ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Фармакогенетические подходы к оптимизации режимов микронутриентной поддержки в период прегравидарной подготовки

Ших Е.В., Путинцева А.В.

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский университет), Москва, Россия
Актуальность. Поддержка репродуктивного здоровья женщин является одним из важнейших направлений развития здравоохранения в России, поскольку именно от здоровья будущих матерей зависит здоровье молодого поколения.
Цель исследования: оптимизация прегравидарной подготовки путем применения различных режимов микронутриентной поддержки с учетом фармакогенетических особенностей пациенток.
Методы. Наблюдательное исследование проведено в условиях амбулаторно-поликлинической практики. Участвовали 194 женщины в возрасте от 20 до 38 лет, обратившиеся с целью прегравидарной подготовки. В зависимости от корректирующей микронутриентной поддержки выделено 2 группы: 1-я группа принимала 451 мкг Метафолина с 2,6 мкг цианокобаламина; 2-я – 400 мкгфолиевой кислоты. Генотипирование полиморфных локусов MTHFR-677C>T, MTHFR-1298A>C, MTR-2756A>G, MTRR-66A>G проведено методом полимеразной цепной реакции. Количественный анализ уровня фолатов выполнен хемилюминисцентным иммунным методом. На фоне микронутриентной поддержки продолжительностью 3 месяца проводилась оценка динамики уровня фолатов в плазме крови. Основным инструментом анализа были описательная статистика и аналитические методы. Описательная статистика непрерывных количественных данных представлена в виде среднего значения (M) и ошибки средней арифметической (±m). Статистическая достоверность различий оценивалась с использованием параметрического критерия Стьюдента. Для оценки соответствия распределений генотипов и для сравнения распределений частот генотипов в выборках использовали критерий χ2 Пирсона. При распределении данных, отличных от нормальных, групповой анализ проводился с использованием непараметрического критерия Вилкоксона и критерия Манна–Уитни. Значения считали статистически значимыми при р≤0,05. Статистическая обработка данных проводилась с использованием пакета IBM SPSS Statistics 23.0. Для расчета χ2 Пирсона использована среда разработки Rstudio версии 1.0.143 для языка программирования R.
Результаты. Установлено, что оба режима эффективны для женщин с нормальными генотипами: MTHFR-677CС, MTHFR-1298AА, MTR-2756AА, MTRR-66AА, при которых отсутствует носительство редкой аллели, и для женщин с гетерозиготным вариантом носительства редкой аллели с генотипами MTHFR-677СT, MTHFR-1298АC, MTR-2756АG, MTRR-66АG. Женщинам с гомозиготным вариантом носительства редкой аллели с генотипами MTHFR-677ТT, MTHFR-1298СC, MTR-2756GG, MTRR-66GG только применение 451 мкг Метафолина с 2,6 мкг цианокобаламина обеспечивает эффективную микронутриентную поддержку. Заключение. На этапе прегравидарной подготовки целесообразен генетический скрининг для выявления редких аллелей полиморфизмов генов основных ферментов фолатного цикла. Это позволит персонализированно подойти к режиму микронутриентной поддержки и обеспечит оптимальную коррекцию с целью эффективной профилактики врожденных пороков развития и других осложнений беременности.

Ключевые слова

генетический полиморфизм
фолаты
прегравидарная подготовка
метафолин
фолиевая кислота

Введение

Поддержка репродуктивного здоровья женщин является одним из важнейших направлений развития здравоохранения в России, поскольку именно от здоровья будущих матерей зависит здоровье молодого поколения. По данным Росстата за 2020 г., в России около 31% новорожденных родились с различной патологией, частота врожденных аномалий развития продолжает оставаться высокой – 9,1% [1]. В качестве причин рассматриваются неблагоприятные экологические и социальные факторы, наличие отягощенного акушерско-гинекологического анамнеза и экстрагенитальной патологии, недостаточная обеспеченность макрои микронутриентами, в т.ч. фолатами – ключевым компонентом профилактики врожденных пороков развития [2].

