ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Оценка гуморального ответа на вакцинацию Гам-Ковид-Вак (Sputnik V) против COVID-19 у пациентов на амбулаторном гемодиализе и перитонеальном диализе

Шутов Е.В., Большаков С.А., Котлярова Г.В., Емельянова Э.Б., Сороколетов С.М., Долидзе Д.Д.

1) ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва, Россия; 2) Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования, Москва, Россия
Введение. Новая коронавирусная инфекция (COVID-19) является высококонтагиозной инфекционной болезнью, обусловливающей от 20 до 30% летального исхода пациентов с терминальной хронической болезнью почек, получавших гемодиализ (ГД) или перитонеальный диализ (ПД). Главное место в профилактике заболевания отведено вакцинации как одному из наиболее эффективных методов снижения смертности. Цель исследования: оценка уровня гуморального ответа на вакцинацию Гам-Ковид-Вак (Спутник V) против COVID-19 от пациентов, получающих амбулаторный гемодиализ и перитонеальный диализ, по сравнению со здоровыми лицами. Материал и методы. В исследование вошли 103 пациента на диализе, из них 48 не были инфицированы до проведения стандартной вакцинации и 55 ппосле перенесенной новой коронавирусной инфекции; контролем служили 25 и 30 здоровых добровольцев соответственно. Оценивался гуморальный ответ всех исследуемых на вакцинацию по общему уровню SARS-CoV-2 IgG и уровню IgG антител к рецептор-связывающему домену субъединицы S1 белка SARS-CoV-2. Сравнение уровня сероконверсии проводилось во всех группах (у больных на ГД, ПД и в контроле). Результаты. Уровень SARS-CoV-2 IgG в группе исследуемых, не болевших COVID-19, составил у больных на ГД 10,2±2,2, на ПД – 9,3±2,9 ЕД/мл, и они статистически достоверно не различались. В группе контроля он оказался достоверно выше – 17,37±5,5 ЕД/мл (р<0,05). Уровень IgG антител к спайковому (S) белку коронавируса составил у больных на ГД 79,9±12,7 BAU/мл, на ПД – 80,7±17,5. В группе контроля он оказался достоверно выше – 272,5±17,6 BAU/мл (р<0,05). Исследование уровней антител к вирусу SARS-CoV-2 в группах испытуемых, перенесших COVID-19, показало отсутствие достоверных различий между группами. Выводы. У больных, ранее не болевших COVID-19 и получавших ПД и ГД, наблюдается сниженный гуморальный ответ на вакцинацию Гам-Ковид-Вак (Спутник V) по сравнению с контрольной группой. Это обусловливает необходимость динамического контроля уровня антител и более раннего введения бустерной дозы вакцины. У больных на диализе и в контрольной группе, перенесших COVID-19, образуется сравнимый уровень сероконверсии.

Ключевые слова

COVID-19
ХБП
вакцина
гемодиализ
перитонеальный диализ
иммунитет

Введение

Новая коронавирусная инфекция (COVID-19) является высококонтагиозной инфекционной болезнью, вызываемой новым вирусом тяжелого острого респираторного синдром SARS-CoV-2. Официально первые задокументированные случаи заболевания, связанные с COVID-19, были выявлены в Ухани, провинции Хубей в Китае, в декабре 2019 г. С тех пор инфекция распространилась на более чем 216 государств и территорий. По заявлению ВОЗ, новая коронавирусная инфекция достигла статуса эпидемии 30 января 2020 г., пандемии – в марте 2020 г. [1, 2]. По данным университета Джона Хопкинса и статистики ВОЗ, к маю 2022 г в мире было зафиксировано более полумиллиарда подтвержденных случаев COVID-19, более 6 млн летальных исходов. Летальность инфицированных больных колеблется в разных странах от 0 до 20 процентов, в России – 2,06% на апрель 2022 г. [3, 4].

Проведено множество исследований о влиянии различных факторов на смертность от COVID-19. Получены убедительные данные о связи летальности с коморбидностью, осложненным течением, курением, ожирением, возрастом, уровнем Д-димера, полом пациента и др. [5–10]. Особенно высокий риск инфицирования и неблагоприятного исхода наблюдается у больных с хронической почечной недостаточностью (ХПН) терминальной стадии, находящихся на гемодиализе (ГД) или перитонеальном диализе (ПД). По данным мировой литературы, исходя из результатов проведенных ретроспективных исследований, у больных ХПН риск госпитализации превышает общепопуляционный в 1,6–2,5 раза, необходимость в интенсивной терапии – в 1,5–1,8, неблагоприятных исходов – в 2,5–5,0 раз [7, 11–17]. К тому же доказано, что SARS-CoV-2 тропен к клеткам эпителия почечных канальцев, что проявляется наличием у госпитализированных пациентов мочевого синдрома (протеинурии, гематурии) и может приводить к развитию острого почечного повреждения или прогрессированию уже имеющейся почечной недостаточности [18–20]. Повреждение почек развивается в результате как прямого воздействия вируса в связи с высокой плотностью экспрессии ангиотензинпревращающего фермента 2 в щеточной кайме клеток проксимальных канальцев и незначительной в подоцитах, так и непрямого вследствие иммунных реакций, нарушений микроциркуляции, гипоксии [21]. У умерших больных, получавших заместительную почечную терапию, время между появлением первых симптомов инфекции и неблагоприятным исходом резко сокращалось, что свидетельствует об отсутствии адекватного иммунного контроля на ранней стадии заболевания. Среди пациентов на постоянном амбулаторном ГД показатели смертности варьируются от 20 до 30%, по данным разных авторов [22–26]. В ретроспективных исследованиях течения COVID19 от больных на ПД получены схожие данные по клинической картине и прогнозу [27–29]. Как предполагается, к причинам, обусловливающим высокую частоту инфицирования, тяжесть течения и неблагоприятный исход пациентов с терминальной хронической болезнью почек (ХБП) относят невозможность соблюдения режима самоизоляции в связи с необходимостью посещения диализного центра (через день), отсроченный клиренс вируса после разрешения инфекции, прием рядом пациентов иммуносупрессивной терапии, подавление как врожденного, так и приобретенного иммунитета на фоне уремии в сочетании со слабовыраженной активацией провоспалительных реакций, сопровождающих уремию [30–38]. Более двух третей пациентов с ХБП-5Д продолжали получать положительные результаты полимеразной цепной реакции (ПЦР) SARS-CoV-2 через 20 дней после госпитализации, менее трети – до 40 дней и более, что оказывало значимое негативное влияние на рабочий процесс диализного центра, делало затруднительным соблюдение ряда противоэпидемических мер [39, 40]. Участие перитонеальной жидкости в процессе передачи вируса пациентам на ПД остается спорным [41, 42].

