ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Современные представления об этиологии и патогенезе преждевременного разрыва плодных оболочек

Баисова А.Р., Амирасланов Э.Ю., Франкевич В.Е., Чаговец В.В., Тютюнник В.Л.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия

Преждевременные роды относятся к большим акушерским синдромам и представляют огромную проблему, с которой сталкивается акушерство в настоящее время. Это ведущая причина детской смертности в мире, на которую приходится 80% всех случаев неонатальной заболеваемости, приводящая к серьезным финансовым и эмоциональным потерям для семей и общества. Одним из самых неблагоприятных осложнений, приводящим к преждевременным родам, является преждевременный разрыв плодных оболочек (ПРПО). В статье рассматриваются этиологические и патогенетические аспекты ПРПО с ключевым фактором – воспалением. Как вариант механизма развития ПРПО обсуждается асептическое воспаление, связанное с биологическим старением и созреванием плодных оболочек. Рассматриваются такие факторы, способствующие разрушению экстрацеллюлярного матрикса, как ремоделирование коллагена, формирование микротрещин в плодных оболочках и усиленный ангиогенез. До настоящего времени изучение разрыва плодных оболочек проводилось с точки зрения клеточной биологии и гистологии тканей, а также воспаления. В контексте данного обзора рассмотрены различные патогенетические варианты ПРПО, которые могут возникать самостоятельно или сочетанно. Несмотря на большое количество проведенных исследований, в настоящее время огромный интерес представляют изучение новых подходов к профилактике ПРПО, поиск прогностических маркеров и факторов риска для разработки эффективной терапевтической тактики. Заключение: Внедрение новых методов исследования, позволяющих раскрыть или уточнить механизмы асептического и инфекционного путей патогенеза на основе масс-спектрометрии при ПРПО, поможет выявить дифференциальные паттерны экспрессии белков, связанные с окислительным стрессом и бактериальной инвазией в амниотической жидкости и плодных оболочках. Внедрение в клиническую практику неинвазивных маркеров обеспечит возможность своевременного проведения профилактических мер, назначения терапии и определения тактики ведения беременных с целью улучшения перинатальных исходов.

Вклад авторов: Баисова А.Р., Амирасланов Э.Ю., Франкевич В.Е., Чаговец В.В., Тютюнник В.Л. – концепция и разработка дизайна исследования, получение данных для анализа, сбор публикаций, обработка и анализ материала по теме, написание текста рукописи, редактирование статьи.

Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Финансирование: Работа выполнена при поддержке РНФ, грант №22-15-00232

Для цитирования: Баисова А.Р., Амирасланов Э.Ю., Франкевич В.Е., Чаговец В.В., Тютюнник В.Л. Современные представления об этиологии и патогенезе преждевременного разрыва плодных оболочек. Акушерство и гинекология. 2023; 10: 21-27 http://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.199

Ключевые слова

преждевременный разрыв плодных оболочек
плодные оболочки
преждевременные роды
внутриамниотическое воспаление
асептическое воспаление

Преждевременный разрыв плодных оболочек (ПРПО) соответствует зарубежному термину Preterm premature rupture of membranes (PPROM), определяемому как разрыв плодных оболочек до 37 недель беременности, и Premature rupture of membranes (PROM) – разрыв плодных оболочек после 37 недель гестации. По локализации места разрыва подразделяется на 2 варианта: «классический ПРПО» (Classic PPROM), характеризующийся разрывом в области внутреннего зева шейки матки и излитием околоплодных вод вплоть до полного их отсутствия (ангидрамнион); «высокий боковой разрыв» (High PPROM), характеризуется минимальным дефектом плодных оболочек или боковым разрывом и сопровождается либо нормальным количеством амниотической жидкости, либо его уменьшением [1]. Латентный период после ПРПО в среднем составляет 7 дней и имеет тенденцию к сокращению по мере увеличения срока гестации [2].

Общеизвестно, что ведущей причиной преждевременных родов (ПР) является ПРПО, который наблюдается при доношенной беременности в 8–10% случаев: при одноплодной – в 2–4%, при многоплодной – в 7–20%. В целом на долю ПРПО при недоношенной беременности приходится 20–40%, что сочетается почти в половине наблюдений с ПР [3].

По данным Всемирной организации здраво­охранения, в 2020 г. недоношенными родились 13,4 млн детей [4]. Осложнения, связанные с ПР, являются ведущей причиной высокой заболеваемости и смертности среди детей в возрасте младше пяти лет и в 2019 г. стали причиной примерно 900 000 случаев летальных исходов [5]. Необходимо отметить, что три четверти этих смертей можно было предотвратить с помощью современных, экономически эффективных методов оказания медицинской помощи. В 2020 г. доля младенцев, родившихся недоношенными, колебалась в диапазоне от 4 до 16% в зависимости от страны [5].