Фолиевая кислота (ФК) и ее соли фолаты представляют собой группу водорастворимых соединений, которые обозначаются как витамин В9. Применение ФК по 400 мкг в сутки регламентировано рекомендациями ВОЗ для прегравидарной подготовки всем женщинам. Доказано, что уровень фолатов в эритроцитах будущей матери выше 400 нг/мл (906 нмоль/л) соответствует наименьшему риску развития дефектов нервной трубки (ДНТ): частота ДНТ, связанная с этим порогом, составляет 0,8 (95% ДИ: 0,4–1,5) на 1000 рождений [3]. Однако этот вид исследования финансово затратен, технически сложно выполним и сопряжен с большой вероятностью ошибок в условиях не научноисследовательских лабораторий [4], поэтому в рутинной клинической практике чаще оценивают уровень фолатов плазмы крови. Согласно данным ВОЗ, уровень фолатов в эритроцитах 906 нмоль/л соответствует их уровню 7 нг/мл плазмы крови [3]. Фолатные коферменты участвуют как доноры или акцепторы одноуглеродной группы, необходимой для метилирования и репарации ДНК, синтеза нуклеотидных оснований, белков, фосфолипидов, нейротрансмиттеров [5, 6]. Человек не способен синтезировать фолаты и получает их преимущественно с питанием или путем саплиментации. Метаболически активным соединением, реализующим биологические функции в организме человека, является метилтетрагидрофолат, количество которого зависит от активности фермента метилтетрагидрофолатредуктазы, которая в свою очередь определяется полиморфизмом генов фолатного цикла [4, 5].

В популяции встречаются носители аллельных вариантов генов, кодирующих ферменты с измененной активностью, что приводит к изменению функционирования фолатного цикла. Наиболее изученными в настоящее время являются следующие полиморфизмы:

1. Полиморфизмы гена метилентетрагидрофолатредуктазы (MTHFR677C>T и MTHFR-1298A>C). Установлено, что у пациентов при гетерозиготном носительстве редкого аллеля Т с генотипом MTHFR677CT снижается активность фермента примерно до 35%, у гомозигот MTHFR-677ТT – до 70% [7]. Полиморфизм MTHFR-1298A>C сопровождается снижением активности фермента примерно на 40% при гомозиготном носительстве редкого аллеля С у пациентов с генотипом MTHFR-1298CC [7].

2. Полиморфизмы гена В12-зависимой метионин-синтазы (MTR) и полиморфизмы гена метионин-синтазаредуктазы (MTRR). Нарушения в этой подсистеме приводят к накоплению гомоцистеина – промежуточного продукта обмена метионина в фолатном цикле [7, 8]. Для носителей редких аллелей генов MTR и MTRR происходит более выраженное снижение гомоцистеина в плазме в ответ на высокие дозы фолатов так же, как и при носительстве аллеля 677T гена MTHFR.

Доказано, что носители редких аллелей Т гена метилентетрагидрофолатредуктазы MTHFR-677C>T и С гена метилентетрагидрофолатредуктазы MTHFR-1298A>C для компенсации недостаточной функциональной активности ферментов и преодоления дефицита нуждаются либо в больших количествах ФК, либо в получении сразу уже активной формы ФК – Метафолина [8]. Метафолин® – синтетическое производное, созданное на базе 5-метил-тетрагидрофолата (5-MТГФ). Единственное различие между метафолином и 5-MТГФ — присутствие иона кальция (в организме полностью распадается на ионы кальция и 5-МТГФ). Метафолин® (кальциевая соль L-5метилтетрагидрофолиевой кислоты) — молекула, идентичная фолатам, содержащимся в пищевых продуктах и организме человека. Метафолин обладает более высокой биодоступностью и предпочтителен в случае наличия у пациента гомозиготного и/или гетерозиготного генотипов полиморфизма MTHFR. Еще одно преимущество етафолина заключается в том, что он не маскирует симптомы дефицита витамина В12 [8].

Цианокобаламин (витамин В12) необходим для поддержки функции фолатзависимого фермента метионинсинтазы MTR для синтеза аминокислоты метионина из гомоцистеина. В последующем метионин используется для синтеза S-аденозилметионина – донора метильной группы, необходимого во многих биологических реакциях метилирования, включая таковое ДНК и РНК. Недостаточная функция метионинсинтазы при полиморфизмах гена В12зависимой метионинсинтазы (MTR) может приводить к накоплению гомоцистеина и увеличению риска развития мальформаций эмбриона и осложнений беременности [9].