Бессимптомные формы инфекции составляют от 10 до 50% случаев среди больных, получающих как амбулаторный ГД, так и ПД [43, 44]. Обращает на себя внимание и тот факт, что фоновые показатели и факторы, распространенные среди пациентов данной категории (коморбидность, включая артериальную гипертензию, диабет, ожирение, пожилой возраст, сердечнососудистые заболевания, плохое социально-экономическое положение), у больных с бессимптомным течением инфекции и с клиническими проявлениями не различались. Факторы, определяющие тяжесть течения заболевания, остаются до конца неизвестными.

Большое внимание в рамках профилактики отведено вакцинации как одному из наиболее эффективных методов снижения смертности в популяции. На сегодняшний день в мире разработано и используется множество вакцин различных производителей с процентом сероконверсии, приближающимся и у многих превосходящим 90%. Среди прошедших успеш-ные клинические испытания – вакцины на основе мРНК (BNT162b2, mRNA-1273, CVnCOV), векторные на основе рекомбинантного аденовируса (Гам-Ковид-Вак, AZD1222, Ad26.COV2.S и др.), пептидные (ЭпиВакКорона, NVX-CoV2373, ZF2001 и др.) и вакцины на основе инактивированного вируса (КовиВак, CoronaVac, BBIBPCOrV и др.) [45].

Гуморальный иммунный ответ на SARS-CoV-2 опосредуется специфическими антителами к белкам вируса, в основном к нуклеокапсидному и белку S. Антинуклеокапсидные антитела можно использовать в диагностике прорывных и перенесенных инфекций, т.к. они обладают специфичностью к вирусу и не индуцируются вакцинацией. Гуморальный ответ на вакцинацию оценивается путем измерения антител к S-белку. В связи с наличием в продаже массы тестов, каждый из которых имеет свое пороговое положительное значение и референсный диапазон, затрудняющие сравнение результатов, ВОЗ провела стандартизацию в виде математического соотношения результатов ЕД/мл с единицей ВОЗ (единица связывания антител на мл – BAU/ мл) для различных серологических тестов на SARS-CoV-2, что обеспечило лучшую гармонизацию данных между лабораториями [46]. Длительное время оставался открытым вопрос: может ли уровень антител сыворотки являться достоверным суррогатным маркером защиты от последующего инфицирования? По результатам нескольких крупных исследований вакцинированных людей и реконвалесцентов выявлен эффективный нейтрализующий уровень антител против симптоматической инфекции альфа-вариантом вируса SARS-CoV-2, который варьируется от 264 до 590 BAU/мл. В целом исследователи сходятся в том, что не существует единого порогового значения титра антител для защиты от инфекции с учетом мутации вируса и появления все новых штаммов, и приходят к выводу: чем выше титр, тем ниже риски повторного инфицирования и симптоматической инфекции [47–49].

Вероятно, важным компонентом защиты в рамках адаптивного иммунитета к COVID-19 является клеточный иммунный ответ. У вакцинированных больных нефрологического профиля клеточно-опосредованные реакции демонстрируют сниженные уровни. В особенности это касается пациентов на ГД, получающих моноклональные антитела к CD20 и другим В-клеточным мембранным молекулам, пациентов с трансплан-тированной почкой, находящихся на иммуносупрессивной терапии [50, 51]. Количественная оценка специфического клеточного иммунитета против SARS-CoV-2 превосходит возможности обычной клинической лаборатории и является очень трудоемким методом, требует стимуляции цельной крови наборами пептидов вируса с последующим измерением пролиферации специфических субпопуляций лимфоцитов, активации определенных сигнальных путей с выделением цитокинов. Пороговые значения, которые бы коррелировали с достоверной защитой от инфекции для данных тестов, остаются неизвестными.

