ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Бактериальный вагиноз и антимикробная активность во время беременности

Карапетян Т.Э., Арзуманян В.Г., Тютюнник В.Л., Кан Н.Е., Ломова Н.А., Канюкина А.А.

1 ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва; 2 ФГБНУ Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова РАМН, Москва; 3 Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова
Цель исследования. Сопоставление антимикробной активности вагинального отделяемого с характером течения бактериального вагиноза, состоянием рН влагалища и микробиологическими показателями.
Материал и методы. В исследование были включены 53 беременные, из которых у 34 диагностирован бактериальный вагиноз и у 19 – нормальный микробиоценоз влагалища. Тяжесть бактериального вагиноза оценивали по сумме баллов с использованием совокупности клинических симптомов: зуд, жжение, характер и количество выделений, боли при мочеиспускании, диспареуния, дерматит перианальной зоны, отечность, гиперемия и эрозивные поражения стенок влагалища. С целью определения антимикробной активности эпителия влагалища исследовали образцы вагинального отделяемого. Противомикробная активность антимикробных пептидов определялась в группах беременных в зависимости от характера проявления клинических симптомов бактериального вагиноза.
Результаты. Продукция эндогенных антибиотиков – антимикробных пептидов обеспечивает адекватную защиту от инфекционных агентов. Снижение активности антимикробных пептидов приводит к количественному возрастанию факультативной микрофлоры влагалища и истощению облигатной микрофлоры, что способствует более выраженному клиническому течению бактериального вагиноза.
Заключение. Расширение диагностических параметров в комплексе обследования беременных с воспалительными и дисбиотическими нарушениями в нижних отделах репродуктивного тракта путем включения показателей системного и локального иммунитета, наряду с микробиологическим мониторингом и использованием интегральной оценки состояния микробиоценоза влагалища, позволит персонифицировать терапевтические подходы для каждой конкретной пациентки.

Ключевые слова

бактериальный вагиноз
беременность
антимикробные пептиды
микробиоценоз влагалища

Внедрение современных диагностических технологий в клиническую микробиологию позволило обнаружить, что постоянство видового и количественного состава нормальной микрофлоры обеспечивает колонизационную резистентность влагалища и противостоит заселению биотопа патогенными микроорганизмами или чрезмерному росту собственной условно-патогенной микрофлоры и транслокации ее в локусы, несвойственные данным видам. Это достигается участием лактобацилл в создании биопленки при адгезии их на эпителиальных клетках влагалища и продукцией лактобактериями антимикробных протеиновых субстанций – бактериоцинов, а также молочной кислоты. Более того, вагинальный и цервикальный эпителий секретирует антимикробные пептиды (АМП), которые препятствуют колонизации экзогенными микроорганизмами [1, 2].

Известно более 500 АМП, которые защищают эпителиальные ткани человека и животных от внедрения бактерий, грибов, простейших, вирусов, оказывая антимикробное действие, поэтому их называют натуральными антибиотиками. Также они играют важную роль в развитии процессов воспаления, поддержании и регуляции адаптивной иммунной системы [1, 2].

Во влагалище обнаружены несколько видов АМП, которые представлены дефенсинами, кателицидинами, секреторным ингибитором лейкоцитарных протеаз (SLPI), элафином и лизоцимом. В настоящее время фундаментальные исследования, посвященные роли дефенсинов в противомикробной защите нижних отделов половых путей, активно внедряются в клиническую медицину. Описаны 2 группы дефенсинов человека – α и ß. α-дефенсины представлены в полиморфноядерных нейтрофилах и принимают участие в иммунологическом ответе. ß-дефенсины проявляют антиинфекционную активность в отношении грамотрицательных бактерий и дрожжеподобных грибов [3–5].