ПРПО является причиной очень высокого уровня неонатальной заболеваемости и смертности, ведущими причинами которых служат недоношенность, развитие бронхолегочной дисплазии, некротизирующего энтероколита, неонатального сепсиса и др. Кроме того, существуют риски, связанные с отслойкой плаценты, а также развитием инфекционных осложнений, таких как хориоамнионит, эндометрит и т.д. [3, 6, 7].

Известно, что плодные оболочки представляют собой барьер для потенциальных патогенов. Потеря их целостности, воспаление и связанный с ним окислительный стресс могут увеличить вероятность ПРПО или напрямую привести к проникновению микроорганизмов в амниотическую полость [8]. По данным литературы, множество факторов может способствовать нарушению целостности плодных оболочек. Наиболее частыми из них являются инфекционно-воспалительные изменения, которые нередко тесно связаны с ПРПО, но конкретные механизмы, вызывающие разрыв, неизвестны [9, 10]. Все случаи ПРПО могут быть классифицированы на 2 группы: связанные с воспалительными изменениями плодных оболочек и вызванные другими причинами. Наиболее распространенной и изученной причиной является развитие внутри­амниотического воспаления (ВАВ).

В настоящее время вопрос о том, является ли воспалительный процесс первичным или возникает в результате разрыва плодных оболочек, что способствует вторичной инвазии, остается предметом дискуссии. Самым распространенным путем инвазии микроорганизмов является восходящая инфекция, приводящая к хориоамниониту и последующему инфицированию плода и новорожденного. Однако возможен также гематогенный путь распространения и ятрогенный, связанный с инвазивными процедурами пренатальной диагностики и фетальными хирургическими вмешательствами [11].

Изменение морфологии плодных оболочек, наиболее часто связанное с их воспалительными изменениями, разрушением коллагеновой структуры и отеком мембран, часто является результатом бактериальной инвазии и воздействия провоспалительных цитокинов. Медиаторы воспаления могут играть ключевую роль как в нарушении целостности мембран плода, так и в индукции сократительной активности матки. Размножение микроорганизмов является важным фактором, не только способствующим развитию ПРПО, но также может привести к неблагоприятным исходам как для матери, так и для плода [1].

Кроме того, микроорганизмы могут проникать в амниотическую полость у пациенток с интактными плодными оболочками и вызывать воспалительную реакцию, что также может способствовать вторичной микробной инвазии в амниотическую полость с последующим разрывом плодных оболочек [11].

В опубликованном обзоре Šket T. et al. (2021) отмечено, что микробная инвазия амниотической полости (МИАП) является не следствием обширного инфицирования амниохориальной оболочки, а предшествует ему. Авторы предположили, что МИАП начинается с интраамниотической бактериальной инвазии через микротрещины амниохориальной мембраны, за которой следует интраамниотическая пролиферация, и, следовательно, бактериальная инвазия в амниохориальную мембрану в первую очередь распространяется из амниотической жидкости [12]. В дальнейшем патогены идентифицируются рецепторами распознавания образов (pattern recognition receptors) – компонентом врожденной иммунной системы, который активирует синтез цитокинов, хемоаттрактантов цитокинов (хемокинов), простагландинов, протеаз, антимикробных пептидов и других механизмов врожденного иммунитета. Некоторые из них опосредованы нейтрофилами, моноцитами и лимфоцитами [13, 14]. Этот иммунный каскад может привести к сократительной активности матки, изменениям шейки матки и ПР. Более того, некоторые бактерии посредством высвобождения эндо- и экзотоксинов, разрушающих амниохориальную мембрану, или активируя синтез и высвобождение различных молекул (например, простагландинов), индуцирующих маточные сокращения и/или разрыв плодных оболочек, приводят к ПР [15, 16].

Следует отметить, что МИАП тесно связана со значительным повышением концентрации матрикcных металлопротеиназ (ММП)-8 и -9 в амниотической жидкости у пациенток с ПР и интактными плодными оболочками, а также у пациенток с ПРПО. ММП – это класс ферментов, которые разрушают компоненты внеклеточного матрикса, такие как коллаген, эластин, гликозаминогликаны и фибронектин. Они играют важную роль в процессах ремоделирования тканей. Коллаген I типа обеспечивает основную прочность на растяжение плодных оболочек. ММП-8, или коллагеназа нейтрофилов, расщепляет интерстициальные коллагены, действуя преимущественно на коллаген I типа, способствуя ослаблению коллагенового матрикса плодных оболочек [17, 18].