Как было показано во многих исследованиях, у пациентов с трансплантированной почкой, с ХБП 4–5-й ст и особенно на ГД и ПД, наблюдается недостаточная эффективность стандартных схем вакцинации вследствие увеличения времени, необходимого для сероконверсии, более низкого титра специфических антител и их ускоренной элиминации. В нескольких исследованиях показаны преимущества в эффективности определенных типов вакцин, с наибольшей – у мРНК-содержащих, в группе пациентов на диализе. К неблагоприятным факторам, снижающим эффективность вакцинации, относят стаж диализа, низкий уровень сывороточного альбумина, лимфопению, прием иммуносупрессивной терапии, парентеральных препаратов железа в высокой дозе и отсутствие адекватной сероконверсии на вакцину против гепатита В в анамнезе [52]. В числе предложений по увеличению эффективности: сокращение времени между введениями компонентов вакцины, частый непрерывный мониторинг антительного ответа с оперативным реагированием в виде введения бустерной дозы вакцины в более ранние по сравнению с общей популяцией сроки, применение препаратов доконтактной профилактики на основе моноклональных антител против антигенов вируса SARS-CoV-2 [53–68].

Целью нашей работы была оценка уровня гуморального ответа на вакцинацию Гам-Ковид-Вак (Спутник V) против COVID-19 у пациентов, получающих амбулаторный ГД и ПД, по сравнению со здоровыми лицами. Исследование проводилось на базе межокружного нефрологического центра ГКБ им. С.П. Боткина ДЗМ в период с апреля по ноябрь 2021 г.

Материал и методы

В наше одноцентровое (Межокружной нефрологический центр ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина) когортное проспективное открытое исследование по изучению гуморального ответа на полную вакцинацию Гам-Ковид-Вак (Sputnik V) против COVID-19 были включены 158 человек.

Для изучения выделено две группы: первая группа – 48 пациентов на заместительной почечной терапии (ЗПТ), ранее не имевших положительного результата ПЦР SARS-CoV-2, диагностического титра антител (IgG≥10 Ед/мл) за время диспансерного наблюдения до вакцинации, не испытывавших симптомов ОРВИ (выраженная слабость, лихорадка, потеря обоняния, кашель, одышка и боль в грудной клетке не ассоциированные с прочими причинами). Группой контроля были 25 здоровых добровольцев, медицинских работников, также соответствовавших вышеуказанным критериям включения. вторая группа – 55 пациентов, получавших ЗПТ, перенесших COVID-19-инфекцию в среднетяжелой и тяжелой формах, потребовавших стационарного лечения либо интенсивного амбулаторного мониторинга. Группой контроля были здоровые медицинские работники, перенесшие новую коронавирусную инфекцию с подтвержденным ПЦР SARS-CoV-2 в легкой/ среднетяжелой формах, в количестве 30 человек. Характеристика участников исследования представлена в табл. 1.

11-1.jpg (110 KB)

Анализы крови испытуемых выполнялись через 3,0±1,4 месяца после полной вакцинации как больным на диализе, так и в группе контроля. Критерии исключения: прием любой иммуносупрессивной терапии, возраст моложе 18 и старше 80 лет, недоступность результатов серологического и ПЦР-исследований за интересующий период наблюдения, указание пациентом на наличие вышеуказанной симптоматики, диагностически положительные титры антител за период диспансерного наблюдения (IgG≥10 ЕД в первой группе).

Вакцина, используемая в исследовании, разработана ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава РФ и зарегистрирована 11 августа 2020 г. Вакцина состоит из двух компонентов на основе аденовирусного вектора. В состав первого компонента входит рекомбинантный аденовирусный вектор на основе аденовируса человека 26-го серотипа (Ad26), несущий ген S белка SARS-CoV-2. Второй компонент состоит из рекомбинантного аденовирусного вектора на основе аденовируса человека 5-го серотипа (Ad5), также несущего ген S белка SARS-CoV-2.

Препарат успешно прошел клинические испытания и доказал свою эффективность в России и за рубежом [69–72]. Каждый из участников прошел полную вакцинацию Гам-Ковид-Вак, Sputnik V (два компонента).

Для определения специфических антител мы использовали два международных сертифицированных ВОЗ метода [73, 74]. Первым методом оценивался общий уровень SARS-CoV-2 IgG в сыворотке крови, который определялся на аппарате Mindray CL-2000i (Shenzhen Mindray Bio-medical Electronics Co. Ltd) при помощи хемилюминесценции в два этапа с помощью коммерческого набора производителя Mindray SARS-CoV-2 IgG CLIA. Парамагнитные частицы этого набора покрыты нуклеопротеином (N-белок) и рецептор-связывающим доменом спайкового белка (S-белок) в MES-буфере с консервантами. В целом исследование состоит из двух этапов. На первом после добавления сыворотки исследуемого парамагнитные частицы, покрытые антигеном, связываются со специфичными антителами к антигенам в образце и захватываются магнитом. После первого этапа промывки для удаления не связанных веществ в реакционную ячейку добавляются моноклональные мышиные античеловеческие IgG-антитела, конъюгирован-ные со щелочной фосфатазой, для связывания с антителами, захваченными парамагнитными частицами. После второго этапа промывки добавляли 3-(2'-спироадамантил)-4-ме-токси-4-(3'фосфорилокси)фенил-1,2-диоксетан, который катализировался щелочной фосфатазой с испусканием света длиной волны 540 нм. Полученная реакция измерялась фотоумножителем в относительных световых единицах (ОСЕ) в хемилюминесцентном анализаторе. Антитела IgG рассчитывались в ЕД/мл, пороговое значение было принято 10 ЕД/мл [75]. Вторым методом проводилось количественное определение IgG антител к рецептор-связывающему домену субъединицы S1 белка SARS-CoV-2. Хемилюминесцентный иммуноанализ на микрочастицах проводился с помощью тест-системы Abbott Architect i1000SR system набора SARS-CoV-2 IgG II Quant Reagent Kit (Abbott Architect i1000SR system, Abbott Laboratories, Sligo, Ireland) [76]. Пороговым значением было принято 50,0 BAU/ мл. При подсчете результатов использовалась программа SPSS-18 с расчетом непараметрического U-критерия Манна–Уитни, со степенью достоверности критерия р<0,05 (95%).

