиальный глюкагон и потребление пищи. Известно, например, что представитель этой группы лираглутид улучшает прогноз заболеваний сердечно-сосудистой системы и почек у пациентов с СД [100]. Однако, хотя и известно, что агонисты рецепторов глюкагоноподобного пептида-1 положительно влияют на чувствительность к инсулину в экспериментах на животных [101], их влияние на ИР и на риск возникновения сердечно-сосудистых и почечных осложнений в отсутствие СД еще требует подтверждения [144, 149–154, 157, 158].

Ингибиторы натрий-глюкозного котранспортера 2 (SGLT2i) представляют собой класс пероральных антидиабетических лекарственных средств, механизм действия которых связан со снижением реабсорбции глюкозы в почках. Показано, что такие ингибиторы SGLT2, как эмпаглифлозин и канаглифлозин, замедляют прогрессирование ХБП и улучшают прогноз сердечно-сосудистые заболеваний у пациентов с заболеваниями почек как с СД, так и в его отсутствие [19, 102, 105, 155, 156, 159, 160]. Кроме того, лекарственные препараты этой группы способны повышать чувствительность к инсулину у больных СД [106, 107, 145, 146], что происходит, скорее всего, вследствие уменьшения массы тела, обусловленного потерей калорий в виде почечной экскреции глюкозы, хотя еще нет достаточной доказательной базы их влияния на чувствительность к инсулину у больных ХБП в отсутствие СД.

У пациентов с ХБП и СД тиазолидиндионы (TZD) улучшают чувствительность к инсулину посредством активации PPAR-γ, повышения уровня адипонектина [58, 108–110], нормализации липидного профиля [111] и уменьшения хронического системного воспаления. В отношении улучшения клинического прогноза известно, что, например, пиоглитазон препятствует развитию микрои макрососудистых осложнений, уменьшает вероятность повторного инсульта и острого коронарного синдрома у пациентов с ИР даже в отсутствие СД [112, 113]. Конечно, с учетом их побочных эффектов (увеличение массы тела, задержка жидкости, повышенный риск застойной сердечной недостаточности и остеопороза и, хотя и очень редко, гепатотоксичность и рак мочевого пузыря) [15, 23, 123–125], TZD должны применяться с осторожностью при прогрессирующей ХБП [114–122].

Клинические исследования показали, что ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента и блокаторы рецепторов ангиотензина II способны повышать чувствительность к инсулину и снижать его концентрацию в крови больных артериальной гипертензией и ХБП, включая ее терминальную стадию (например, телмисартан у больных на перитонеальном диализе). Механизм их действия включает, кроме всего прочего, противодействие окислительному стрессу и улучшение микроциркуляции в мышцах, что нормализует передачу инсулиноопосредованного сигнала на пострецепторном уровне и повышает доступность глюкозы и инсулина в тканях-мишенях, прежде всего, в миоцитах [78, 81, 91].

Меры воздействия на ИР в поздних стадиях ХБП включают коррекцию ацидоза, почечной анемии, дефицита витамина D, вторичного гиперпаратиреоидизма и заместительную почечную терапию.

Например, известно, что коррекция ацидоза бикарбонатами и диета с повышенным содержанием овощей и фруктов улучшает чувствительность к инсулину [21, 29, 55, 61], а лечение почечной анемии эритропоэтином уменьшает выраженность ИР у пациентов, находящихся на диализе. При этом позитивный эффект связан не только с непосредственным влиянием эритропоэтина на ткани-мишени, но и со снижением мышечного катаболизма и повышением физической активности в связи с улучшением аэробных способностей мышечной ткани [2, 22, 62, 95, 103, 104, 119].

В последнее время удалось показать, что ИР может наблюдаться при дефиците витамина D, а терапия витамином D у больных ХБП ассоциирована с улучшением ИР [165]. Хотя механизмы, лежащие в основе положительного влияния витамина D на чувствительность к инсулину в поздних стадиях ХБП, не до конца понятны, известно, что, например, повышенная концентрация паратиреоидного гормона (ПТГ) ингибирует секрецию инсулина, в то время как коррекция вторичного гиперпаратиреоидизма путем паратиреоидэктомии нормализует ее [39, 52, 66]. С другой стороны, также известно, что у пациентов с терминальной ХБП, находящихся на гемодиализе, внутривенные активированные формы витамина D могут повышать инсулиночувствительность, не оказывая влияния на концентрацию ПТГ в крови [52].

Заместительная почечная терапия. Хорошо известно, что как гемо-, так и перитонеальный диализ улучшают чувствительность к инсулину пациентов в терминальной стадии ХБП [34, 45].

Заключение

ИР может сопровождать ХБП вне зависимости от наличия ожирения или СД и являться как служить следствием дисфункции почек, так и ускорять течение почечного заболевания.

Причины развития ИР у пациентов с ХБП включают как особенности образа жизни (например, гиподинамия, нездоровое питание), так проявление хронического нарушения функции почек (например, метаболический ацидоз, дефицит витамина D, почечная анемия и уремический статус), причем ожирение и СД дополнительно усугубляют ее течение.

