ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Роль дефицита магния в патогенезе недифференцированной дисплазии соединительной ткани

Н.В. Изможерова, М.А. Шамбатов, В.М. Бахтин, А.А. Попов

Уральский государственный медицинский университет, кафедра фармакологии и клинической фармакологии, Екатеринбург, Россия
Магний является вторым по распространенности внутриклеточным катионом и играет важнейшую роль в реализации клеточных функций. Все большее значение придается влиянию дефицита магния на строение и механический гомеостаз соединительной ткани (СТ). Недостаточность магния обусловливает развитие ряда состояний, одно из наиболее распространенных – недифференцированная дисплазия СТ. В настоящем обзоре освещены современные подходы к оценке взаимосвязи дефицита магния и развития патологии СТ. Ионы Mg2+ участвуют в стабилизации вторичной и третичной структур нуклеиновых кислот, образуя катионные «мостики» между отрицательно заряженными фосфатными группами. Магний участвует в регуляции баланса образования, деградации фибриллярных и нефибриллярных компонентов межклеточного матрикса путем снижения экспрессии генов матриксных металлопротеиназ и стимуляции синтеза коллагена и аггрекана. Магний усиливает митотическую активность клеток СТ путем повышения процессов синтеза белков и запуска сигнальных путей, связанных с мишенью рапамицина млекопитающих. Ионы Mg2+ способствуют переводу интегринов фибробластов в высокоаффинную форму, позволяя им связываться с коллагеном, тем самым повышая стабильность и целостность ткани. Дефицит магния ассоциирован с повышением активности матриксных металлопротеиназ, являющейся ключевым фактором деградации СТ. Недостаток магния приводит к накоплению дефектного коллагена, снижению синтеза структурных и сигнальных белков, нуклеиновых кислот, подавлению митотической активности клеток. Возникающее в условиях дефицита магния снижение аффинности интегринов фибробластов к коллагену приводит к дезорганизации ткани. Таким образом, дефицит магния ассоциируется с нарушением функционирования клеток и целостности внеклеточного матрикса СТ.

Ключевые слова

недифференцированная дисплазия соединительной ткани
магний
дефицит магния
металлопротеиназы
соединительная ткань
интегрины

Введение

Наследственные нарушения соединительной ткани (ННСТ) – спектр состояний, обусловленных генетически детерминированными аномалиями коллагена, фибриллина и других матриксных белков [1]. Клиническая картина обсуждаемых состояний неоднородна и значительно варьируется от минимальных особенностей развития опорно-двигательного аппарата, кожных, глазных или висцеральных проявлений до угрожающих жизни сердечно-сосудистых событий [2].

Особенностью недифференцированной дисплазии СТ (НДСТ) является отсутствие явного генетического дефекта с определенным типом наследования и, видимо, несколько меньшая степень риска сосудистых катастроф [3]. В действующих федеральных клинических рекомендациях по лечению пациентов с дисплазиями СТ среди медикаментозных средств ключевое место занимают препараты магния [4].

Магний – четвертый по содержанию в организме и второй по внутриклеточной концентрации катионом [3–5]. Ионы Mg2+ играют важнейшую роль в реализации таких клеточных функций, как интегрин-ассоциированная адгезия клеток на различных макромолекулярных субстратах, миграция клеток, транскрипция ДНК, синтез белка, обеспечивающих механический гомеостаз соединительной ткани [6]. Более глубокое понимание роли магния в патогенезе НДСТ и профилактике ее осложнений позволит персонифицировать походы к ведению лиц с обсуждаемой патологией.

Цель исследования: охарактеризовать современное понимание роли дефицита магния в патогенезе НДСТ.

Физиологическая роль магния в СТ

Магний участвует в поддержании нормального метаболизма и механического гомеостаза СТ.