Результаты

Результаты исследования гуморального иммунитета после полной вакцинации в 1-й группе исследуемых, никогда ранее не имевших положительного результата ПЦР SARS-CoV-2, диагностического титра антител (IgG≥10 Ед/мл) за время диспансерного наблюдения до вакцинации, не испытывавших симптомов ОРВИ (выраженная слабость, лихорадка, потеря обоняния, кашель, одышка и боль в грудной клетке не ассоциированные с прочими причинами), приведены в табл. 2.

Результаты исследования гуморального иммунитета после полной вакцинации больных, перенесших COVID-19-инфекцию в среднетяжелой и тяжелой формах, потребовавших стационарного лечения либо интенсивного амбулаторного мониторинга, по сравнению с группой контроля, приведены в табл. 3.

Результаты проведенного нами исследования степени выраженности сероконверсии у пациентов с ХБП показали, что в 1-й группе исследуемых, ранее не имевших свидетельств перенесенной COVID-19 инфекции и прошедших полную вакцинацию векторной вакциной Гам-Ковид-Вак, наблюдался сниженный гуморальный ответ от больных, получающих ЗПТ, по сравнению со здоровыми добровольцами.

Во второй группе мы наблюдали приблизительно одинаковый гуморальный ответ на вакцинацию пациентов с ХБП-5Д, перенесших COVID-19-инфекцию в среднетяжелой и тяжелой формах, потребовавшую госпитализации либо интенсивного амбулаторного наблюдения, по сравнению с контрольной группой.

Обсуждение

Инфекции являются одной из основных причин заболеваемости и смертности среди больных ХБП 4–5-й ст., занимая второе место после сердечно-сосудистых осложнений. В связи со сниженным иммунным статусом, высоким уровнем инфицирования вакцинация остается наиважнейшим компонентом профилактики неблагоприятного исхода для пациентов с ХБП. Такие больные имеют менее устойчивый и сниженный уровень сероконверсии после вакцинации, более низкий титр специфических антител. Более того, показано, что ответ на вакцинацию снижается по мере прогрессирования болезни почек, времени лечения на ПД или на ГД [77–80]. ХБП в целом относится к иммуноскомпрометированным состояниям в связи со сниженными функциями Ти В-клеток, моноцитов, макрофагов. При уремической интоксикации подавляются Т-клеточная активация и пролиферация, выработка цитокинов, повышается активность супрессорных клеток. Наблюдается снижение выработки специфических IgG, что наиболее вероятно связано с нарушением синтеза антиген-специфических Т-хелперов, являющихся необходимым звеном для соответствующего синтеза антител В-клетками в ответ на вакцинацию. [81, 82]. Данные различных источников показывают, что при вакцинации против гриппа, гепатита В, пневмококка достигается сероконверсия большинством больных ХБП, однако в ряде случаев требовалась расширенная схема вакцинации, увеличилось время до сероконверсии, титр антител оставался сниженным по сравнению с общей популяцией, а также наблюдалась ускоренная их элиминация [83–85].

В нашем исследовании получены убедительные данные по поводу сниженного гуморального ответа на вакцинацию пациентов с ХБП-5Д, ранее не болевших COVID-19, по сравнению с контрольной группой. Титры выработанных антител не достигли защитных уровней. Полученные результаты свидетельствуют о необходимости изменения практики вакцинации больных ХБП по сравнению с общей популяцией. Очевидно, что для достижения адекватного гуморального ответа нужно использовать бустерные дозы вакцины. Похожие данные были получены и при использовании других вакцин у больных данной категории [76–78].

От больных, переболевших COVID-19, после вакцинации Гам-Ковид-Вак (Sputnik V) получены сравнимые результаты в выработке антител с контрольной группой. Это можно объяснить тем фактом, что после естественного заражения у подавляющего большинства пациентов на ГД и ПД развивается продолжительный и выраженный гуморальный ответ [86–89]. У выживших и выздоровевших пациентов с ХБП-5Д более тяжелое течение заболевания в совокупности с фактом длительного персистирования вируса в организме приводит к выраженной стимуляции иммунной системы и выработке высокого титра антител [90]. На наш взгляд, вакцинация, проведенная в стандартные сроки после болезни, вызывает адекватную сероконверсию у больных ХБП-5Д за счет суммирования с предшествовавшей активностью иммунитета.

Таким образом становится актуальным вопрос о персо-нализированном подходе к вопросам иммунизации когорты больных с ХБП, в особенности пациентов, получающих ЗПТ.