В исследовании Brown R.G. et al. [19] обнаружено, что бактериальный состав влагалища, характеризующийся истощением Lactobacillus spp. и высоким разнообразием микрофлоры, выявленный до разрыва плодных оболочек, примерно в трети случаев привел к преждевременному их разрыву [19]. Данные, полученные в исследованиях Кузнецовой Н.Б. и соавт. [20], демонстрируют, что бактериальная обсемененность влагалища лактобактериями истощается и замещается другой микрофлорой, такой как Prevotella, Streptococcus, Peptoniphilus, Ureaplasma и Dialister spp. [20]. Эти бактерии являются хорошо описанными условно-патогенными колонизаторами, способными повышать экспрессию ММП. Напротив, здоровая беременность характеризуется стабильным и низким разнообразием микрофлоры влагалища с содержанием Lactobacillus spp. >75% [21–23].

С целью выявления этиологических путей ВАВ Romero R. et al. провели исследование для определения микробиологического профиля амнио­тической жидкости у пациенток с ПРПО. Наличие ВАВ определялось по концентрации интерлей­кина-6 (ИЛ-6) в амниотической жидкости (ИЛ-6≥2,6 нг/мл). В исследование включены 59 пациентов, из которых в 30% случаев ВАВ не выявлен этиологический агент, в дальнейшем они классифицированы как имеющие стерильное интраамниотическое воспаление. Необходимо отметить, что распространенность микробно-ассоциированного и стерильного ВАВ различалась в зависимости от гестационного срока, в котором произошел разрыв плодных оболочек. Чем меньше срок гестации, тем выше распространенность микробно-ассоциированного воспаления [11].

В настоящее время стерильность амниотической полости даже при неповрежденных плодных оболочках подвергается сомнению [24, 25]. Baldwin E.A. et al. [26] и Aagaard K. et al. [27] выявили, что микробиом плаценты у пациенток с ПРПО имеет высокую индивидуальную вариабельность и слабо коррелирует с микробиомным профилем влагалища. Однако эти данные были опровергнуты de Goffau M.C. et al. [28], которые продемонстрировали, что микробиом плаценты состоит из нормальной флоры без патогенных микроорганизмов, но в нем могут определяться потенциальные патогены [28]. Противоречивые наблюдения этих исследований отражают сложность изучения микробиома плаценты, так как плацента является относительно труднодоступной тканью во время беременности, а после рождения легко контаминируется.

В связи с этим в последние годы появляется все больше работ, свидетельствующих об отсутствии выявленного инфекционного агента, что подтверждает асептическое воспаление амниотической полости [29–31].

Как отмечалось выше, асептическому воспалению могут предшествовать структурные изменения плодных оболочек, связанные с ремоделированием коллагена, повышенным ангиогенезом, усиленным клеточным апоптозом и воздействием тромбина, приводящие впоследствии к ослаблению механической прочности тканей. Асептическое воспаление является признаком зрелости плодных оболочек, ассоциированным со старением, и характеризуется главным образом присутствием воспалительных биомаркеров, факторов роста и ферментов, разрушающих коллагеновый матрикс [29]. Данные процессы могут быть связаны с биологическим старением плодных оболочек и являться физиологической реакцией организма при приближении к доношенному сроку беременности. Однако процессы созревания, инициирующие ПР, представляют научный интерес и предмет для дальнейшего поиска.

Старение плодных оболочек рассматривается как вариант асептического воспаления плодных оболочек, и это механизм, связанный с биологическим созреванием тканевых элементов вследствие активного роста плода [30, 31].

Инфекция, воспаление и связанный с ним окислительный стресс способствуют старению клеток амниотических мембран и отмечаются в плодных оболочках при преждевременном их разрыве [32–34]. Старение плодных оболочек предшествует процессу «асептического воспаления» в амниотической полости [35] во время нормальной беременности, которое является физиологической реакцией организма; тогда как воспалительные маркеры в плодных оболочках являются инфекционными в ответ на присутствие бактериальных агентов в амниотической полости [33]. В поддержку этой гипотезы было показано, что гистологический хориоамнионит на фоне отрицательного посева околоплодных вод увеличивает риск реализации ПР [36].

Разрыв плодных оболочек (физиологический или преждевременный), связанный со старением, сопровождается изменением плазменных концентраций sRAGE, HMGB1 и AGE [37], что подтверждается в исследованиях, проведенных Bouvier D. et al. [38], которые выявили связь между ПРПО и активацией RAGE, возможно, лигандом HMGB1.