Ионы Mg2+ стабилизируют вторичную и третичную структуры дезоксирибонуклеиновой и рибонуклеиновой кислот (ДНК и РНК), формируя катионные «мостики» между отрицательно заряженными фосфатными группами (рис. 1) [7]. Катион Mg2+ имеет решающее значение в поддержании конформации транспортной РНК, псевдоузлов РНК, элементов третичной структуры рибосомальной РНК, РНК-трансфер-мессенджера и каталитической самосплайсирующейся РНК (рис. 1) [7].

64-1.jpg (124 KB)

Магний оказывает влияние на фибриллярные компоненты (коллагеновые и эластические волокна) и нефибриллярные структурные элементы внеклеточного матрикса. Баланс между синтезом и деградацией этих структурных компонентов клетки определяет состояние цитоскелета клетки и его целостность.

Ремоделирование, деградация и протеолиз коллагеновых волокон внеклеточного матрикса обеспечиваются активностью матриксных металлопротеиназ (MMP) [8]. Эта группа металлоферментов имеет цинк-связывающий домен и включает коллагеназы-1, -2 и -3 (классифицируемые соответственно как ММР-1, -8, -13), расщепляющие фибриллярный коллаген типов I, II и III; желатиназы (ММР-2 и -9), разрушающие как коллаген-базальные мембраны, так и фибронектин; стромелизины (ММР-3, -10 и -11), действующие на различные компоненты внеклеточного матрикса, в т.ч. протеогликаны, ламинин, фибронектин и аморфные коллагены; а также семейство мембраносвязанных ММР ADAM (a disintegrin and metalloprotease), иначе именуемые адамазинами [9].

ММР продуцируются фиброблас-тами, макрофагами, нейтрофилами, синовиальными и некоторыми эпителиальными клетками. Секреция ММР индуцируется факторами роста (тромбоцитарный фактор роста [Platelet-derived growth factor – PDGF], факторы роста фибробластов [Fibroblast growth factor – FGF]), цитокинами (интерлейкин-1 (IL-1), фактором некроза опухоли (Tumor necrosis factor – TNF-α), фагоцитозом в макрофагах, а тормозится TGF-β и глюкортикоидами (рис. 2) [10].

65-1.jpg (177 KB)

TNF-α также стимулирует деградацию внеклеточного матрикса, индуцируя экспрессию фибробластами MMP-1 и стромелизина-1 (MMP-3). Кроме того, ФНО-α ингибирует экспрессию гена коллагена I типа фибробластами, угнетает экспрессию генов эластина и декорина на транскрипционном уровне, способен блокировать активацию экспрессии генов коллагена и эластина I типа путем трансформации фактора роста β. Эффекты TNF-α на формирование внеклеточного матрикса частично перекрываются с эффектами интерлейкина-1 (IL-1), который также индуцирует экспрессию MMP-1 и -3 в фибробластах. Клеточные эффекты TNF-α опосредуются двумя различными рецепторами клеточной поверхности: TNF-RI (TNF-R55) и TNF-RII (TNF-R75), оба из которых экспрессируются фибробластами (рис. 2) [11].

Например, влияние TNF-α на экспрессию MMP-1, -3 и коллагена I типа в дермальных фибробластах в первую очередь опосредуется TNF-R55. Было показано, что связывание TNF-α с TNF-R55 активирует нейтральную сфингомиелиназу, ассоциированную с клеточной мембраной фосфолипазы, которая гидролизует структурный фосфолипид сфингомиелин клеточной мембраны до фосфохолина и церамида, липидного вторичного мессенджера [11]. Церамид стимулирует экспрессию генов MMP-1 и -3 посредством активации сигнальных путей, которые в конечном счете приводят к индукции AP-1 (activating protein-1)-зависимой транскрипции генов MMP (рис. 2). Кроме того, запуск церамидного пути в кератиноцитах человека приводит к сверхэкспрессии ММП-9 [9].

Эффект активации MMP зависит от наличия функционального AP-1-элемента в промоторной области гена MMP-1, а также от активности киназы, регулируемой внеклеточными сигналами 1/2 (ERK1/2), стресс-активируемой протеинкиназы/Jun N-концевой киназы (SAPK/JNK) и митоген-активируемой протеинкиназы р38 (MAPKs) [11].