Выводы

Полученные нами данные демонстрируют снижение гуморального ответа на вакцинацию против COVID-19 от пациентов на амбулаторном ГД и ПД по сравнению со здоровой популяцией и позволяют предположить необходимость в динамическом контроле антительного ответа, а также и более раннего введения бустерной дозы вакцины больным этой категории.

Список литературы

1. Rahman S., Montero M., Rowe K., et al. Epidemiology, pathogenesis, clinical presentations, diagnosis and treatment of COVID-19: a review of current evidence. Expert. Rev. Clin. Pharmacol. Taylor and Francis Ltd., 2021;14(5):601–21.

2. Chams N., Chams S., Badran R., et al. COVID-19: A Multidisciplinary Review. Front. Public Heal. Front. Media S.A., 2020;8:383.

3. COVID-19 Map – Johns Hopkins Coronavirus Resource Center

4. Coronavirus Disease (COVID-19) Situation Reports

5. Dessie Z.G., Zewotir T. Mortality-related risk factors of COVID-19: a systematic review and meta-analysis of 42 studies and 423,117 patients. BMC. Infect. Dis. 2021;21:1.

6. Arentz M., Yim E., Klaff L., et al. Characteristics and Outcomes of 21 Critically Ill Patients With COVID-19 in Washington State. JAMA. Am. Med. Associat. 2020;323(16):1612.

7. Malik P., Patel U., Mehta D., et al. Biomarkers and outcomes of COVID-19 hospitalisations: systematic review and meta-analysis. BMJ. Evid. Based Med. 2021;26(3):107–8.

8. Kim L., Garg S., O'Halloran A., et al. Risk Factors for Intensive Care Unit Admission and In-hospital Mortality Among Hospitalized Adults Identified through the US Coronavirus Disease 2019 (COVID-19)-Associated Hospitalization Surveillance Network (COVID-NET). Clin. Infect. Dis. Oxford Academic, 2021;72(9):e206–14.

9. Hergens M.P., Bell M., Haglund P., et al. Risk factors for COVID-19-related death, hospitalization and intensive care: a population-wide study of all inhabitants in Stockholm. Eur. J. Epidemiol. 2022;37(2):157–65.

10. Vardavas C.I., Nikitara K. COVID-19 and smoking: A systematic review of the evidence. Tob. Induc. Dis. International Society for the Prevention of Tobacco Induced Diseases. 2020;18(March).

11. Jdiaa S.S., Masour R., El Alayli A., et al. COVID-19 and chronic kidneydisease: an updated overview of reviews. J. Nephrol. Nature Publishing Group. 2022;35(1):69.

12. Hsu C.M., Weiner D., Aweh G., et al. COVID-19 Among US Dialysis Patients: Risk Factors and Outcomes From a National Dialysis Provider. Am. J. Kidney Dis. Elsevier. 2021;77(5):748.

13. Ziemba R., Campbell K., Yang T., et al. Excess Death Estimates in Patients with End-Stage Renal Disease – United States, February–August 2020. Morb. Mortal. Wkly. Rep. Centers for Disease Control and Prevention. 2021;70(22):825.

14. Zubkin M.L., Shilo V., Novikova L., et al. Frequency of SARS-CoV-2 infection in hemodialysis patients. Infect. Dis. News, Opin. Train. Geotar Media Publishing Group. 2021;10(3):23–32.

15. Bowe B., Xie Y., Xu E., et al. Kidney Outcomes in Long COVID. J. Am. Soc. Nephrol. 2021;32(11):2851–62.

16. Chung E.Y.M., Palmer S., Natale P., et al. Incidence and Outcomes of COVID-19 in People With CKD: A Systematic Review and Meta-analysis. Am. J. Kidney Dis. 2021;78(6):804–15.

17. Henry B.M., Lippi G. Chronic kidney disease is associated with severe coronavirus disease 2019 (COVID-19) infection. Int. Urol. Nephrol. Springer. 2020;52(6):1193–94.

18. 18.Diao B., Wang C., Wang R., et al. Human kidney is a target for novel severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 infection. Nat. Commun. 2021. 121. Nature Publishing Group. 2021;12(1):1–9.

19. Cheng Y., Luo R., Wang K., et al. Kidney disease is associated with in-hospital death of patients with COVID-19. Kidney Int. Elsevier. 2020;97(5):829–838.

20. Sun J., Zhu A., Li H., et al. Isolation of infectious SARS-CoV-2 from urine of a COVID-19 patient. Emerg. Microbes Infect. Taylor and Francis Ltd. 2020;9(1):991–93.

21. Lely A.T., Hamming I., van Goor H., et al. Renal ACE2 expression in human kidney disease. J. Pathol. John Wiley & Sons, Ltd. 2004;204(5):587–93.

22. Hilbrands L.B., Duivenvoorden R., Vart P., et al. COVID-19-related mortality in kidney transplant and dialysispatients: results of the ERACODA collaboration.Nephrol. Dial. Transplant. Oxford University Press. 2020;35(11):1973.

23. Jager K.J., Kramer A., Chesnaye N., et al. Results from the ERA-EDTA Registry indicate a high mortality due to COVID-19 in dialysis patients and kidney transplant recipients across Europe. Kidney Int. Elsevier. 2020;98(6):1540.