Механизм развития ИР при нарушении функции почек включает хроническое системное воспаление, окислительный стресс, дизрегуляцию секреции адипокинов и активацию РААС. Недорогие и практичные динамические (например, пероральный глюкозотолерантный тест, основанный на изменениях концентраций глюкозы и инсулина в крови в ответ на пероральную стандартную нагрузку глюкозой) и статические (например, индекс инсулинорезистентности HOMA-IR, использующий оценку чувствительности к инсулину по концентрации глюкозы и инсулина натощак) модели оценки ИР дают достаточно точную количественную оценку чувствительности к инсулину у пациентов с ХБП.

Так как ИР повышает риск как сердечно-сосудистой заболеваемости и смертности, так и развития сердечно-сосудистых и почечных осложнений у больных ХБП, необходимо своевременное принятие эффективных мер профилактики и лечения этого состояния, включающих модификацию образа жизни, целенаправленную фармакотерапию, а в терминальной стадии заболевания почек – заместительную почечную терапию.

Список литературы

1. Leyking S., Fliser D. Insulin resistance in CKD. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2014;9(4):638–40.

2. Spoto B., Pisano A., Zoccali C. Insulin resistance in chronic kidney disease: a systematic review. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2016;311(6): F1087–108.

3. Wallace T.M., Matthews D.R. The assessment of insulin resistance in man. Diab. Med. 2002;19(7):527–34.

4. Reilly M.P., Rader D.J. The metabolic syndrome: more than the sum of its parts? Circulation. 2003;108(13):1546–51.

5. Abdelmannan D., Tahboub R., Genuth S., Ismail-Beigi F. Effect of dexamethasone on oral glucose tolerance in healthy adults. Endocr. Pract. 2010;16(5):770–77.

6. Boden G., Song W., Duan X., et al. Infusion of glucose and lipids at physiological rates causes acute endoplasmic reticulumstress in rat liver.Obesity (Silver Spring). 2011;19(7):1366–73.

7. Pham H., Utzschneider K.M., de Boer I.H. Measurement of insulin resistance in chronic kidney disease. Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2011;20(6):640–46.

8. de Boer I.H., Mehrotra R. Insulin resistance in chronic kidney disease: a step closer to effective evaluation and treatment. Kidney Int. 2014;86(2):243–45.

9. Bammens B., Evenepoel P., Verbeke K., Vanrenterghem Y. Impairment of small intestinal protein assimilation in patients with end-stage renal disease: extending the malnutrition-inflammation-atherosclerosis concept. Am. J. Clin. Nutr. 2004;80(6):1536–43.

10. Kim Y., Lim J.H., Kim M.Y., et al. The Adiponectin Receptor Agonist AdipoRon Ameliorates Diabetic Nephropathy in a Model of Type 2 Diabetes. J. Am. Soc. Nephrol. 2018;29(4):1108–27.

11. Sato H., Terasaki T., Mizuguchi H., et al. Receptor-recycling model of clearance and distribution of insulin in the perfused mouse liver. Diabet. 1991;34(9):613–21.

12. Benzi L., Cecchetti P., Ciccarone A., et al. Insulin degradation in vitro and in vivo: a comparative study in men. Evidence that immunoprecipitable, partially rebindable degradation products are released from cells and circulate in blood. Diab. 1994;43(2):297–304.

13. Jochen A., Hays J., Lee M. Kinetics of insulin internalization and processing in adipocytes: effects of insulin concentration. J. Cell. Physiol. 1989;141(3): 527–34.

14. Duckworth W.C., Hamel F.G., Peavy D.E., et al. Degradation products of insulin generated by hepatocytes and by insulin protease. J. Biol. Chem. 1988;263(4):1826–33.

15. Satirapoj B., Watanakijthavonkul K., Supasyndh O. Safety and efficacy of low dose pioglitazone compared with standard dose pioglitazone in type 2 diabetes with chronic kidney disease: A randomized controlled trial. PLoS One. 2018;13(10):e0206722.

16. Goodarzi M.O., Cui J., Chen Y.D., et al. Fasting insulin reflects heterogeneous physiological processes: role of insulin clearance. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2011;301(2):E402–8.

17. Matsuda M., DeFronzo R.A. Insulin sensitivity indices obtained from oral glucose tolerance testing: comparison with the euglycemic insulin clamp. Diab. Care. 1999;22(9):1462–70.

18. Stumvoll M., Mitrakou A., Pimenta W., et al. Use of the oral glucose tolerance test to assess insulin release and insulin sensitivity. Diab. Care. 2000;23(3):295–301.

19. Dave N., Wu J., Thomas S. Chronic Kidney Disease-Induced Insulin Resistance: Current State of the Field. Curr. Diab. Rep. 2018;18(7):44.

20. DeFronzo R.A., Tobin J.D., Andres R. Glucose clamp technique: a method for quantifying insulin secretion and resistance. Am. J. Physiol. 1979;237(3): E214–23.

21. Kautzy-Willer A., Pacini G., Barnas U., et al. Intravenous calcitriol normalizes insulin sensitivity in uremic patients. Kidney Int. 1995;47:200–206.

22. Allegra V., Mengozzi G., Martimbianco L., Vasile A. Early and late effects of erythropoietin on glucose metabolism in maintenance hemodialysis patients. Am. J. Nephrol. 1996;16(4):304–308.

23. Rahhal M.N., Gharaibeh N.E., Rahimi L., Ismail-Beigi F. Disturbances in Insulin- Glucose Metabolism in Patients With Advanced Renal Disease With and Without Diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2019;104(11):4949–66.