Ингибирование матриксных металлопротеиназ происходит в основном за счет трансформирующего фактора роста β (TGF-β). TGF-β является важным фиброгенным стимулом, продуцируется большинством клеток грануляционной ткани, обусловливает миграцию и пролиферацию фибробластов, увеличение синтеза коллагена и фибронектина и снижение деградации внеклеточного матрикса путем ингибирования MMP [12].

Ионы Mg2+ необходимы для стабилизации некодирующих РНК.

В частности, ионы Mg2+ стабилизируют структуру транспортной РНК (тРНК) и дефицит магния приведет к увеличению числа дисфункциональных молекул тРНК, к снижению общей скорости белкового синтеза, хотя ионы Mg2+ непосредственно не взаимодействуют ни с молекулами коллагена, ни с TIMP [8].

Внутрисуставное введение сульфата магния кроликам в модели посттравматического остеоартрита снижало экспрессию информационной РНК (иРНК) интерлейкина-1β (IL-1β), TNF-α, MMP-3 в синовиальной оболочке [13]. Вместе с тем сульфат магния повышал продукцию мРНК основных компонентов внеклеточного матрикса: коллагена II типа и аггрекана – основного протеогликана, обеспечивающего гибкость, упругость и сжимаемость ткани [14]. Схожие результаты были получены при внутрисуставном введении хлорида магния, снижая экспрессию MMP-13 и интерлейкина-6 (IL-6) в синовиальной оболочке [15].

Использование препаратов магния в лечении пациентов с острым инфарктом миокарда тормозит повреждение миокарда. Концентрация IL-6 и ММП-1 в крови значительно возра-стает при остром инфаркте миокарда, но остается на сравнительно низком уровне у пациентов после терапии препаратами магния. Увеличение концентрации Mg2+ в сыворотке крови уменьшает уровень IL-6 и ММП-1 [16]. Насыщение диеты фолиевой кислотой и солями магния снижает секрецию ММП-2 и оказывает положительное влияние на течение ишемической болезни сердца [17].

Добавление магния уменьшало общую активность ММП-2 в клетках гладкой мускулатуры сосудов у крыс прямо пропорционально введенной дозе [18].

Патогенетическая роль дефицита магния в патологии СТ

Дефицит магния в ряде исследований отмечен как фактор риска развития сердечно-сосудистой патологии, что опосредованно как непрямым влиянием на липидный профиль, так и прямым повреждающим действием на сердечно-сосудистую систему [19]. Пролапс митрального клапана рассматривается как распространенное проявление дефицита магния [8, 20], а также синдрома Марфана – одного из вариантов ННСТ [21]. Дефицит магния ассоциирован с патологией митрального клапана [22].

Некоторые заболевания костной ткани, например остеопения или остеопороз, также могут быть ассоциированы с дефицитом магния [22, 23]. Тяжелый дефицит магния у матери может приводить к нарушению формирования костной ткани плода, что проявляется в виде несовершенного остеогенеза [24].

Дефицит магния также может приводить к гиперминерализации кости или аномального матрикса, в некоторых случаях с избыточным образованием остеоида [9, 10, 25–27], в результате могут развиваться т.н. мраморные, или меловые, хрупкие кости [24].

Дефицит магния в СТ приведет к замедлению синтеза всех структурных молекул и далее процессов восстановления, приводящих к ухудшению механических характеристик ткани [28].

Магний является важным фактором контроля пролиферации клеток за счет существенного влияния на синтез РНК, ДНК и белка. Митоз в значительной степени больше зависит от синтеза белка, чем от синтеза ДНК или РНК [7].