Антимикробные субстанции лактобацилл и антимикробные полипептиды влагалищного эпителия формируют защитный экологический барьер, препятствующий колонизации несвойственными данному биотопу видами микроорганизмов. Несмотря на это, около 75% женщин имеют вагинальную инфекцию, а 5–10% из них страдают рецидивирующим бактериальным вагинозом (БВ) [6–8]. Однако трудно оценить, что в большей степени влияет на реализацию иммунного ответа – прямое бактерицидное и противовирусное действие АМП на патогенные микроорганизмы или их иммуномодулирующий эффект.

Клинически доказано, что АМП угнетают рост грамположительных и грамотрицательных бактерий, грибов и некоторых вирусов, проявляя биологическую эффективность в репродуктивном тракте в содействии с другими факторами местного иммунитета.

На сегодня описаны два больших подсемейства класса АМП: дефенсины и кателицидины. Из множества АМП клетками-продуцентами и локусами α- и ß-дефенсинов являются лимфоциты, фагоциты и эпителиоциты респираторного, желудочно-кишечного и урогенитального тракта. Дефенсины на местном уровне одними из первых обеспечивают защиту организма в ответ на заражение бактериями, грибами и вирусами, так как продуцируются эпителием влагалища и шейки матки.

Принимая во внимание поиск новых подходов в диагностике и терапии БВ в период беременности, исследование защитных свойств антимикробных пептидов в ответ на инфекционные агенты при БВ является актуальным.

Цель исследования: сопоставление антимикробной активности вагинального отделяемого с характером течения БВ, состоянием рН влагалища и микробиологическими показателями.

Материал и методы исследования

В исследование были включены 53 беременные, из которых у 34 диагностирован БВ и у 19 – нормальный микроценоз влагалища.

Наличие и тяжесть БВ оценивали при помощи количественной шкалы Nugent (Nugent’s Diagnostic Criteria for Bacterial Vaginosis 1991, табл. 1). Крите­рием БВ являлось наличие 7 и более баллов. Оценка от 4 до 6 баллов рассматривалась как показатель промежуточного типа микробиоценоза, а от 0 до 3 считали показателем нормального микробиоценоза влагалища.

При микроскопическом исследовании мазков после окрашивания по Граму визуально оценивали наличие и обилие лактобацилл, бактероидов, грамположительных кокков и гарднерелл. Обилие выражали в баллах по 4-балльной шкале, где 0 – отсутствие данной группы микроорганизмов, 1 – единичные клетки в поле зрения, 2 – умеренное количество клеток, 3 – обилие клеток.

Беременные с верифицированным диагнозом БВ в последующем были разделены на 3 подгруппы, в зависимости от тяжести клинических проявлений заболевания. Нами была разработана балльная шкала оценки клинических симптомов БВ, в которую входили такие критерии, как зуд, жжение, гиперемия, отечность, боли при мочеиспускании, диспареуния, эрозивные поражения слизистой влагалища и вульвы, характер влагалищных выделений. По результатам анкетирования пациентка могла набрать от 0 до 18 баллов. В соответствии с полученной суммой баллов в 1-ю подгруппу вошли пациентки с легким течением БВ (сумма баллов 3–8), во 2-ю – средней степени тяжести (9–12 баллов) и в 3-ю – пациентки с тяжелым БВ (13–18 баллов). В каждой подгруппе было проведено микробиологическое обследование с обязательной оценкой рН влагалищной среды и исключением возможного инфицирования абсолютными патогенами.

Для определения антимикробной активности эпителия влагалища исследовали образцы вагинального отделяемого. Противомикробную активность определяли следующим образом: клетки 3-суточной тест – культуры Escherichia coli инкубировали при 32оС и соотношении 40 мкл вагинального отделяемого/10 мкл бактериальной суспензии 104 КОЕ/мл.

Из данной смеси сразу после смешивания и инкубации в течение 2 часов производили посевы. Результат вычисляли выражением процента клеток, убитых в процессе инкубации.

Противомикробная активность АМП определялась в группах беременных в зависимости от характера проявления клинических симптомов БВ.