24. Matthews D.R., Hosker J.P., Rudenski A.S., et al. Homeostasis model assessment: insulin resistance and beta-cell function from fasting plasma glucose and insulin concentrations in man. Diab. 1985;28(7):412–19.

25. Kosmas C.E., Silverio D., Tsomidou C., et al. The Impact of Insulin Resistance and Chronic Kidney Disease on Inflammation and Cardiovascular Disease. Clin. Med. Insights Endocrinol. Diab. 2018;11:1179551418792257.

26. Muniyappa R., Lee S., Chen H., Quon M.J. Current approaches for assessing insulin sensitivity and resistance in vivo: advantages, limitations, and appropriate usage. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2008;294(1):E15–26.

27. Katz A., Nambi S.S., Mather K., et al. Quantitative insulin sensitivity check index: a simple, accurate method for assessing insulin sensitivity in humans. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000;85(7):2402–10.

28. Jia T., Huang X., Qureshi A.R., et al. Validation of insulin sensitivity surrogate indices and prediction of clinical outcomes in individuals with and without impaired renal function. Kidney Int. 2014;86(2):383–91.

29. de Brito-Ashurst I., Varagunam M., Raftery M.J., Yaqoob M.M. Bicarbonate supplementation slows progression of CKD and improves nutritional status. J. Am. Soc. Nephrol. 2009;20(9):2075–84.

30. Shinohara K., Shoji T., Emoto M., et al. Insulin resistance as an independent predictor of cardiovascular mortality in patients with end-stage renal disease. J. Am. Soc. Nephrol. 2002;13(7):1894–900.

31. Becker B., Kronenberg F., Kielstein J.T., et al. MMKD Study Group. Renalinsulin resistance syndrome, adiponectin and cardiovascular events in patients with kidney disease: the mild and moderate kidney disease study. J. Am. Soc. Nephrol. 2005;16(4):1091–98.

32. Landau M., Kurella-Tamura M., Shlipak M.G., et al. Health, Aging and Body Composition Study. Correlates of insulin resistance in older individuals with and without kidney disease. Nephrol. Dial. Transplant. 201;26(9):2814–19.

33. Kobayashi S., Maesato K., Moriya H., et al. Insulin resistance in patients with chronic kidney disease. Am. J. Kidney Dis. 2005;45(2):275–80.

34. DeFronzo R.A., Alvestrand A., Smith D., et al. Insulin resistance in uremia. J. Clin. Invest. 1981;67(2):563–8.

35. Fliser D., Pacini G., Engelleiter R., et al. Insulin resistance and hyperinsulinemia are already present in patients with incipient renal disease. Kidney Int. 1998;53(5):1343–7.

36. Cersosimo E., Garlick P., Ferretti J. Insulin regulation of renal glucose metabolism in humans. Am. J. Physiol. 1999;276(1): E78–84.

37. Meyer C., Stumvoll M., Nadkarni V., et al. Abnormal renal and hepatic glucose metabolism in type 2 diabetes mellitus. J. Clin. Invest. 1998;102(3):619–24.

38. Koppe L., Pillon N.J., Vella R.E., et al. p-Cresyl sulfate promotes insulin resistance associated with CKD. J. Am. Soc. Nephrol. 2013;24(1):88–99.

39. Mak R.H. Intravenous 1,25 dihydroxycholecalciferol corrects glucose intolerance in hemodialysis patients. Kidney Int. 1992;41(4):1049–54.

40. Friedman J.E., Dohm G.L., Elton C.W., et al. Muscle insulin resistance in uremic humans: glucose transport, glucose transporters, and insulin receptors. Am. J. Physiol. 1991;261(1 Pt. 1): E87–94.

41. O’Brien J.P., Sharpe A.R. Abnormal carbohydrate metabolism in renal failure. Metab. 1965;14(12):1294–306.

42. Koppe L., Pelletier C.C., Alix P.M., et al. Insulin resistance in chronic kidney disease: new lessons from experimental models. Nephrol. Dial. Transplant. 2014;29(9):1666–74.

43. Kalantar-Zadeh K., Derose S.F., Nicholas S., et al. Burnt-out diabetes: impact of chronic kidney disease progression on the natural course of diabetes mellitus. J. Ren. Nutr. 2009;19(1):33–7.

44. Mühlhauser I., Toth G., Sawicki P.T., Berger M. Severe hypoglycemia in type I diabetic patients with impaired kidney function. Diab. Care. 1991;14(4):344–6.

45. Kobayashi S., Maejima S., Ikeda T., Nagase M. Impact of dialysis therapy on insulin resistance in end-stage renal disease: comparison of haemodialysis and continuous ambulatory peritoneal dialysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2000;15(1):65–70.

46. Agarwal R., Light R.P. Relationship between glycosylated hemoglobin and blood glucose during progression of chronic kidney disease. Am. J. Nephrol. 2011;34(1):32–41.

47. Cano N. Bench-to-bedside review: glucose production from the kidney. Crit. Care. 2002;6(4):317–21.

48. Fouque D., Kalantar-Zadeh K., Kopple J., et al. A proposed nomenclature and diagnostic criteria for protein-energy wasting in acute and chronic kidney disease. Kidney Int. 2008;73(4):391–8.