Во время определенных стадий стерильного воспаления клетки выделяют маркеры молекулярного паттерна, связанные с воспалительным повреждением – damage-associated molecular pattern markers (DAMPs) [8], такие как high-mobility group box 1 (HMGB1), который индуцирует воспалительную реакцию, частично опосредованную инфламмасомой в плодных оболочках [39]. HMGB1 также является известным лигандом рецептора конечных продуктов усиленного гликирования (RAGE), который связан с осложнениями беременности, такими как преэклампсия и/или ПРПО [37, 40–43].

Клеточное старение происходит в плаценте человека и плодных оболочках по мере приближения срока беременности, близкого к доношенному. В то время как последнее является физиологическим, преждевременное старение может привести к преждевременному разрыву мембран [30, 44]. Секреторный фенотип, ассоциированный со старением (senescence associated secretory phenotype, SASP), представляет собой уникальную воспалительную сигнатуру, генерируемую стареющими клетками. Экспрессия SASP-подобного пролиферата в плодных мембранах в сроке родов доминирует над генами воспалительного утеротонического пути, что позволяет предположить участие клеточного старения в плодных мембранах в качестве сигнала для инициации ПР [30, 31, 44].

Одна из невоспалительных причин разрыва плодных оболочек связана с ремоделированием коллагена и процессом, связанным с биологическим процессом их созревания. Согласно данным Kumar D. et al. [10], ближе к доношенному сроку беременности развивается парацервикальная «слабая зона», характеризующаяся ремоделированием коллагена и апоптозом клеток амниона, в пределах которой инициируется разрыв плодных оболочек. В более ранние сроки плодные оболочки также имеют «weak zone (слабые зоны)», но в целом они прочнее, чем при доношенной беременности.

Наиболее вероятно, что разрыв плодных оболочек является результатом процесса ремоделирования (созревания), аналогичного тому, который наблюдается в шейке матки. И в шейке матки, и в амнионе изменения типа коллагена и матрикса вызывают начальное структурное ослабление, за которым следует клеточный апоптоз. Эти изменения были зарегистрированы на экспериментальных животных моделях. Однако у человека при доношенной беременности плодные оболочки не имеют таких глобальных изменений, а скорее, «созревает» фокальный очаг над шейкой матки, в которой обнаруживаются морфологические изменения с ремоделированием коллагена и апоптозом клеток амниона [10].

Низяевой Н.В. и соавт. [45] были изучены структурные изменения плодных оболочек последов при ПР. Были отмечены ослабление механической прочности плодных оболочек за счет усиления ангиогенеза в компактном слое и децидуальной пластинке и появление в этих структурах множественных дефектов и микроразрывов. Полученные результаты свидетельствуют о том, что на доношенном сроке беременности происходит повышение васкуляризации плодных оболочек, приводящее к их разрыву и началу родов. Развитие данных изменений на более ранних сроках беременности может являться причиной ПР.

В исследованиях, проведенных Menon R. и Richardson L. [8, 46], было выявлено существование структурных дефектов в плодных оболочках, называемых микротрещинами. Эти участки характеризуются деградацией коллагена, формируя каналы для клеток и амниотической жидкости. Морфометрические показатели микротрещин (ширина и глубина) в плодных оболочках были выше у женщин, у которых произошли роды при доношенном сроке беременности. Однако также были обнаружены микротрещины в плодных оболочках при родах в гестационном сроке 28–34 недели у беременных с преэклампсией, при которой, возможно, происходило изменение структуры строения плодных оболочек, что могло способствовать разрыву оболочек. Авторы предполагают, что микротрещины представляют собой области недостаточного ремоделирования тканей из-за основного патологического состояния или преждевременного старения плодных оболочек под воздействием окислительного стресса [46]. Также микротрещины были обнаружены при изучении биологического процесса, связанного со старением плодных оболочек [9]. Кроме того, в литературе описывается мнение Mogami H. et al [47], Richardson L. и Menon R. [48] о том, что плюрипотентные клетки амниона способны самостоятельно заживлять образующиеся дефекты (микротрещины) в плодных оболочках.

Вышеизложенное свидетельствует о многофакторной природе данного осложнения беременности, возможном сочетании нескольких этиологических агентов и высокой вероятности воздействия воспалительных агентов на предварительно ослабленные ткани.

Следует отметить, что в работах зарубежных авторов отмечается необходимость проведения амниоцентеза с целью улучшения диагностики ВАВ. Данный метод представляет собой инвазивное медицинское вмешательство и имеет ряд осложнений и противопоказаний. В то же время современные возможности предполагают, что неинвазивные методы диагностики являются преимущественными для выявления пациенток группы высокого риска, избегая при этом ненужных вмешательств у пациенток группы низкого риска [49, 50].