Можно ли считать рекомендованное ВОЗ применение 400 мкг ФК в сутки «универсальным рецептом» для всех женщин, планирующих беременность? Существует мнение, согласно которому метафолин в комбинации с синергистом цианокобаламином (В12) может быть более предпочтительным в связи с высокой распространенностью полиморфизмов генов ферментов фолатного цикла [10]. В связи с этим целесообразно изучение сравнительной эффективности применения комбинации Метафолина и цианкобаламина в сравнении со стандартным режимом применения 400 мкг монопрепарата ФК женщинами с генотипами MTHFR-677CC, MTHFR-677CT, MTHFR-677TT, MTHFR-1298AA, MTHFR-1298AC, MTHFR-1298CC, MTR-2756AА, MTR-2756AG, MTR2756GG, MTRR-66AА, MTRR-66AG,

MTRR-66GG. Полученные данные позволят на основе фармакогенетического подхода разработать персонализированные рекомендации по проведению прегравидарной подготовки с целью достижения целевого уровня фолатов в эритроцитах для профилактики врожденных пороков развития.

Цель исследования: оптимизация прегравидарной подготовки путем применения различных режимов микронутриентной поддержки с учетом фармакогенетических особенностей пациенток.

Методы

В наблюдательное исследование в условиях амбулаторно-поликлинической практики включены 194 женщины европеоидной расы в возрасте от 20 до 38 лет, обратившиеся к врачу с целью прегравидарной подготовки.

Характеристика пациенток, включенных в исследование Нормальная масса тела зарегистрирована в 48,9% случаев, у остальных женщин индекс массы тела (ИМТ) был повышен; 49,5% пациенток указали на наличие от одной до трех беременностей в анамнезе (закончившихся срочными и/или преждевременными родами, самопроизвольными и/или искусственными абортами). В исследование не включались женщины с персональным анамнезом ДНТ, семейным анамнезом ДНТ (первой степени родства); пациентки, принимавшие лекарственные препараты, влияющие на уровень фолатов в плазме крови (карбамазепин, вальпроевая кислота, фенитоин, фенобарбитал, метформин, метотрексат, сульфасалазин, триметоприм); пациентки, страдавшие воспалительными заболеваниями желудочно-кишечного тракта или имевшие в анамнезе оперативные вмешательства на желудочно-кишечном тракте; пациентки с сахарным диабетом, ожирением, онкологическими заболеваниями, тяжелыми нарушениями со стороны сердечно-сосудистой, мочеполовой или дыхательной систем.

Все пациентки, включенные в исследование, не принимали в течение последних 6 месяцев фолаты и/или витамин В12. Артериальное давление, частота сердечных сокращений находились у них в пределах нормы. Значения лабораторных показателей участниц программы (общий анализ крови: СОЭ, мм/ч; гемоглобин, г/л; эритроциты, 1012/л; тромбоциты, 109/л; лейкоциты, 109/л; нейтрофилы палочкоядерные, сегментноядерные, %; эозинофилы, %; базофилы, %; моноциты, %; лимфоциты, %; общий анализ мочи: pH, относительная плотность; биохимический анализ крови: АЛТ, ЕД/л; АСТ, ЕД/л; щелочная фосфатаза, ЕД/л; креатинин, мкмоль/л; билирубин общий, мкмоль/л; белок общий, г/л; холестерин, ммоль/л; глюкоза, ммоль/л) были в пределах референсных значений. Характеристика участниц исследования представлена в табл. 1.

41-1.jpg (110 KB)

Прием фолатов проводился в течение 3 месяцев по 2 схемам: 1-я схема – 451 мкг Метафолина и 2,6 мкг витамина В12 в составе витаминного комплекса «Элевит планирование и первый триместр», 1 таблетка 1 раз в сутки; 2-я схема – 400 мкг ФК в сутки в виде монопрепарата «9 месяцев Фолиевая кислота». Режимы микронутриентной поддержки добровольно были выбраны участницами до включения в исследование и применялись согласно инструкции/вкладышу используемого препарата или комплекса [11, 12].