49. Rutsky E.A., McDaniel H.G., Tharpe D.L., et al. Spontaneous hypoglycemia in chronic renal failure. Arch. Intern. Med. 1978;138(9):1364–8.

50. Kulozik F., Hasslacher C. Insulin requirements in patients with diabetes and declining kidney function: differences between insulin analogues and human insulin? Ther. Adv. Endocrinol. Metab. 2013;4(4):113–21.

51. Biesenbach G., Raml A., Schmekal B., Eichbauer-Sturm G. Decreased insulin requirement in relation to GFR in nephropathic Type 1 and insulin-treated Type 2 diabetic patients. Diab. Med. 2003;20(8):642–5.

52. Mak R.H. 1,25-Dihydroxyvitamin D3 corrects insulin and lipid abnormalities in uremia. Kidney Int. 1998;53(5):1353–7.

53. Guthoff M., Wagner R., Vosseler D., et al. Impact of end-stage renal disease on glucose metabolism-a matched cohort analysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2017;32(4):670–6.

54. Sobngwi E., Enoru S., Ashuntantang G., et al. Day-to-day variation of insulin requirements of patients with type 2 diabetes and end-stage renal disease undergoing maintenance hemodialysis. Diab. Care. 2010;33(7):1409–12.

55. Phisitkul S., Khanna A., Simoni J., et al. Amelioration of metabolic acidosis in patients with low GFR reduced kidney endothelin production and kidney injury, and better preserved GFR. Kidney Int. 2010;77(7):617–23.

56. Kalantar-Zadeh K., Kopple J.D., Regidor D.L., et al. A1C and survival in maintenance hemodialysis patients. Diab. Care. 2007;30(5):1049–55.

57. Sharma R., Rosner M.H. Glucose in the dialysate: historical perspective and possible implications? Hemodial. Int. 2008;12(2):221–26.

58. Xu H., Carrero J.J. Insulin resistance in chronic kidney disease. Nephrol. (Carlton). 2017;22(Suppl. 4):31–4.

59. Siew E.D., Ikizler T.A. Determinants of insulin resistance and its effects on protein metabolism in patients with advanced chronic kidney disease. Contrib. Nephrol. 2008;161:138–44.

60. Meyer C., Stumvoll M., Dostou J., et al. Renal substrate exchange and gluconeogenesis in normal postabsorptive humans. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2002;282(2):E428–34.

61. Mahajan A., Simoni J., Sheather S.J., et al. Daily oral sodium bicarbonate preserves glomerular filtration rate by slowing its decline in early hypertensive nephropathy. Kidney Int. 2010;78(3):303–9.

62. Mak R.H. Correction of anemia by erythropoietin reverses insulin resistance and hyperinsulinemia in uremia. Am. J. Physiol. 1996;270(5 Pt. 2):F839–44.

63. Shoelson S.E., Lee J., Goldfine A.B. Inflammation and insulin resistance. J. Clin. Invest. 2006;116(7):1793–801. Doi: 10.1172/JCI29069. Erratum in: J.. Clin. Invest. 2006;116(8):2308.

64. Zou C., Shao J. Role of adipocytokines in obesity-associated insulin resistance. J. Nutr. Biochem. 2008;19:277–86.

65. Banerjee D., Recio-Mayoral A., Chitalia N., Kaski J.C. Insulin resistance, inflammation, and vascular disease in nondiabetic predialysis chronic kidney disease patients. Clin. Cardiol. 2011;34:360–65.

66. Graf H., Prager R., Kovarik J., et al. Glucose metabolism and insulin sensitivity in patients on chronic hemodialysis. Metab. 1985;34(10):974–7.

67. Grimble R.F. Inflammatory status and insulin resistance. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2002;5:551–59.

68. Xu H., Barnes G.T., Yang Q., et al. Chronic inflammation in fat plays a crucial role in the development of obesity-related insulin resistance. J. Clin. Invest. 2003;112:1821–30.

69. Plomgaard P., Fischer C.P., Ibfelt T., et al. Tumor necrosis factor-alpha modulates human in vivo lipolysis. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2008;93(2):543– 49.

70. Su D., Coudriet G.M., Hyun Kim D., et al. FoxO1 links insulin resistance to proinflammatory cytokine IL-1beta production in macrophages. Diab. 2009;58(11):2624–33.

71. Nieto-Vazquez I., Fernández-Veledo S., de Alvaro C., Lorenzo M. Dual role of interleukin-6 in regulating insulin sensitivity in murine skeletal muscle. Diab. 2008;57(12):3211–21.

72. Chen L., Chen R., Wang H., Liang F. Mechanisms Linking Inflammation to Insulin Resistance. Int. J. Endocrinol. 2015;2015:508409.

73. Kern P.A., Ranganathan S., Li C., et al. Adipose tissue tumor necrosis factor and interleukin-6 expression in human obesity and insulin resistance. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2001;280(5):E745–51.

74. Jamaluddin M.S., Weakley S.M., Yao Q., Chen C. Resistin: functional roles and therapeutic considerations for cardiovascular disease. Br. J. Pharmacol. 2012;165(3):622–32.

75. Paz-Filho G., Mastronardi C., Wong M.L., Licinio J. Leptin therapy, insulin sensitivity, and glucose homeostasis. Indian J. Endocrinol. Metab. 2012;16(Suppl. 3):S549–55.