Выявление факторов риска развития ПРПО позволит антенатально выявить и устранить угрозу ПР, прогнозировать и проводить профилактику возможных инфекционных осложнений у матери и плода с целью снижения перинатальной и материнской заболеваемости и смертности.

В последние годы рядом авторов производились исследования, направленные на выявление потенциальных биомаркеров в материнской крови, моче, цервиковагинальной жидкости, которые могут прогнозировать развитие внутриамниотической инфекции [50–52]. Однако ни один из биомаркеров не продемонстрировал достаточной чувствительности и специфичности, чтобы заменить биомаркеры, полученные из амниотической жидкости. Кроме того, недостаточно данных о корреляции экспрессии воспалительных маркеров в образцах, полученных неинвазивным путем, с выраженностью воспалительного процесса в амниотической жидкости. Решение этих вопросов имеет клиническое значение не только для лучшего понимания воспалительных иммунных реакций на бактериальную инвазию в различных отделах, но и для выявления внутриамниотической инфекции, избегая при этом риска и сложности инвазивного вмешательства.

Заключение

Таким образом, перспективным является внедрение новых методов исследования, позволяющих раскрыть или уточнить механизмы асептического и инфекционного путей патогенеза ПРПО. С этих позиций интересным является изучение данного осложнения беременности на основе масс-спектрометрии, что поможет выявить дифференциальные паттерны экспрессии белков, связанные с воспалением, окислительным стрессом и бактериальной инвазией в амниотической жидкости и плодных оболочках. Применение омиксных технологий – геномики (исследование на уровне считывания генетической информации), эпигеномики (изучение регуляторных систем реализации генетической информации), транскриптомики (детекция активности генов), протеомики (анализ белков), метаболомики (анализ конечных продуктов преобразования веществ – метаболитов) позволит выявлять потенциальные биомаркеры одновременно на различных молекулярных уровнях в организме человека, что делает их использование перспективным для проведения исследований по изучению заболеваний, где нет одного основного патофизиологического механизма развития изучаемого состояния. Внедрение в клиническую практику неинвазивных маркеров обеспечит возможность своевременного проведения профилактических мер, назначения терапии и определения тактики ведения беременных с целью улучшения перинатальных исходов.