Исследования, идентифицирующие молекулярные медиаторы пролиферации Mg2+-зависимых клеток, привели к созданию модели мембранного магниевого митоза (МММ, рис. 3). Ключевым ее компонентом является белковый комплекс мишени рапамицина млекопитающих (mammalian target of rapamycin – mTOR), играющий главную роль в регуляции клеточного цикла. Согласно этой модели, факторы роста связываются с рецепторами сигнальных комплексов TORC1 и TORC2 (target of rapamycin complex 1 and 2) и вызывают фосфорилирование фосфоинозитид-3-киназы (PI3K), которая стимулирует комплекс mTOR. Активация mTOR зависит от внутриклеточного содержания комплекса MgАТФ, и АТФ был предложен в качестве основного регулятора активности mTOR. Однако при стимуляции клеток FGF изменяется концентрация не АТФ, а ионов Mg2+. Поэтому модель MMM предлагает Mg2+ в качестве основного регулятора динамики mTOR и пролиферации клеток [7]. Кроме того, повышенные уровни цитозольного Mg2+ способствуют рибосомной активности и синтезу белка, что в конечном итоге приводит к репликации ДНК и митозу [7].

66-1.jpg (115 KB)

Катион магния, связанный с эластическими волокнами, играет защитную роль в поддержании растяжимости элас-тина. С другой стороны, сообщалось, что магний увеличивает ферментативный гидролиз аортального эластина [28].

Устойчивый дефицит ионов магния приводит к синтезу неполноценного коллагена фибробластами. В частности, дефицит магния снижает активность Mg2+-зависимой аденилатциклазы, удаляющей дефектный коллаген. Это обуславливает беспорядочное расположение волокон коллагена и ведет к нарушению формирования СТ [29].

Отмечены структурные изменения коллагеновых и эластических волокон в стенке аорты у подопытных животных с дефицитом магния, связанные с экспрессией MMP-2 и -9 [30]. Сообщалось также о специфической локализации интегринов, функционирующих как трансмембранные рецепторы, и ММР, в связи с чем можно сделать предположение об их взаимосвязи и влиянии на функциональную активность ММР двувалентных катионозависимых конформационных изменений интегринов [31].

Также адгезия кератиноцитов и фибробластов к коллагену I типа и к гликопротеинам-ламининам базальной мембраны усиливалась магнием и снижалась катионами кальция [32]. Ионы Mg2+ участвуют в стабилизации структуры клеточных интегринов и в обеспечении их связывания с лигандами межклеточного матрикса (рис. 2) [33, 34]. При участии магния происходит перестройка низкоаффинной конформации интегрина α1β1 в высокоаффинную [34], повышая сродство последнего к коллагену и обеспечивая взаимодействие клетки с матриксом, крайне важное для пролиферации, дифференцировки и роста клеток [35]. Кроме того, взаимодействие Mg2+ с интегрином α2β1 играет важную роль в усилении пролиферации стромальных клеток посредством активации интегрин-сопряженной киназы фокальной адгезии (focal adhesion kinase, FAK) и связанных с ней сигнальных путей ERK (MAPK) и PI3K/Akt [36] (рис. 3).

Таким образом, магний принимает участие в реализации фундаментальных клеточных функций, таких как адгезия, миграция, синтез белка и пролиферация [34].

Антиоксидантная и антифибротическая активность литоспермата магния в терапии цирроза печени, индуцированного введением тиоацетамида, отмечена у крыс. Получено ингибирование фиброгенной активации звездчатых клеток печени [29], снижение уровня экспрессии эндотелием адгезионных молекул (ICAM1, VCAM1), подавление выработки провоспалительных цитокинов (TNF-α), торможение липополисахарид-индуцированной эндотелиальной дисфункции [37], а также повышение уровня оксида азота (NO), сосудистого фактора роста эндотелия (VEGF), эндотелиальной синтазы оксида азота (eNOS) и снижение системного артериального давления у крыс [38].