76. Meek T.H., Morton G.J. The role of leptin in diabetes: metabolic effects. Diab. 2016;59(5):928–32.

77. Enriori P.J., Evans A.E., Sinnayah P., Cowley M.A. Leptin resistance andobesity. Obesity (Silver Spring). 2006;14(Suppl. 5): S254–58.

78. Cioni A., Sordini C., Cavallini I., et al. Angiotensin receptor blocker telmisartan improves insulin sensitivity in peritoneal dialysis patients. Perit. Dial. Int. 2010;30(1):66–71.

79. Cesari M., Pahor M., Incalzi R.A. Plasminogen activator inhibitor-1 (PAI- 1): a key factor linking fibrinolysis and age-related subclinical and clinical conditions. Cardiovasc. Ther. 2010;28(5):e72–91.

80. Nakamura T., Adachi H., Hirai Y., et al. Association of plasminogen activator inhibitor-1 with insulin resistance in Japan where obesity is rare. Metab. 2003;52(2):226–29.

81. Lindholm L.H., Ibsen H., Dahlof B., et al. LIFE Study Group. Cardiovascular morbidity and mortality in patients with diabetes in the Losartan Intervention For Endpoint reduction in hypertension study (LIFE): a randomised trial against atenolol. Lancet. 2002;359:1004–10.

82. Cnop M., Havel P.J., Utzschneider K.M., et al. Relationship of adiponectin to body fat distribution, insulin sensitivity and plasma lipoproteins: evidence for independent roles of age and sex. Diab. 2003;46(4):459–69.

83. Weyer C., Funahashi T., Tanaka S., et al. Hypoadiponectinemia in obesity and type 2 diabetes: close association with insulin resistance and hyperinsulinemia.J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001;86(5):1930–5.

84. Kadowaki T., Yamauchi T., Kubota N., et al. Adiponectin and adiponectin receptors in insulin resistance, diabetes, and the metabolic syndrome. J. Clin. Invest. 2006;116(7):1784–92.

85. Gupta J., Mitra N., Kanetsky P.A., et al. CRIC Study Investigators. Association between albuminuria, kidney function, and inflammatory biomarker profile in CKD in CRIC. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2012;7(12):1938–46.

86. Zhang L., Du J., Hu Z., et al. IL-6 and serum amyloid A synergy mediates angiotensin II-induced muscle wasting. J. Am. Soc. Nephrol. 2009;20(3):604–12.

87. Song Y.H., Li Y., Du J., et al. P. Muscle-specific expression of IGF-1 blocks angiotensin IIinduced skeletal muscle wasting. J. Clin. Invest. 2005;115(2):451–58.

88. Thomas S.S., Zhang L., Mitch W.E. Molecular mechanisms of insulin resistance in chronic kidney disease. Kidney Int. 2015;88(6):1233–39.

89. de Vinuesa S.G., Goicoechea M., Kanter J., et al. Insulin resistance, inflammatory biomarkers, and adipokines in patients with chronic kidney disease: effects of angiotensin II blockade. J. Am. Soc. Nephrol. 2006;17(12 Suppl. 3):S206–12.

90. Marshall S., Podlecki D.A., Olefsky J.M. Low pH accelerates dissociation of receptor-bound insulin. Endocrinol. 1983;113(1):37–42.

91. Walker B.G., Phear D.N., Martin F.I., Baird C.W. Inhibition of insulin by acidosis. Lancet. 1963;2(7315):964–65.

92. DeFronzo R.A., Beckles A.D. Glucose intolerance following chronic metabolic acidosis in man. Am. J. Physiol. 1979;236(4):E328–34.

93. Knowler W.C., Barrett-Connor E., Fowler S.E., et al. Diabetes Prevention Program Research Group. Reduction in the incidence of type 2 diabetes with lifestyle intervention or metformin. N. Engl. J. Med. 2002;346(6):393–403.

94. De Fronzo R.A., Sherwin R., Kraemer N. Effects of physical exercise on insulin action in obesity. Diab. 1996;36:1379–85.

95. Khedr E., El-Sharkawy M., Abdulwahab S., et al. Effect of recombinant human erythropoietin on insulin resistance in hemodialysis patients. Hemodial. Int. 2009;13(3):340–46.

96. van der Aa M.P., Elst M.A., van de Garde E.M., et al. Long-term treatment with metformin in obese, insulin-resistant adolescents: results of a randomized double-blinded placebo-controlled trial. Nutr. Diab. 2016;6(8):e228.

97. Mc Farlane S., Kumar A., Sowers J.R. Mechanisms by which angiotensin converting enzyme inhibitors prevent diabetes and cardiovascular disease. Am.J. Cardiol. Suppl. 2003;9: H30–7.

98. Diabetes Prevention Program Research Group. Long-term effects of lifestyle intervention or metformin on diabetes development and microvascular complications over 15-year follow-up: the Diabetes Prevention Program Outcomes Study. Lancet. Diab. Endocrinol. 2015;3(11):866–75.

99. Crowley M.J., Diamantidis C.J., McDuffie J.R., et al. Clinical Outcomes of Metformin Use in Populations With Chronic Kidney Disease, Congestive Heart Failure, or Chronic Liver Disease: A Systematic Review. Ann. Intern. Med. 2017;166(3):191–200.