Разделение белков в образцах вагинального отделяемого проводили методом SDS-электрофореза в градиенте 5–20% полиакриламидного геля. Образцы готовили в неденатурирующих условиях, смешивая 1 объем образца с 2 объемами буфера и нанося по 40 мкл образца на дорожку. Окрашивание проводили с помощью Кумасси R-250. В качестве стандартов молекулярной массы использовали смесь LMW («Амершам-Фармация»).

Статистическая обработка полученных результатов была проведена на персональном компьютере при помощи программного пакета SPSS Statistics 22.0 for Windows. Для определения статистической значимости различий применялись точный двухсторонний критерий Фишера и U-тест Манна–Уитни для несвязанных совокупностей. Отношение шансов (OR) приведено с 95% доверительным интервалом (CI).

Результаты исследования

После отбора пациенток и проведения необходимого спектра обследований нами была проведена оценка характера микрофлоры. Выявленные микроорганизмы были условно разделены на две группы: «облигатная микрофлора» (лактобациллы и бактероиды) и «факультативная микрофлора» (кокки и гарднереллы). Результаты комплексной оценки представлены в табл. 2.

Данные, представленные в таблице, показывают, что наиболее высокие значения баллов по облигатной микрофлоре находились в группе беременных с нормальным микроценозом влагалища, наиболее низкие – у беременных с тяжелой формой БВ. В свою очередь, в группе здоровых беременных показатель факультативной микрофлоры был наименьшим и наибольшим в группе с тяжелым БВ. Облигатная и факультативная микрофлора находились в обратной и тесной корреляционной взаимосвязи во всех группах беременных, при этом обилие факультативной микрофлоры положительно коррелировало с тяжестью БВ, тогда как обилие облигатной микрофлоры – имело обратную корреляционную связь.

Поскольку показатель рН влагалища является результатом метаболизма молочнокислых бактерий, самый низкий рН был обнаружен в группе здоровых беременных, где наблюдалось обилие лактобацилл, в то время как наибольшие значения рН находились в группе пациенток с тяжелым течением БВ. Таким образом, значения показателя рН влагалищной среды на прямую зависели как от тяжести клинического течения БВ, так и от количественной оценкой микрофлоры данного локуса.

Исследование показало, что наиболее высокая активность АМП обнаружена в группе здоровых беременных, равная 78,2±13,6% (рис. 1).

По мере нарастания тяжести заболевания у инфицированных беременных совокупная активность АМП достоверно снижалась по сравнению с группой здоровых беременных, составляя 43,6±21,2% у женщин с легкой формой БВ, 35,5±15,6% с БВ средней степени тяжести и 34,4±8,2% – у беременных с тяжелым течением БВ (р<0,05). Коэффициент корреляции между противомикробной активностью АМП и степенью выраженности симптомов заболевания выявил отрицательную связь (r=-0,936).

Для определения причины снижения антимикробной активности при БВ мы произвели разделение белков вагинального отделяемого в градиенте полиакриламидного геля (рис. 2).

В полученных образцах определяются полосы, соответствующие антимикробным пептидам. Дорожка № 2 соответствует образцу от беременной из группы контроля (антимикробная активность 100,0%). На дорожке различимы такие полипептиды, как кальпротектин с молекулярной массой порядка 37 кДа, кателицидин hCAP18 (18 кДа), SLPI (около 12 кДа), лизоцим (14,5 кДа), а также дефенсины (менее 5 кДа). Дорожка № 1 – легкая степень клинических проявлений БВ (сумма симптомов 7 баллов, антимикробная активность 66,7%). При этом отсутствует кальпротектин и различимы прочие белки, но полосы не такие интенсивные. Дорожка № 3 – средняя степень клинических проявлений (сумма симптомов 11 баллов, антимикробная активность 21,6%) – не обнаружен кальпротектин и слегка различимы дефенсины. Дорожка № 4 – тяжелый БВ (сумма симптомов 15 баллов, антимикробная активность 0,0%). В ней нет кальпротектина, определяется слабая полоса лизоцима, дефенсины отсутствуют.