24. Kang S.H., Kim S., Kim A., et al. Association between Chronic Kidney Disease or Acute Kidney Injury and Clinical Outcomes in COVID-19 Patients. J. Korean Med. Sci. Korean Acad. Med. Sci. 2020;35(50).

25. Goh B.L., Shanmuganathan M., Peariasamy K., et al. COVID-19 death and kidney disease in a multiracial Asian country. Nephrol. (Carlton). 2022.

26. de Sandes-Freitas T.V., de Andrade L., Moura L., et al. Comparison of 30-day case-fatality rate between dialysis and transplant Covid-19 patients: a propensity score matched cohort study. J. Nephrol. 2022;35(1):131–41.

27. Sachdeva M., Uppal N., Hirsch J., et al. COVID-19 in Hospitalized Patients on Chronic Peritoneal Dialysis: A Case Series. Am. J. Nephrol. Karger Publish. 2020;51(8):669–74.

28. Jiang H.J., Tang H., Xiong F., et al. COVID-19 in Peritoneal Dialysis Patients. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. Am. Soc. Nephrol. 2021;16(1):121–23.

29. Salomão Gorayeb-Polacchini F., Cristina Caldas H., Abbud-Filho M., et al. Clinical outcomes of COVID-19 in patients undergoing chronic hemodialysis and peritoneal dialysis. Brazilian J. Nephrol. Soc. Brasil. Nefrol. 2022.

30. Eleftheriadis T., Antoniadi G., Liakopoulos V., et al. Disturbances of acquired immunity in hemodialysis patients. Semin. Dial. Semin Dial. 2007;20(5):440–51.

31. Descamps-Latscha B. The immune system in end-stage renal disease. Curr. Opin Nephrol. Hypertens. 1993;2(6):883–91.

32. Nitta K., Akiba T., Kawashima A., et al. Characterization of TH1/TH2 profile in uremic patients. Nephron. 2002;91(3):492–95.

33. Kim H.W., Woo Y., Yang H., et al. Primed monocytes: putative culprits of chronic low-grade inflammation and impaired innate immune responses in patients on hemodialysis. Clin. Exp. Nephrol. 2011;15(2):258–263.

34. Ando M., Shibuya A., Tsuchiya K., et al. Reduced capacity of mononuclear cells to synthesize cytokines against an inflammatory stimulus in uremic patients. Nephron. Clin. Pract. Nephron Clin. Pract. 2006;104(3).

35. Ando M., Shibuya A., Yasuda M., et al. Impairment of innate cellular response to in vitro stimuli in patients on continuous ambulatory peritoneal dialysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2005;20(11):2497–503.

36. Krueger K.M., Ison M.G., Ghossein C. Practical Guide to Vaccination in All Stages of CKD, Including Patients Treated by Dialysis or Kidney Transplantation. Am. J. Kidney Dis. 2020;75(3):417–25.

37. Kato S., Chmielewski M., Honda H., et al. Aspects of Immune Dysfunction in End-stage Renal Disease. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. Am. Soc. Nephrol. 2008;3(5):1526.

38. Anft M., Blazquez-Navarro A., Paniskaki K., et al. SARS-CoV-2–reactive cellular and humoral immunity in hemodialysis population. Kidney Int. Elsevier. 2021;99(6):1489.

39. Shaikh A., Zeldis E., Campbell K., et al. Prolonged SARS-CoV-2 Viral RNA Shedding and IgG Antibody Response to SARS-CoV-2 in Patients on Hemodialysis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. Am. Soc. Nephrol. 2021;16(2):290.

40. O’Sullivan E.D., Lees J., Howie K., et al. Prolonged SARS-CoV-2 viral shedding in patients with chronic kidney disease. Nephrology. John Wiley & Sons, Ltd. 2021;26(4):328–32.

41. El Shamy O., Vassalotti J., Sharma S., et al. Coronavirus disease 2019 (COVID-19) hospitalized patients with acute kidney injury treated with acute peritoneal dialysis do not have infectious peritoneal dialysis effluent. Kidney Int. Elsevier. 2020;98(3):782.

42. Vischini G., D'Alonzo S., Grandaliano G., et al. SARS-CoV-2 in the peritoneal waste in a patient treated with peritoneal dialysis. Kidney Int. Elsevier. 2020;98(1):237–38.

43. Rincon A., Moreso F., Herradon A., et al. The keys to control a COVID-19 outbreak in a haemodialysis unit. Clin. Kidney J. Oxford Acad.2020;13(4):542–549.

44. Tang H., Tian J., Dong J., et al. Serologic Detection of SARS-CoV-2 Infections in Hemodialysis Centers: A Multicenter Retrospective Study in Wuhan, China. Am. J. Kidney Dis. W.B. Saunders. 2020;76(4):490–9.e1.

45. Fiolet T., Kherabi Y., MacDonald C., et al. Comparing COVID-19 vaccines for their characteristics, efficacy and effectiveness against SARS-CoV-2 and variants of concern: a narrative review. Clin. Microbiol. Infect. 2022;28(2):202–21.

46. WHO/BS.2020.2403 Establishment of the WHO International Standard and Reference Panel for anti-SARS-CoV-2 antibody

47. Khoury D.S., Cromer D., Reynaldi A., et al. Neutralizing antibody levels are highly predictive of immune protection from symptomatic SARS-CoV-2 infection. Nature Publishing Group. 2021;27(7):1205–11.