В рамках исследования участницы посещали центр для получения стандартной медицинской помощи 3 раза в течение 3 месяцев наблюдения: 1-й визит скрининговый, 2-й – через месяц, 3-й – через 3 месяца после начала микронутриентной поддержки. На 1-м скрининговом визите у пациенток собирали анамнез: предшествововшие и сопутствовавшие экстрагенитальные, гинекологические заболевания, оперативные вмешательства, наличие вредных привычек, лекарственной терапии; выполняли объективное обследование с оценкой антропометрических показателей, АД, ЧСС, ЧДД. На этом визите забирали биологический материал для проведения фармакогенетического исследования полиморфизма генов ферментов фолатного цикла: MTHFR-677C>T, MTHFR-1298A>C, MTR-2756A>G, MTRR-66A>G; образцы крови для клинического и биохимического анализов; определения уровней фолатов, витамина В12, гомоцистеина крови. На 2-м и 3-визитах были собраны жалобы, проведена оценка общего состояния, оценена переносимость применяемых микронутриентов, выполнено объективное обследование с измерением АД, ЧСС, ЧДД. Проведены лабораторные исследования: клинический анализ крови, общий анализ мочи, биохимический анализ крови, анализ уровней фолатов, витамина В12, гомоцистеина плазмы крови.

Методика определения генетического полиморфизма генов фолатного цикла Генотипирование полиморфных локусов MTHFR-677C>T, MTHFR1298A>C, MTR-2756A>G, MTRR-66A>G проведено методом полимеразной цепной реакции с анализом кривых плавления (амплификатор «ДТ-96», ООО «ДНК-Технология», Москва), использованием комплекта реагентов «Генетика метаболизма фолатов» (ООО «ДНК Технология», Москва). Исследуемый материал – цельная кровь с ЭДТА (этилендиаминтетраацетат).

Методика определения уровня фолатов

Хемилюминисцентный иммунный анализ на микрочастицах. Использован иммунохимический анализатор Architect i 2000 с хемилюминисцентной технологией Chemiflex (фирма ABBOTT LABORATORIES S.A., США). Исследуемый материал – сыворотка крови, референсные значения для ФК: 3,0–20,5 нг/мл.

Организация исследования

Проводился сравнительный анализ динамики уровня фолатов в плазме крови пациенток, получавших разные схемы сапплиментации в зависимости от выявленных полиморфизмов генов ферментов фолатного цикла.

1. Полиморфизмы гена метилентетрагидрофолатредуктазы (MTHFR677C>T и MTHFR-1298A>C).

a. Замена в 677-й позиции гена (677 С>T, rs1801133) цитозина (C) на тимин (T), приводит к замене аминокислотного остатка аланина на валин (Ala222Val) и снижает активность фермента MTHFR, изучались генотипы MTHFR677CС, MTHFR-677CT, MTHFR677ТT[13].

b. Замена в 1298-й позиции гена (1298 А>С, rs1801131) аденина (А) на цитозин (С) вызывает замену глутаминовой кислоты на аланин в регуляторном домене фермента Glu429Ala и снижает активность MTHFR [6]. Изучались генотипы MTHFR-1298AА, MTHFR1298AC, MTHFR-1298СC.

2. Полиморфизмы гена В12-зависимой метионинсинтазы (MTR). Замена в 2576-й позиции гена (2756A>G, rs1805087) аденина (А) в позиции на гуанин (G), вызывает замену аспарагиновой кислоты на глицин в домене фермента Asp919Gly и снижает его активность [13]. Изучались генотипы MTR-2756AA, MTR-2756AG, MTR-2756GG.

3. Полиморфизмы гена метионинсинтазыредуктазы (MTRR). Замена в 66-й позиции гена (66 А>G, rs 1801394) аденина (А) на гуанин (G) вызывает замену аминокислоты изолейцина на метионин и снижает активность фермента MTRR [6]. Изучались генотипы MTRR-66AА, MTRR-66AG, MTRR-66GG.

Анализ полученных результатов проведен с использованием статистических и аналитических методов исследований.

Основным инструментом анализа были описательная статистика (параметрическая и непараметрическая) и аналитические методы. Выбор критерия оценки сравниваемых показателей (параметрический или непараметрический) осуществлен после проверки типа распределения данных на соответствие нормальному закону распределения с помощью критерия Шапиро–Уилкса. Описательная статистика непрерывных количественных данных представлена в виде среднего значения (M) и ошибки средней арифметической (±m). Статистическая достоверность различий оценивалась с использованием параметрического критерия Стьюдента. Для оценки соответствия распределений генотипов и для сравнения распределений частот генотипов в выборках использовали критерий χ2 Пирсона. При распределении данных, отличных от нормального, групповой анализ проводился с использованием непараметрического (рангового) критерия Вилкоксона (оценка динамики внутри групп) и критерия Манна–Уитни (межгрупповое сравнение). Значения считали статистически значимыми при р≤0,05. Статистическая обработка данных, полученных в ходе исследования, проводилась с использованием специализированного программного обеспечения – статистического пакета IBM SPSS Statistics 26.0. Для расчета χ2 Пирсона использована среда разработки Rstudio версии 1.0.143 для языка программирования R.