Обсуждение

В слизистых репродуктивного тракта отмечается выраженная экспрессия факторов врожденного иммунитета. Отмечается постоянное взаимодействие факторов локальной защиты и условно-патогенной микробиоты влагалища.

Обязательной составной частью микроэкосистемы влагалища являются эндогенные катионные АМП. Они образуются эпителием барьерных тканей и клетками крови (нейтрофилами). Продукция АМП запускается в результате взаимодействия структур микробов с Толл-подобными рецепторами (TLR) клеток, что сопровождается интенсивным образованием провоспалительных цитокинов [9]. АМП кроме антимикробного действия участвуют в регуляции воспаления и в формировании приобретенного иммунитета.

Дисбаланс компонентов врожденного иммунитета: нарушение экспрессии гена ß-дефенсина 1 (HBD1) и TLR в эпителиальных клетках нижних отделов мочеполового тракта и в клетках плаценты является маркером реализации внутриутробной инфекции [9, 10].

Снижение концентраций АМП в отделяемом влагалища у беременных с БВ выявляли и ранее [11], однако изучение этих данных на фоне различной тяжести заболевания практически не проводилось. Из полученных нами результатов можно сделать вывод, что наиболее важными звеньями в противобактериальной защите влагалища у данных пациенток являются кальпротектин, дефенсины и лизоцим.

Изучение антимикробной активности отделяемого нижних отделов репродуктивного тракта у пациенток с БВ показало уменьшение концентраций дефенсинов у данного контингента пациенток по сравнению со здоровыми женщинами и пациентками с вульвовагинальным кандидозом [12, 13]. После проведения курса терапии отмечалась нормализация уровня дефенсинов. Снижение уровня антимикробных пептидов при БВ вызвано уникальной способностью Gardnerella vaginalis к изменению локального иммунного ответа. На клеточной поверхности гарднерелл отсутствуют липополисахариды, а пептидогликаны обнаруживаются в низкой концентрации, и, следовательно, не приводят к должной активации Толл-подобных рецепторов и выработке дефенсинов.

Таким образом, продукция эндогенных антибиотиков – АМП обеспечивает адекватную защиту от инфекционных агентов. Снижение активности АМП приводит к количественному возрастанию факультативной микрофлоры влагалища и истощению облигатной микрофлоры, что способствует более выраженному клиническому течению БВ.

Заключение

Расширение диагностических параметров в комплексе обследования беременных с воспалительными и дисбиотическими нарушениями в нижних отделах репродуктивного тракта, путем включения показателей системного и локального иммунитета, наряду с микробиологическим мониторингом с использованием интегральной оценки состояния микробиоценоза влагалища, позволит персонифицировать терапевтические подходы для каждой конкретной пациентки.

Список литературы

1. Nelson D.B., Rockwell L.C., Prioleau M.D., Goetzl L. The role of the bacterial microbiota on reproductive and pregnancy health. Anaerobe. 2016; 42: 67-73.

2. Cavera V.L., Volski A., Chikindas M.L. The natural antimicrobial subtilosin A synergizes with Lauramide Arginine Ethyl Ester (LAE), ε-poly-L-lysine (Polylysine), clindamycin phosphate and metronidazole, against the vaginal pathogen Gardnerella vaginalis. Probiotics Antimicrob. Proteins. 2015; 7(2): 164-71.

3. Анкирская А.С., Муравьева В.В. Опыт микробиологической диагностики оппортунистических инфекций влагалища. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001; 3(2): 190-4.

4. Doerflinger S.Y., Throop A.L., Herbst-Kralovetz M.M. Bacteria in the vaginal microbiome alter the innate immune response and barrier properties of the human vaginal epithelia in a species-specific manner. J. Infect. Dis. 2014; 209(12): 1989-99.

5. Mitchell C., Gottsch M.L., Liu C., Fredricks D.N., Nelson D.B. Associations between vaginal bacteria and levels of vaginal defensins in pregnant women. Am. J. Obstet. Gynecol. 2013; 208(2): 132. e1-7.