48. Bergwerk M., Gonen T., Lustig Y., et al. Covid-19 Breakthrough Infections in Vaccinated Health Care Workers. N. Engl. J. Med. Massachusetts Med. Soc. 2021;385(16):1474–84.

49. Feng S., Phillips D., White T., et al. Correlates of protection against symptomatic and asymptomatic SARS-CoV-2 infection. Nat. Med., Nature Publishing Group. 2021;27(11):2032–40.

50. Swai J., Gui M., Long M., et al. Humoral and cellular immune response to severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 vaccination in haemodialysis and kidney transplant patients. Nephrology. John Wiley & Sons, Ltd. 2022;27(1):7–24.

51. Schietzel S., Anderegg M., Limacher A., et al. Humoral and cellular immune responses on SARS-CoV-2 vaccines in patients with anti-CD20 therapies: a systematic review and meta-analysis of 1342 patients. RMD Open. 2022;8(1).

52. Van Praet J., Reynders M., De Bacquer D., et al. Predictors and Dynamics of the Humoral and Cellular Immune Response to SARS-CoV-2 mRNA Vaccines in Hemodialysis Patients: A Multicenter Observational Study. J. Am. Soc. Nephrol. 2021;32(12):3208–20.

53. Ma B.M., Tam A., Chan K., et al. Immunogenicity and Safety of COVID-19 Vaccines in Patients Receiving Renal Replacement Therapy: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front. Med. (Lausanne). 2022;9.

54. Kolb T., Fischer S., Muller L., et al. Impaired Immune Response to SARS- CoV-2 Vaccination in Dialysis Patients and in Kidney Transplant Recipients. Kidney360. 2021;2(9):1491–98.

55. Hsu C.M., Weiner D., Manley H., et al. Seroresponse to SARS-CoV-2 Vaccines among Maintenance Dialysis Patients over 6 Months. CJASN. 2022;17:403–13.

56. Hsu C.M., Lacson E., Manley H., et al. Journal Pre-proof Seroresponse to Third Doses of SARS-CoV-2 Vaccine Among Patients Receiving Maintenance Dialysis. Am. J. Kidney Dis. 2022.

57. Tung K., Peng Y., Hsu S., et al. Humoral antibody response to the first dose of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine in Asian patients undergoing hemodialysis. Hemodial. Int. 2022.

58. Patyna S., Eckes T., Koch B., et al. Impact of Moderna mRNA-1273 Booster Vaccine on Fully Vaccinated High-Risk Chronic Dialysis Patients after Loss of Humoral Response. Vaccines (Basel). 2022;10(4):585.

59. Simon B., Rubey H., Treipl A., et al. Haemodialysis patients show a highly diminished antibody response after COVID-19 mRNA vaccination compared with healthy controls. Nephrol. Dial. Transplant. 2021;36(9):1709–16.

60. Carr E.J., Wu M., Harvey R., et al. Neutralising antibodies after COVID-19 vaccination in UK haemodialysis patients. Lancet. Elsevier B.V. 2021;398(10305):1038–41.

61. Yen J.S., Wang I.K., Yen T.H. COVID-19 vaccination and dialysis patients: why the variable response. QJM. 2021;114(7):440–44.

62. Windpessl M., Bruchfeld A., Anders H., et al. COVID-19 vaccines and kidney disease. Nat. Rev. Nephrol., Nature Publishing Group. 2021;17(5):291–93.

63. Rincon-Arevalo H., Choi M., Stefanski A., et al. Impaired antigen-specific memory B cell and plasma cell responses including lack of specific IgG upon SARS-CoV-2 BNT162b2 vaccination among Kidney Transplant and Dialysis patients. medRxiv. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 2021. P. 2021.04.15.21255550.

64. Yanay N.B., Freiman S., Shapira M., et al. Experience with SARS-CoV-2 BNT162b2 mRNA vaccine in dialysis patients. Kidney Int. Elsevier. 2021;99(6):1496.

65. Grupper A., Sharon N., Finn T., et al. Humoral Response to the Pfizer BNT162b2 Vaccine in Patients Undergoing Maintenance Hemodialysis. CJASN. 2021;16:1037–42.

66. Carr E.J., Kronbichler A., Graham-Brown M., et al. Review of Early Immune Response to SARS-CoV-2 Vaccination Among Patients With CKD. Kidney Int. Reports. Elsevier. 2021;6(9):2292.

67. Tada T., Zhou H., Dcosta B., et al. Increased resistance of SARS-CoV-2 Omicron variant to neutralization by vaccine-elicited and therapeutic antibodies. EBioMedicine. 2022;78.

68. Benotmane I., Velay A., Vargas G., et al. Pre-exposure prophylaxis with 300 mg Evusheld elicits limited neutralizing activity against the Omicron variant. Kidney Int., 2022.

69. Byazrova M.G., Kulemin S., Astakhova E., et al. Memory B Cells Induced by Sputnik V Vaccination Produce SARS-CoV-2 Neutralizing Antibodies Upon Ex Vivo Restimulation. Front. Immunol. 2022;13.

70. Logunov D.Y., Dolzhikova I., Shcheblyakov D., et al. Safety and efficacy of an rAd26 and rAd5 vector-based heterologous prime-boost COVID-19 vaccine: an interim analysis of a randomised controlled phase 3 trial in Russia. Lancet (London, England). 2021;397(10275):671–81.