Метаболические нарушения при синдроме недифференцированной соединительнотканной дисплазии могут реализовываться в т.ч. и в сосудистой стенке, что обусловливает увеличение частоты встречаемости дисфункции эндотелия у лиц с НДСТ. Соединительнотканная дисплазия в данном случае является провоцирующим фактором вследствие повышения проницаемости эндотелия, фиброза сосудистых оболочек и прогрессирования структурной патологии артерий различного калибра [30]. Путем создания провоспалительной и протромботической среды в экспериментальных моделях установлено прямое влияние низкого содержания магния в организме на возникновение и прогрессирование эндотелиальной дисфункции. Установлено, что низкие концентрации магния обратимо ингибируют пролиферацию эндотелия и ингибирование пролиферации эндотелия осуществляется регуляцией синтеза интерлейкина-1 [22, 39].

Заключение

Магний выполняет разнообразные функции в СТ. Ионы Mg2+ стабилизируют нуклеиновые кислоты, участвуют в процессах синтеза белка и регуляции митотической активности фибробластов. Посредством различных механизмов магний подавляет избыточную активность матриксных ММР, препятствуя патологической деградации коллагеновых и эластических волокон. Кроме того, ионы Mg2+ регулируют конформацию клеточных интегринов, способствуя их адгезии на волокнах внеклеточного матрикса, обеспечивая структурную целостность СТ. Таким образом, магний играет ключевую роль в формировании и поддержании нормальной структуры СТ. Дефицит этого макроэлемента ассоциируется с нарушением функционирования фибробластов, дезорганизацией внеклеточного матрикса и развитием соединительнотканной дисплазии.

Вклад авторов. Изможерова Н.В., Шамбатов М.А., Попов А.А. – поиск источников литературы, обсуждение результатов, написание статьи. Бахтин В.М. – поиск источников литературы, обсуждение результатов, работа с иллюстрациями.

Список литературы

1. Малев, Э.Г., Березовская, Г.А., Парфенова, Н.Н. и др. Наследственные нарушения соединительной ткани в кардиологии. Диагностика и лечение. Российские рекомендации (I пересмотр). Российский кардиологический журнал. 2013;1(99):1–32.

2. Hakim A.J., Sahota A. Joint hypermobility and skin elasticity: the hereditary disorders of connective tissue. Clin Dermatol. 2006;24(6):521–33. Doi: 10.1016/j.clindermatol.2006.07.013.

3. Бен Салха М., Репина Н.Б. Клиническая диагностика недифференцированной дисплазии соединительной ткани. Российский медико-биологический вестник им. академика И.П. Павлова. 2016;24(4):164–72.

4. Клинические рекомендации российского научного медицинского общества терапевтов по диагностике, лечению и реабилитации пациентов с дисплазиями соединительной ткани (первый пересмотр). Медицинский вестник Северного Кавказа. 2018;1,2(13):137–210.

5. Кытько О.В., Дыдыкина И.С., Санькова М.В. и др. Патогенетические аспекты недостаточности магния при синдроме дисплазии соединительной ткани. Вопросы питания. 2020;89(5):35-43.

6. Senni K., Foucault Bertaud A., Godeau G. Magnesium and connective tissue. Magnes Res. 2003;16(1):70–4.

7. Вe Baaij J.H., Hoenderop J.G., Bindels R.J. Magnesium in man: implications for health and disease. Physiol Rev. 2015;95(1):1–46. Doi: 10.1152/physrev.00012.2014.

8. Bobkowski W., Nowak A., Durlach J. The importance of magnesium status in the pathophysiology of mitral valve prolapse. Magnes Res. 2005;18(1):35–52.

9. Belluci M.M., de Molon R.S., Rossa C.Jr, et al. Severe magnesium deficiency compromises systemic bone mineral density and aggravates inflammatory bone resorption. J Nutr Biochem. 2020;77:108301. Doi: 10.1016/j.jnutbio.2019.108301.

10. Li Q., Larusso J., Grand-Pierre A.E., Uitto J. Magnesium carbonate-containing phosphate binder prevents connective tissue mineralization in Abcc6(-/-) mice-potential for treatment of pseudoxanthoma elasticum. Clin Transl Sci. 2009;2(6):398–404. Doi: 10.1111/j.1752-8062.2009.00161.x

11. Kumar V., Abbas A., Fausto N., Aster J. Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease. Philadelphia, PA: Saunders/Elsevier Inc., 8th ed., 2009. 1456 p.