100. Marso S.P., Daniels G.H., Brown-Frandsen K., et al. LEADER Steering Committee; LEADER Trial Investigators. Liraglutide and Cardiovascular Outcomes in Type 2 Diabetes. N. Engl. J. Med. 2016;375(4):311–22.

101. amazaki S., Satoh H., Watanabe T. Liraglutide enhances insulin sensitivity by activating AMP-activated protein kinase in male Wistar rats. Endocrinol. 2014;155(9):3288–301.

102. Zinman B., Lachin J.M., Inzucchi S.E. Empagliflozin, Cardiovascular Outcomes, and Mortality in Type 2 Diabetes. N. Engl. J. Med. 2016;374(11):1094.

103. Tuzcu A., Bahceci M., Yilmaz E., et al. The comparison of insulin sensitivity in non-diabetic hemodialysis patients treated with and without recombinant human erythropoietin. Horm. Metab. Res. 2004;36(10):716–20.

104. Spaia S., Pangalos M., Askepidis N., et al. Effect of short-term rHuEPO treatment on insulin resistance in haemodialysis patients. Nephron. 2000;84(4):320–25.

105. O’Brien T.P., Jenkins E.C., Estes S.K., et al. Correcting Postprandial Hyperglycemia in Zucker Diabetic Fatty Rats With an SGLT2 Inhibitor Restores Glucose Effectiveness in the Liver and Reduces Insulin Resistance in Skeletal Muscle. Diab. 2017;66(5):1172–84.

106. 1Ferrannini E., Muscelli E., Frascerra S., et al. Metabolic response to sodium- glucose cotransporter 2 inhibition in type 2 diabetic patients. J. Clin. Invest. 2014;124(2):499–508.

107. Merovci A., Solis-Herrera C., Daniele G., et al. Dapagliflozin improves muscle insulin sensitivity but enhances endogenous glucose production. J. Clin. Invest. 2014;124(2):509–14.

108. Voytovich M.H., Simonsen C., Jenssen T., et al. Short-term treatment with rosiglitazone improves glucose tolerance, insulin sensitivity and endothelial function in renal transplant recipients. Nephrol. Dial. Transplant. 2005;20(2):413–8.

109. Chan D.T., Watts G.F., Irish A.B., Dogra G.K. Rosiglitazone does not improve vascular function in subjects with chronic kidney disease. Nephrol. Dial. Transplant. 2011;26(11):3543–49.

110. Iwaki M., Matsuda M., Maeda N., et al. Induction of adiponectin, a fat- derived antidiabetic and antiatherogenic factor, by nuclear receptors. Diab. 2003;52(7):1655–63.

111. Miyazaki Y., Mahankali A., Matsuda M., et al. Effect of pioglitazone on abdominal fat distribution and insulin sensitivity in type 2 diabetic patients. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002;87:2784–91.

112. Kernan W.N., Viscoli C.M., Furie K.L., et al. IRIS Trial Investigators. Pioglitazone after Ischemic Stroke or Transient Ischemic Attack. N. Engl. J. Med. 2016;374(14):1321–31.

113. Young L.H., Viscoli C.M., Curtis J.P., et al. IRIS Investigators. Cardiac Outcomes After Ischemic Stroke or Transient Ischemic Attack: Effects of Pioglitazone in Patients With Insulin Resistance Without Diabetes Mellitus. Circulation. 2017;135(20):1882–93.

114. Scheen A.J. Pharmacokinetics and clinical use of incretin-based therapies in patients with chronic kidney disease and type 2 diabetes. Clin. Pharmacokinet. 2015;54(1):1–21.

115. Young M.A., Wald J.A., Matthews J.E., et al. Effect of renal impairment on the pharmacokinetics, efficacy, and safety of albiglutide. Postgrad. Med. 2014;126(3):35–46.

116. Davidson J.A., Brett J., Falahati A., Scott D. Mild renal impairment and the efficacy and safety of liraglutide. Endocr. Pract. 2011;17(3):345–55.

117. Davies M.J., Bain S.C., Atkin S.L., et al. Efficacy and Safety of LiraglutideVersus Placebo as Add-on to Glucose-Lowering Therapy in Patients With Type 2 Diabetes and Moderate Renal Impairment (LIRA-RENAL): A Randomized Clinical Trial. Diab. Care. 2016;39(2):222–30.

118. Leiter L.A., Carr M.C., Stewart M., et al. Efficacy and safety of the once- weekly GLP-1 receptor agonist albiglutide versus sitagliptin in patients with type 2 diabetes and renal impairment: a randomized phase III study. Diab. Care. 2014;37(10):2723–30.

119. Mak R.H. Metabolic effects of erythropoietin in patients on peritoneal dialysis. Pediatr. Nephrol. 1998;12(8):660–65.

120. Jacobsen L.V., Hindsberger C., Robson R., Zdravkovic M. Effect of renal impairment on the pharmacokinetics of the GLP-1 analogue liraglutide. Br. J. Clin. Pharmacol. 2009;68(6):898–905.

121. Imamura S., Hirai K., Hirai A. The glucagon-like peptide-1 receptor agonist, liraglutide, attenuates the progression of overt diabetic nephropathy in type 2 diabetic patients. Tohoku J. Exp. Med. 2013;231(1):57–61.

122. Budde K., Neumayer H.H., Fritsche L., et al. The pharmacokinetics of pioglitazone in patients with impaired renal function. Br. J. Clin. Pharmacol. 2003;55(4):368–74.