71. Cazzola M., Rogliani P., Mazzeo F., et al. Controversy surrounding the Sputnik V vaccine. Respir. Med. Elsevier. 2021;187:106569.

72. Babamahmoodi F., Saeedi M., Alizadeh-Navaei R., et al. Side effects and Immunogenicity following administration of the Sputnik V COVID-19 vaccine in health care workers in Iran. Sci. Rep. Nat. Publish. Group. 2021;11(1).

73. Infantino M., Pieri M., Nuccetelli M., et al. The WHO International Standard for COVID-19 serological tests: towards harmonization of anti-spike assays. Int. Immunopharmacol. Elsevier. 2021;100::108095.

74. Sui Z., Dai X., Lu Q., et al. Viral dynamics and antibody responses in people with asymptomatic SARS-CoV-2 infection. Signal Transduct. Target. Ther. Nat. Publish. Group. 2021;6(1).

75. Chemiluminescence Immunoassay System – CL-6000i – Mindray Global

76. Anand S., Montez-Rath M., Han J., et al. SARS-CoV-2 Vaccine AntibodyResponse and Breakthrough Infection in Patients Receiving Dialysis. https://doi.org/10.7326/M21-4176. Am. Coll. Physic. 2021;175(3):371–378.

77. Kausz A.T., Gilbertson D.T. Overview of Vaccination in Chronic Kidney Disease. Adv. Chronic Kidney Dis. Elsevier. 2006;13(3):209–14.

78. Mathew R., Mason D., Kennedy J.S. Vaccination issues in patients with chronic kidney disease. Expert. Rev. Vaccines. 2014;13(2):285–298.

79. Ghadiani M.H., Besharati S., Mousavinasab N., et al. Response rates to HB vaccine in CKD stages 3-4 and hemodialysis patients. J. Res. Med. Sci. Wolters Kluwer – Medknow Publications. 2012;17(6):527.

80. Kausz A., Pahari D. The Value of Vaccination in Chronic Kidney Disease. Semin. Dial. John Wiley & Sons. Ltd. 2004;17(1):9–11.

81. Johnson D.W., Fleming S.J. The use of vaccines in renal failure. Clin. Pharmacokinet. 1992;22(6):434–46.

82. Beaman M., Michael J., Maclennan I., et al. T-cell-independent and T-cell- dependent antibody responses in patients with chronic renal failure. Nephrol. Dial. Transplant. 1989;4(3):216–21.

83. Vlassopoulos D. Recombinant hepatitis B vaccination in renal failure patients. Curr. Pharm. Biotechnol. Curr. Pharm. Biotechnol. 2003;4(2):141–151.

84. Pneumococcal vaccine in children and young adults with chronic renal disease - PubMed

85. Antonen J.A., Hannula P., Pyhala R., et al. Adequate seroresponse to influenza vaccination in dialysis patients. Nephron. 2000;86(1):56–61.

86. De Vriese A.S., Reynders M. IgG Antibody Response to SARS-CoV-2 Infection and Viral RNA Persistence in Patients on Maintenance Hemodialysis. Am. J. Kidney Dis. Elsevier. 2020;76(3):440–41.

87. Sakhi H., Dahmane D., Attias P., et al. Kinetics of Anti–SARS-CoV-2 IgG Antibodies in Hemodialysis Patients Six Months after Infection. J. Am. Soc. Nephrol. 2021;32(5):1033–36.

88. Forbes S., Davari M., Gnanasampanthan S., et al. Persistence of antibody response to SARS-CoV-2 in a cohort of haemodialysis patients with COVID-19. Nephrol. Dial. Transplant. Oxford Acad. 2021;36(7):1292–97.

89. Clarke C.L., Prendecki M., Dhutia A., et al. Longevity of SARS-CoV-2 immune responses in hemodialysis patients and protection against reinfection. Kidney Int. Elsevier. 2021;99(6):1470–77.

90. De Vriese A.S., Van Praet J., Reynders M., et al. Longevity and correlation with disease severity of the humoral and cellular response to SARS-CoV-2 infection in haemodialysis patients. Clin. Kidney J. Oxford Acad. 2021;14(11):2446–48.

Об авторах / Для корреспонденции

Шутов Евгений Викторович – д.м.н., профессор, руководитель Межокружного нефрологического центра ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, заведующий кафедрой нефрологии и диализа РМАНПО, Москва; e-mail: shutov_e_v@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-1047-0378
Большаков Степан Алексеевич – врач-терапевт, младший научный сотрудник отдела наука ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва; e-mail: bolshakoff123@yandex.ru ORCID: https://orcid.org/0000-0002-4556-6740
Котлярова Галина Владимировна – заведующая отделением амбулаторного гемодиализа межокружного нефрологического центра ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва; e-mail: galopa@yandex.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9970-4486
Емельянова Эльвира Борисовна – к.м.н., заведующая клинико-диагностической лабораторией ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва, Россия. e-mail: e.allvira@gmail.com Сороколетов Сергей Михайлович – д.м.н., заместитель главного врача по терапевтической помощи ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва; e-mail: sorokoletov-sm@mail.ru Долидзе Давид Джонович – д.м.н., профессор, заведующий научно-клиническим отделом ГБУЗ ГКБ им. С.П. Боткина, Москва; e-mail: ddolidzed@mail.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-0517-8540

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.