12. Gilbert S.J., Duance V.C., Mason D.J. Does protein kinase R mediate TNF-alpha- and ceramide-induced increases in expression and activation of matrix metalloproteinases in articular cartilage by a novel mechanism? Arthritis Res Ther. 2004;6(1):R46–R55. Doi: 10.1186/ar1024.

13. Chen R., Zhou X., Yin S., et al.

14. Santamaria S. ADAMTS-5: A difficult teenager turning 20. Int J Exp Pathol. 2020;101(1–2):4–20. Doi:10.1111/iep.12344.

15. Yao H., Xu J.K., Zheng N.Y., et al. Intra-articular injection of magnesium chloride attenuates osteoarthritis progression in rats. Osteoarthritis Cartilage. 2019;27(12):1811–21. Doi: 10.1016/j.joca.2019.08.007.

16. Shibata M., Ueshima K., Harada M., et al. Effect of Magnesium Sulfate Pretreatment and Significance of Matrix Metalloproteinase-1 and Interleukin-6 Levels in Coronary Reperfusion Therapy for Patients with Acute Myocardial Infarction. Angiology. 1999;50(7):573–82. Doi: 10.1177/000331979905000707.

17. Guo H., Lee J.D., Uzui H., et al. Effects of folic acid and magnesium on the production of homocysteine-induced extracellular matrix metalloproteinase-2 in cultured rat vascular smooth muscle cells. Circ J. 2006;70(1):141–46. Doi: 10.1253/circj.70.141.

18. Yue H., Lee J.D., Shimizu H., et al. Effects of magnesium on the production of extracellular matrix metalloproteinases in cultured rat vascular smooth muscle cells. Atherosclerosis. 2003;166(2):271–77. Doi: 10.1016/s0021-9150(02)00390-8.

19. Igondjo Tchen S., Pagès N., Bac P., et al. Marfan syndrome, magnesium status and medical prevention of cardiovascular complications by hemodynamic treatments and antisense gene therapy. Magnes Res. 2003;16(1):59–64.

20. Durlach J. Primary mitral valve prolapse: a clinical form of primary magnesium deficit. Magnes Res. 1994;7(3–4):339–40.

21. Tsipouras P., Devereux R.B. Marfan syndrome: genetic basis and clinical manifestations. Semin Dermatol. 1993;12(3):219–28.

22. Мартынов А.И., Гудилин В.А., Дрокина О.В. и др. Дисфункция эндотелия у пациентов с дисплазиями соединительной ткани. Лечащий врач. 2015;15(2):18–21.

23. Chang J., Yu D., Ji J., et al. The Association Between the Concentration of Serum Magnesium and Postmenopausal Osteoporosis. Front Med (Lausanne). 2020;7:381. Doi:10.3389/fmed.2020.00381.

24. Seelig M.S. Magnesium Deficiency in the Pathogenesis of Disease: Early Roots of Cardiovascular, Skeletal and Renal Abnormalities. New York, USA: Springer-Verlag, 1980. 488 p. Doi: 10.1007/978-1-4684-9108-1.

25. Jiang Q., Uitto J. Restricting dietary magnesium accelerates ectopic connective tissue mineralization in a mouse model of pseudoxanthoma elasticum (Abcc6(-/-) ). Exp Dermatol. 2012;21(9):694–99. Doi: 10.1111/j.1600-0625.2012.01553.x.

26. LaRusso J., Jiang Q., Li Q., Uitto J. Ectopic mineralization of connective tissue in Abcc6-/- mice: effects of dietary modifications and a phosphate binder--a preliminary study. Exp Dermatol. 2008;17(3):203–7. Doi: 10.1111/j.1600-0625.2007.00645.x.