Список литературы

  1. Tchirikov M., Schlabritz-Loutsevitch N., Maher J., Buchmann J., Naberezhnev Y., Winarno A.S. et al. Mid-trimester preterm premature rupture of membranes (PPROM): etiology, diagnosis, classification, international recommendations of treatment options and outcome. J. Perinat. Med. 2018; 46(5): 465-88. https://dx.doi.org/10.1515/jpm-2017-0027.
  2. Peaceman A.M., Lai Y., Rouse D.J., Spong C.Y., Mercer B.M., Varner M.W. et al. Length of latency with preterm premature rupture of membranes before 32 weeks’ gestation. Am. J. Perinatol. 2015; 32(1): 57-62. https://dx.doi.org/10.1055/s-0034-1373846.
  3. Thomson A.J. Care of women presenting with suspected preterm prelabour rupture of membranes from 24 (+0) weeks of gestation: Green-top Guideline No. 73. BJOG. 2019; 126(9): e152-66. https://dx/doi.org/10.1111/1471-0528.15803.
  4. Ohuma E.O., Moller A.-B., Bradley E., Chakwera S., Hussain-Alkhateeb L., Lewin A. et al. National, regional, and worldwide estimates of preterm birth in 2020, with trends from 2010: a systematic analysis. Lancet. 2023; 402(10409): 1261-71. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(23)00878-4.
  5. Perin J., Mulick A., Yeung D., Villavicencio F., Lopez G., Strong K.L. et al. Global, regional, and national causes of under-5 mortality in 2000-19: an updated systematic analysis with implications for the Sustainable Development Goals. Lancet Child Adolesc. Health. 2022; 6(2): 106-15. https://dx.doi.org/10.1016/S2352-4642(21)00311-4.
  6. Bond D.M., Middleton P., Levett K.M., van der Ham D.P., Crowther C.A., Buchanan S.L. et al. Planned early birth versus expectant management for women with preterm prelabour rupture of membranes prior to 37 weeks' gestation for im-proving pregnancy outcome. Cochrane Database Syst. Rev. 2017; 3(3): CD004735. https://dx.doi.org/10.1002/14651858.
  7. Siegler Y., Weiner Z., Solt I. ACOG Practice Bulletin No. 217: prelabor rup-ture of membranes. Obstet. Gynecol. 2020; 136(5): 1061. https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000004142.
  8. Menon R., Richardson L.S. Preterm prelabor rupture of the membranes: A disease of the fetal membranes. Semin. Perinatol. 2017; 41(7): 409-19. https://dx.doi.org/10.1053/j.semperi.2017.07.012.
  9. Menon R., Richardson L.S., Lappas M. Fetal membrane architecture, aging and inflammation in pregnancy and parturition. Placenta. 2019; 79: 40-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2018.11.003.
  10. Kumar D., Moore R.M., Mercer B.M., Mansour J.M., Redline,R.W., Moore J.J. The physiology of fetal membrane weakening and rupture: Insights gained from the determination of physical properties revisited. Placenta. 2016; 42: 59-73. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2016.03.015.
  11. Romero R., Miranda J., Chaemsaithong P., Chaiworapongsa T., Kusanovic J.P., Dong Z. et al. Sterile and microbial-associated intra-amniotic inflammation in preterm prelabor rupture of membranes. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2015; 28(12): 1394-409. https://dx.doi.org/10.3109/14767058.2014.958463.
  12. Šket T., Ramuta T.Ž., Starčič Erjavec M., Kreft M.E. The role of innate immune system in the human amniotic membrane and human amniotic fluid in protection against intra-amniotic infections and inflammation. Front. Immunol. 2021; 12: 735324. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2021.735324.
  13. Helmo F.R., Alves E.A. R., Moreira R.A.A., Severino V.O., Rocha L.P., Mon-teiroM. et al. Intrauterine infection, immune system and premature birth. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2018; 31(9): 1227-33. https://dx.doi.org/10.1080/14767058.2017.1311318.
  14. Gomez-Lopez N., Romero R., Xu Y., Miller D., Leng Y., Panaitescu B. et al. The immunophenotype of amniotic fluid leukocytes in normal and complicated pregnancies. Am. J. Reprod. Immunol. 2018; 79(4): e12827. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12827.
  15. Mendz G.L., Kaakoush N.O., Quinlivan J.A. Bacterial aetiological agents of intra-amniotic infections and preterm birth in pregnant women. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2013; 3: 58. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2013.00058.
  16. Peng C.C., Chang J.H., Lin H.Y., Cheng P.J., Su B.H. Intrauterine inflammation, infection, or both (Triple I): a new concept for chorioamnionitis. Pediatr.Neonatol. 2018; 59(3): 231-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.pedneo.2017.09.001.
  17. Кан Н.Е., Санникова М.В., Донников А.Е., Климанцев И.В., Амирасланов Э.Ю., Ломова Н.А., Кесова М.И., Костин П.А., Тютюнник В.Л., Сухих Г.Т. Клинические и молекулярно-генетические факторы риска преждевременного разрыва плодных оболочек. Акушерство и гинекология. 2013; 4: 14-8.
  18. Кim H.J., Park K.H., Joo E., Lee J.Y., Im E.M., Lee K.N., Shin S. Expression of inflammatory, angiogenic, and extracellular matrix-related mediators in the cervicovaginal fluid of women with preterm premature rupture of membranes: Relationship with acute histological chorioamnionitis. Am. J. Reprod. Immunol. 2023; 89(5): e13697. https://dx.doi.org/10.1111/aji.13697.
  19. Brown R.G., Marchesi J.R., Lee Y.S., Smith A., Lehne B., Kindinger L.M. et al. Vaginal dysbiosis increases risk of preterm fetal membrane rupture, neonatal sepsis and is exacerbated by erythromycin. BMC Med. 2020; 47(4): 9. https://dx.doi.org/10.1186/s12916-017-0999-x.