123. Fritsche L., Budde K., Glander P., et al. Treating type 2 diabetes in renal insufficiency: the role of pioglitazone. Int. J. Clin. Pharmacol. Ther. 2003;41(10):488–91.

124. Grey A. Skeletal consequences of thiazolidinedione therapy. Osteoporos Int. 2008;19(2):129–37.

125. Galle J., Kleophas W., Dellanna F., et al. Comparison of the Effects of Pioglitazone versus Placebo when Given in Addition to Standard Insulin Treatment in Patients with Type 2 Diabetes Mellitus Requiring Hemodialysis: Results from the PIOren Study. Nephron. Extra. 2012;2(1):104–14.

126. Rocchini A.P., Marker P., Cervenka T. Time course of insulin resistance associated with feeding dogs a high-fat diet. Am. J. Physiol 1997;272:E147–54.

127. Pandey G., Makhija E., George N., et al: Insulin regulates nitric oxide production in the kidney collecting duct cells. J. Biol. Chem 2015;290:5582–91.

128. Manhiani M.M., Cormican M., Brands M.W. Chronic sodium-retaining action of insulin in diabetic dogs. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2011;300:F957–65.

129. Bell T.D., DiBona G.F., Biemiller R., Brands M.W: Continuously measured renal blood flow does not increase in diabetes if nitric oxide synthesis is blocked. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2008;295:F1449–56.

130. Zeng G., Quon M.J. Insulin-stimulated production of nitric oxide is inhibited by wortmannin. Direct measurement in vascular endothelial cells. J. Clin. Invest. 1996;98:894–98.

131. Kocyigit I., Taheri S., Sener E.F., et al. Endothelial nitric oxide synthase gene expression is associated with hypertension in autosomal dominant polycystic kidney disease. Cardiorenal. Med. 2014;4:269–79.

132. Hirode G., Wong R.J. Trends in the Prevalence of Metabolic Syndrome in the United States, 2011–2016. JAMA. 2020;24:2526–28.

133. Kawamoto R., Akase T., Ninomiya D., et al. Metabolic Syndrome is a Predictor of Decreased Renal Function Among Community- Dwelling Middle-Aged and Elderly Japanese. Int. Urol. Nephrol. 2019;12:2285–94.

134. Wu N., Qin Y., Chen S., et al. Association Between Metabolic Syndrome and Incident Chronic Kidney Disease Among Chinese: A Nation-Wide Cohort Study and Updated Meta-Analysis. Diab. Metab. Res. Rev. 2021;7:e3437.

135. Wu M., Shu Y., Wang L., et al. Metabolic Syndrome Severity Score and the Progression of CKD. Eur. J. Clin. Invest. 2022;1:e13646.

136. Ciardullo S., Ballabeni C., Trevisan R., Perseghin G. Metabolic Syndrome, and Not Obesity, Is Associated With Chronic Kidney Disease. Am. J. Nephrol. 2021;8:666–72.

137. Vatier C., Jeru I., Fellahi S., et al. Leptin, Adiponectin, Lipodystrophic and Severe Insulin Resistance Syndromes. Ann. Biol. Clin. (Paris). 2020;3:261–4.

138. da Silva A.A., do Carmo J.M., Li X., et al. Role of Hyperinsulinemia and Insulin Resistance in Hypertension: Metabolic Syndrome Revisited. Can. J. Cardiol. 2020;5:671–82.

139. Esmaili S., Hemmati M., Karamian M. Physiological Role of Adiponectin in Different Tissues: A Review. Arch. Physiol. Biochem. 2020;1:67–73.

140. Martin-Taboada M., Vila-Bedmar R., Medina-Gomez G. From Obesity to Chronic Kidney Disease: How Can Adipose Tissue Affect Renal Function? Nephron. 2021;6:609–13.

141. Miricescu D., Gabriela Balan D., Tulin A., et al. Impact of Adipose Tissue in Chronic Kidney Disease Development (Review). Exp. Ther. Med. 2021;5:539.

142. Rodriguez-Rodriguez A.E., Donate-Correa J., Diaz-Martin L., et al. Obesity and Metabolic Syndrome Induce Hyperfiltration, Glomerulomegaly, and Albuminuria in Obese Ovariectomized Female Mice and Obese Male Mice. Menopause. 2021;211:1296–306.

143. Prakash S., Rai U., Kosuru R., et al. Amelioration of Diet-Induced Metabolic Syndrome and Fatty Liver With Sitagliptin via Regulation of Adipose Tissue Inflammation and Hepatic Adiponectin/AMPK Levels in Mice. Biochim. 2020;168:198–209.

144. Nauck M.A., Quast D.R., Wefers J., Meier J.J. GLP-1 Receptor Agonists in the Treatment of Type 2 Diabetes – State-Of-the-Art. Mol. Metab. 2021;46:101102.

145. Cheng L., Fu Q., Zhou L., et al. Dapagliflozin, Metformin, Monotherapy or Both in Patients With Metabolic Syndrome. Sci. Rep. 2021;1:24263.

146. Herat L.Y., Matthews J., Azzam O., et al. Targeting Features of the Metabolic Syndrome Through Sympatholytic Effects of SGLT2 Inhibition. Curr. Hypertens. Rep. 2022;2:67–74.