27. LaRusso J., Li Q., Jiang Q., Uitto J. Elevated dietary magnesium prevents connective tissue mineralization in a mouse model of pseudoxanthoma elasticum (Abcc6(-/-)). J Invest Dermatol. 2009;129(6):1388–94. Doi: 10.1038/jid.2008.391.

28. Торшин И.Ю., Громова О.А. Дисплазия соединительной ткани, клеточная биология и молекулярные механизмы воздействия магния. Русский медицинский журнал. 2008;16(4):230–38.

29. Quan W., Yin Y., Xi M., et al. Antioxidant properties of magnesium lithospermate B contribute to the cardioprotection against myocardial ischemia/reperfusion injury in vivo and in vitro. J Tradit Chin Med. 2013;33(1):85–91. Doi: 10.1016/s0254-6272(13)60106-5.

30. Pagès N., Gogly B., Godeau G., et al. Structural alterations of the vascular wall in magnesium-deficient mice. A possible role of gelatinases A (MMP-2) and B (MMP-9). Magnes Res. 2003;16(1):43–8.

31. Yue J., Zhang K., Chen J. Role of integrins in regulating proteases to mediate extracellular matrix remodeling. Cancer Microenviron. 2012;5(3):275–83. Doi: 10.1007/s12307-012-0101-3.

32. Gao F., Li J.M., Xi C., et al. Magnesium lithospermate B protects the endothelium from inflammation-induced dysfunction through activation of Nrf2 pathway. Acta Pharmacol Sin. 2019;40(7):867–78. Doi: 10.1038/s41401-018-0189-1.

33. Xu K., Zang X., Peng M., et al. Magnesium Lithospermate B Downregulates the Levels of Blood Pressure, Inflammation, and Oxidative Stress in Pregnant Rats with Hypertension. Int J Hypertens. 2020;2020:6250425. Doi: 10.1155/2020/6250425.

34. Nunes A.M., Minetti C.A.S.A., Remeta D.P., Baum J. Magnesium Activates Microsecond Dynamics to Regulate Integrin-Collagen Recognition. Structure. 2018;26(8):1080–90.e5. Doi: 10.1016/j.str.2018.05.010.

35. Zhang K., Chen J. The regulation of integrin function by divalent cations. Cell Adh Migr. 2012;6(1):20–9. Doi: 10.4161/cam.18702.

36. Nie X., Sun X., Wang C., Yang J. Effect of magnesium ions/Type I collagen promote the biological behavior of osteoblasts and its mechanism. Regen Biomater. 2020;7(1):53–61. Doi: 10.1093/rb/rbz033.

37. Тихонова О.В., Дрокина О.В., Моисеева Н.Е. и др. Оценка информативности методов определения содержания магния в организме на примере пациентов с признаками дисплазии соединительной ткани. Архивъ внутренней медицины. 2014;1(15):19–24.

38. Paik Y.H., Yoon Y.J., Lee H.C., et al. Antifibrotic effects of magnesium lithospermate B on hepatic stellate cells and thioacetamide-induced cirrhotic rats. Exp Mol Med. 2011;43(6):341–49. Doi: 10.3858/emm.2011.43.6.037.

39. Maier J.A., Malpuech-Brugere C., Zimowska W., et al. Low magnesium promotes endothelial cell dysfunction: implication for atherosclerosis, inflammation and thrombosis. Biochim Biophys Acta. 2004;1689(1):13–21. Doi: 10.1016/j.bbadis.2004.01.002.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Надежда Владимировна Изможерова, д.м.н., доцент, зав. кафедрой фармакологии и клинической фармакологии, Уральский государственный медицинский университет, Екатеринбург, Россия; nadezhda_izm@mail.ru">href="mailto:nadezhda_izm@mail.ru">nadezhda_izm@mail.ru

ORCID:
Изможерова Н.В., https://orcid.org/0000-0001-78269657
Бахтин В.М., https://orcid.org/0000-0001-7907-2629
Шамбатов М.А., https://orcid.org/0000-0001-7312-415X
Попов А.А., https://orcid.org/0000-0001-6216-2468

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.