6. Rittenschober-Böhm J., Waldhoer T., Schulz S.M., Stihsen B., Pimpel B., Goeral K. et al. First trimester vaginal ureaplasma biovar colonization and preterm birth: results of a prospective multicenter study. Neonatology. 2018; 113(1): 1-6.

7. Hoffman M.K., Bellad M.B., Charantimath U.S., Kavi A., Nagmoti J.M., Nagmoti M.B. et al. A comparison of colorimetric assessment of vaginal pH with nugent score for the detection of bacterial vaginosis. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2017; 2017: 1040984.

8. Nwankwo T.O., Aniebue U.U., Umeh U.A. Syndromic diagnosis in evaluation of women with symptoms of vaginitis. Curr. Infect. Dis. Rep. 2017; 19(1): 3.

9. Redelinghuys M.J., Ehlers M.M., Bezuidenhoudt J.E., Becker P.J., Kock M.M. Assessment of Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis concentrations in a cohort of pregnant South African women. Sex. Transm. Infect. 2017; 93(6): 410-5.

10. Haahr T., Ersbøll A.S., Karlsen M.A., Svare J., Sneider K., Hee L. et al. Appreciable uncertainty regarding benefits and risks in the treatment of bacterial vaginosis to prevent preterm birth. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2017; 96(2): 251-2.

11. Lamont R.F., Keelan J.A., Larsson P.G., Jørgensen J.S. The treatment of bacterial vaginosis in pregnancy with clindamycin to reduce the risk of infection-related preterm birth: a response to the Danish Society of Obstetrics and Gynecology guideline group’s clinical recommendations. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2017; 96(2): 139-43.

12. Catallozzi M., Fraiz L.D., Hargreaves K.M., Zimet G.D., Stanberry L.R., Ratner A.J. et al. Pregnant women’s attitudes about topical microbicides for the prevention and treatment of bacterial vaginosis during pregnancy. Int. J. STD AIDS. 2017; 28(9): 881-6.

13. Хрянин А.А., Решетников О.В. Бактериальный вагиноз. Новая парадигма. Акушерство и гинекология. 2016; 4: 133-9.

Поступила 13.12.2017

Принята в печать 22.12.2017

Об авторах / Для корреспонденции

Карапетян Тамара Эдуардовна, д.м.н., старший научный сотрудник акушерского отделения ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (985) 140-06-18. E-mail: t_karapetyan@oparina4.ru
Арзуманян Вера Георгиевна, д.б.н., профессор ФГБНУ НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова РАМН.
Адрес: 105064, Россия, Москва, Малый Казенный пер., д. 5А. Телефон: 8 (495) 917-49-00. E-mail: mech.inst@mail.ru
Тютюнник Виктор Леонидович, д.м.н., зав. 1-м акушерским физиологическим отделением ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (903) 969-50-41. E-mail: tioutiounnik@mail.ru.
Researcher ID B-2364-2015. ORCID ID 0000-0002-5830-5099
Кан Наталья Енкыновна, д.м.н., зав. акушерским отделением ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (926) 220-86-55. E-mail: kan-med@mail.ru.
Researcher ID B-2370-2015. ORCID ID 0000-0001-5087-5946
Ломова Наталья Анатольевна, к.м.н., научный сотрудник акушерского отделения ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 144-21-62. E-mail: n_lomova@oparina4.ru
Канюкина Анна Анатольевна, студент МГМСУ им. А.И. Евдокимова.
Адрес: 127473, Россия, Москва, Делегатская ул., 20/1. Телефон: 8 (905) 731-28-94. E-mail: ya.friend@yandex.ru

Для цитирования: Карапетян Т.Э., Арзуманян В.Г., Тютюнник В.Л., Кан Н.Е., Ломова Н.А., Канюкина А.А. Бактериальный вагиноз и антимикробная активность во время беременности. Акушерство и гинекология. 2018; 8: 85-90.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.8.85-90

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.