147. Croci S., D’Apolito L.I., Gasperi V., et al. Dietary Strategies for Management of Metabolic Syndrome: Role of Gut Microbiota Metabolites. Nutrients. 2021;5:1389.

148. Fahed G., Aoun L., Bou Zerdan M., et al. Metabolic Syndrome: Updates on Pathophysiology and Management in 2021. Int. J. Sci. 2022;2:786.

149. Górriz J.L., Romera I., Cobo A., et al. Glucagon-Like Peptide-1 Receptor Agonist Use in People Living with Type 2 Diabetes Mellitus and Chronic Kidney Disease: A Narrative Review of the Key Evidence with Practical Considerations. Diab. Ther. 2022;13(3):389–421.

150. Gerstein H.C., Colhoun H.M., Dagenais G.R., et al. Dulaglutide and cardiovascular outcomes in type 2 diabetes (REWIND): a double-blind, randomized placebo-controlled trial. Lancet. 2019;394:121–30.

151. Gerstein H.C., Colhoun H.M., Dagenais G.R., et al. Dulaglutide and renal outcomes in type 2 diabetes: an exploratory analysis of the RE.WIND randomised, placebo-controlled trial. Lancet. 2019;394:131–38.

152. Greco E.V., Russo G., Giandalia A., et al. GLP-1 receptor agonists and kidney protection. Med. (Kaunas). 2019;55:233.

153. Husain M., Birkenfeld A.L., Donsmark M., et al. Oral semaglutide andcardiovascular outcomes in patients with type 2 diabetes. N. Engl. J. Med. 2019;381:841–51.

154. Romera I., Cebrian-Cuenca A., Alvarez-Guisasola F., et al. A Review of practical issues on the use of glucagon-like peptide-1 receptor agonists for the management of type 2 diabetes. Diab. Ther. 2019;10:5–19.

155. Perkovic V., Jardine M.J., Neal B., et al. Canagliflozin and renal Outcomes in type 2 diabetes and nephropathy. N. Engl. J. Med. 2019;380:2295–306.

156. Matthews D.R., Li Q., Perkovic V., et al. Effects of canagliflozin on amputation risk in type 2 diabetes: the CANVAS Program. Diab. 2019;62:926–38.

157. Pratley R., Amod A., Hoff S.T., et al. Oral semaglutide versus subcutaneous liraglutide and placebo in type 2 diabetes (PIONEER 4): a randomised, double blind, phase 3a trial. Lancet. 2019;394:39–50.

158. 158 Papazafiropoulou A.K., Melidonis A., Antonopoulos S. Effects of glucagon-like peptide-1 receptor agonists and sodium-glucose cotransporter 2 inhibitors on cardiorenal and metabolic outcomes in people without diabetes. Curr. Pharm. Des. 2021;27:1035–42.

159. Yaribeygi H., Sathyapalan T., Maleki M., et al. Molecular mechanisms by which sglt2 inhibitors can induce insulin sensitivity in diabetic milieu: A mechanistic review. Life Sci. 2020;240:117090.

160. Wiviott S.D., Raz I., Bonaca M.P., et al. Dapagliflozin and cardiovascular outcomes in type 2 diabetes. N. Engl. J. Med. 2019;380:347–57.

161. Nakashima A., Kato K., Ohkido I., Yokoo T. Role and Treatment of Insulin Resistance in Patients with Chronic Kidney Disease: A Review. Nutrients. 2021;13(12):4349.

162. Lee Y.S., Olefsky J. Chronic tissue inflammation and metabolic disease. Gen. Dev. 2021;35:307–28.

163. Adler G.K., Murray G.R., Turcu A.F., et al. Primary Aldosteronism Decreases Insulin Secretion and Increases Insulin Clearance in Humans. Hypertension. 2020;75:1251–59.

164. Dabke K., Hendrick G., Devkota S. The gut microbiome and metabolic syndrome. J. Clin. Investig. 2019;129:4050–57.

165. Wallace H.J., Holmes L., Ennis C.N., et al. Effect of vitamin D3 supplementation on insulin resistance and ß-cell function in prediabetes: A double-blind, randomized, placebo-controlled trial. Am. J. Clin. Nutr. 2019;110:1138–47.

166. Mancusi C., Izzo R., di Gioia G., et al. Insulin Resistance the Hinge Between Hypertension and Type 2 Diabetes. High Blood Press Cardiovasc. Prev. 2020;27(6):515–26.

Об авторах / Для корреспонденции

Башмаков Юрий Эдуардович – к.м.н., доцент кафедры внутренних болезней академии постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий» Федерального медико-биологического агентства России Москва. Адрес: 125371, Москва, Волоколамское шоссе, 91; e-mail: iouri.bachmakov@googlemail.com
Федосеев Анатолий Николаевич - д.м.н., профессор кафедры внутренних болезней академии постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический
центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий» Федерального медико-биологического агентства России, Москва. Адрес: 125371, Москва, Волоколамское шоссе, 91; тел.: +7(495)617-10-50; e-mail: info@medprofedu.ru
Денисова Виктория Евгеньевна – врач-нефролог ГБУЗ ГКБ № 24 ДЗМ, Москва. Адрес: 127015, Москва, ул. Писцовая 10; e-mail: gkb24@zdrav.mos.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.