  20. Кузнецова Н.Б., Буштырева И.О., Дыбова В.С., Баринова В.В., Полев Д.Е., Асеев М.В., Дудурич В.В. Микробиом влагалища у беременных с прежде­временным разрывом плодных оболочек в сроке от 22 до 28 недель беременности. Акушерство и гинекология. 2021; 1: 94-102.
  21. Brown R.G., Al-Memar M., Marchesi J.R., Lee Y.S., Smith A., Chan D. et al. Establishment of vaginal microbiota composition in early pregnancy and its association with subsequent preterm prelabor rupture of the fetal membranes. Transl. Res. 2019; 207: 30-43. https://dx.doi.org/10.1016/j.trsl.2018.12.005.
  22. Bennett P.R., Brown R.G., MacIntyre D.A. Vaginal microbiome in preterm rupture of membranes. Obstet. Gynecol. Clin. North Am. 2020; 47(4): 503-21. https://dx.doi.org/10.1016/j.ogc.2020.08.001.
  23. Yan C., Hong F., Xin G., Duan S., Deng X., Xu Y. Alterations in the vaginal microbiota of patients with preterm premature rupture of membranes. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2022; 12: 858732. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2022.858732.
  24. Perez-Muñoz M.E., Arrieta M.C., Ramer-Tait A.E., Walter J. A critical assessment of the “sterile womb” and “in utero colonization” hypotheses: implications for research on the pioneer infant microbiome. Microbiome. 2017; 5(1): 48. https://dx.doi.org/10.1186/s40168-017-0268-4.
  25. Blaser M.J., Devkota S., McCoy K.D., Relman D.A., Yassour M., Young V.B. Lessons learned from the prenatal microbiome controversy. Microbiome. England. 2021; 9(1): 8. https://dx.doi.org/10.1186/s40168-020-00946-2.
  26. Baldwin E.A., Walther-Antonio M., MacLean A.M., Gohl D.M., Beckman K.B., Chen J. et al. Persistent microbial dysbiosis in preterm premature rupture of membranes from onset until delivery. PeerJ. 2015; 3: e1398. https://dx.doi.org/10.7717/peerj.1398.
  27. Aagaard K., Ma J., Antony K.M., Ganu R., Petrosino J., Versalovic J. The placenta harbors a unique microbiome. Sci. Transl. Med. 2014; 6(237): 237ra65. https://dx.doi.org/10.1126/scitranslmed.3008599.
  28. de Goffau M.C., Lager S., Sovio U., Gaccioli F., Cook E., Peacock S.J. et al. Human placenta has no microbiome but can contain potential pathogens. Nature. 2019; 572(7769): 329-34. https://dx.doi.org/10.1038/s41586-019-1451-5.
  29. Gomez-Lopez N., Romero R., Plazyo O., Schwenkel G., Garcia-Flores V., Unkel R. et al. Preterm labor in the absence of acute histologic chorioamnionitis is characterized by cellular senescence of the chorioamniotic membranes. Am. J. Obstet. Gynecol. 2017; 217(5): 592.e1-592.e17. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2017.08.008.
  30. Behnia F., Taylor B.D., Woodson M., Kacerovsky M., Hawkins H., Fortunato S.J. et al. Chorioamniotic membrane senescence: a signal for parturition? Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213(3): 359.e1-16. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2015.05.041.
  31. Menon R., Boldogh I., Urrabaz-Garza R., Polettini J., Syed T.A., Saade G.R. et al. Senescence of primary amniotic cells via oxidative DNA damage. PLoS One. 2013; 8(12): e83416. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0083416.
  32. Dutta E.H., Behnia F., Boldogh I., Saade G.R., Taylor B.D., Kacerovský M. et al. Oxidative stress damage-associated molecular signaling pathways differentiate spontaneous preterm birth and preterm premature rupture of the membranes. Mol. Hum. Reprod. 2016; 22(2): 143-57. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gav074.
  33. Dixon C.L., Richardson L., Sheller-Miller S., Saade G., Menon R. A distinct mechanism of senescence activation in amnion epithelial cells by infection, inflammation, and oxidative stress. Am. J. Reprod. Immunol. 2018; 79(3): e12790. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12790.
  34. Richardson L.S., Radnaa E., Urrabaz-Garza R., Lavu N., Menon R. Stretch, scratch, and stress: Suppressors and supporters of senescence in human fetal membranes. Placenta. 2020; 99: 27-34. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2020.07.013.
  35. Bredeson S., Papaconstantinou J., Deford J.H., Kechichian T., Syed T.A., Saade G.R. et al. HMGB1 promotes a p38MAPK associated non-infectious inflammatory response pathway in human fetal membranes. PLoS One. 2014; 9(12): e113799. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0113799.
  36. Park J.W., Park K.H., Jung E.Y. Clinical significance of histologic chorioamnionitis with a negative amniotic fluid culture in patients with preterm labor and premature membrane rupture. PLoS One. 2017; 12(3): e0173312. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0173312.
  37. Choltus H., Lavergne M., Belville C., Gallot D., Minet-Quinard R., Durif J. et al. Occurrence of a RAGE-mediated inflammatory response in human fetal membranes. Front. Physiol. 2020; 11: 581. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2020.00581.
  38. Bouvier D., Giguère Y., Blanchon L., Bujold E., Pereira B., Bernard N. et al. Study of sRAGE, HMGB1, AGE, and S100A8/A9 concentrations in plasma and in serum-extracted extracellular vesicles of pregnant women with preterm premature rupture of membranes. Front. Physiol. 2020; 11: 609. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2020.00609.
  39. Plazyo O., Romero R., Unkel R., Balancio A., Mial T.N., Xu Y. et al. HMGB1 induces an inflammatory response in the chorioamniotic membranes that is partially mediated by the inflammasome. Biol. Reprod. 2016; 95(6): 130. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.116.144139.
  40. Naruse K., Sado T., Noguchi T., Tsunemi T., Yoshida S., Akasaka J. et al. Peripheral RAGE (receptor for advanced glycation endproducts)-ligands in normal pregnancy and preeclampsia: novel markers of inflammatory response. J. Reprod. Immunol. 2012; 93(2): 69-74. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2011.12.003.
  41. Rzepka R., Dołegowska B., Rajewska A., Kwiatkowski S., Sałata D., Budkowska М. et al. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 568042. https://dx.doi.org/10.1155/2015/568042.
  42. Yan H., Zhu L., Zhang Z., Li H., Li P., Wang Y. et al. HMGB1-RAGE signaling pathway in pPROM. Taiwan. J. Obstet. Gynecol. 2018; 57(2): 211-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.tjog.2018.02.008.
  43. Choltus H., Lavergne M., De Sousa Do Outeiro C., Coste K., Belville C., Blanchon L. et al. Pathophysiological implication of pattern recognition receptors in fetal membranes rupture: RAGE and NLRP inflammasome. Biomedicines. 2021; 9(9): 1123. https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines9091123.
  44. Behnia F., Saade G., Michael V., Kacerovsky M., Dutta E., Polettini J. et al. 98: Term fetal membranes and senescence associated secretory phenotype (SASP)-like gene expression: a signal for parturition? Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 212(1): S66. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2014.10.144.
  45. Низяева Н.В., Карапетян А.О., Гапаева М.Д., Синицына В.А., Баев О.Р. Структурные особенности плодных оболочек при преждевременных родах. Акушерство и гинекология. 2019; 8: 63-9.
  46. Richardson L.S., Vargas G., Brown T., Ochoa L., Sheller-Miller S., Saade G.R. et al. Discovery and сharacterization of human amniochorionic membrane icrofractures. Am. J. Pathol. 2017; 187(12): 2821-30. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2017.08.019.
  47. Mogami H., Word R.A. Healing mechanism of ruptured fetal membrane. Front.Physiol. 2020; 11: 623. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2020.00623.
  48. Richardson L., Menon R. Proliferative, migratory, and transition properties reveal metastate of human amnion cells. Am. J. Pathol. 2018; 188(9): 2004-15. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2018.05.019.
  49. Горина К.А., Ходжаева З.С., Чаговец В.В., Стародубцева Н.Л., Франкевич В.Е., Припутневич Т.В. Особенности профиля органических кислот амниотической и цервико-вагинальной жидкостей беременных высокого риска преждевременных родов. Акушерство и гинекология. 2022; 3: 39-48.
  50. Cobo T., Burgos-Artizzu X.P., Collado M.C., Andreu-Fernández V., Sanchez-Garcia A.B., Filella X. et al. Noninvasive prediction models of intra-amniotic infection in women with preterm labor. Am. J. Obstet. Gynecol. 2023; 228(1): 78. e1-78.e13. https:/dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2022.07.027.
  51. Yoshikawa K., Kiyoshima C., Hirakawa T., Urushiyama D., Fukagawa S., Izuchi D. et al. Diagnostic predictability of miR-4535 and miR-1915-5p expression in amniotic fluid for foetal morbidity of infection. Placenta. 2021; 114: 68-75. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2021.08.059.
  52. Back J.H., Kim S.Y., Gu M.B., Kim H.J., Lee K.N., Lee J. et al. Proteomic analysis of plasma to identify novel biomarkers for intra-amniotic infection and/or inflammation in preterm premature rupture of membranes. Sci. Rep. 2023; 13(1): 5658. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-023-32884-y.

Поступила 18.08.2023

Принята в печать 01.09.2023

Об авторах / Для корреспонденции

Баисова Альмира Рамазановна, аспирант, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(932)099-10-04, almira.baisova@mail.ru, https://orcid.org/0009-0004-4546-2388, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Амирасланов Эльрад Юсифович, к.м.н., заведующий акушерским отделением, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-30-47, eldis@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-5601-1241,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Франкевич Владимир Евгеньевич, д.ф.-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, v_frankevich@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-9780-4579,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Чаговец Виталий Викторович, к.ф.-м.н., заведующий лабораторией метаболомики и биоинформатики, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, v_chagovets@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-5120-376X,
117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.
Тютюнник Виктор Леонидович, профессор, д.м.н., в.н.с. центра научных и клинических исследований, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(903)969-50-41, tioutiounnik@mail.ru, Researcher ID: B-2364-2015, SPIN-код: 1963-1359, Authors ID: 213217, Scopus Author ID: 56190621500, https://orcid.org/0000-0002-5830-5099, 117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.

Также по теме