Результаты исследования

Сравнительный анализ динамики уровня фолатов у женщин с генотипами MTHFR-677CC, MTHFR-677CТ, MTHFR-677ТТ:

• В 1-й группе (Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК) у пациенток с генотипом MTHFR-677CC через месяц саплементации (к визиту 2) наблюдалось увеличение уровня фолатов в плазме крови в 1,8 раза по отношению к исходному, которое стало статистически значимым (p<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит уровень фолатов не изменился (р=0,933, визит 3). Аналогичная тенденция выявлена и у женщин с генотипом MTHFR677CТ: уровень фолатов в плазме крови через месяц саплементации (к визиту 2) увеличился статистически значимо в 2,03 раза (р<0,001). За период времени со второго до третьего визита выявлено незначительное статистически незначимое снижение уровня фолатов с 18,1±2,0 до 17,5±1,3 нг/мл. У женщин с генотипом MTHFR-677ТТ статистически значимое увеличение уровня фолатов отмечено в интервале с 1-го по 2-й визит в 2,96 раза (р<0,001). В период со 2-го по 3-й визит также отмечено увеличение содержания уровня фолатов в 1,2 раза, которое оказалось статистически значимым, р=0,018 (см. табл. 2).

43-1.jpg (498 KB)

• Во 2-й группе (монопрепарат ФК) у пациенток с генотипом MTHFR677CC через месяц саплементации (к визиту 2) наблюдалось увеличение уровня фолатов в плазме крови на 1,3% по отношению к исходному, которое оказалось статистически значимым (p<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит уровень фолатов увеличился на 1,4% (p<0,001, визит 3). Аналогичная тенденция выявлена и у женщин с генотипом MTHFR-677CТ: уровень фолатов в плазме крови через месяц саплементации (к визиту 2) увеличился статистически значимо на 1,1% (р<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит выявлено статистически значимое повышение уровня фолатов на 1,4% (р<0,001). У женщин с генотипом MTHFR677ТТ статистически значимое незначительное увеличение уровня фолатов отмечено в интервале с 1-го по 2-й визит на 0,5% (p=0,012). В период со 2-го по 3-й визит также отмечено незначительное увеличение содержания уровня фолатов на 0,6%, которое оказалось статистически значимым (p=0,012) (см. табл. 2).

Таким образом, наиболее интенсивный рост уровня фолатов в плазме крови наблюдается у женщин, принимающих ВМК с Метафолином, особенно у женщин с генотипом MTHFR-677ТТ, имеющих гомозиготный вариант носительства редкой аллели Т (данные представлены в табл. 1); к сожалению, у женщин 2-й группы, получавших ФК, с генотипом MTHFR-677ТТ даже к 3-му визиту уровень фолатов не достиг оптимального уровня.

Сравнительный анализ динамики уровня фолатов у женщин с генотипами MTHFR-1298АА, MTHFR-1298АС, MTHFR-1298СС

• В 1-й группе (Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК) у пациенток с генотипом MTHFR-1298АА через месяц саплементации (к визиту 2) наблюдалось увеличение уровня фолатов в плазме крови на 8,8% по отношению к исходному, которое оказалось статистически значимым (p<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит выявлено незначительное статистически незначимое снижение уровня фолатов с 19,0±1,5 до 16,8±1,1 нг/мл (р=0,120, визит 3). У женщин с генотипом MTHFR1298АС уровень фолатов в плазме крови через месяц саплементации (к визиту 2) увеличился статистически значимо на 6,7% (р<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит статистически значимого увеличения уровня фолатов не обнаружено (p=0,125) уровень фолатов оставался на прежнем оптимальном уровне (см. табл. 2). У женщин с генотипом MTHFR-1298СС отмечен достоверный рост уровня фолатов на протяжении всего исследования, статистически значимое значительное увеличение уровня фолатов имело место в интервале с 1-го по 2-й визит на 4,5% (p=0,012). В период со 2-го по 3-й визит отмечено также увеличение содержания уровня фолатов на 2,5%, которое оказалось статистически значимым (p=0,005) (см. табл. 2).

• Во 2-й группе (монопрепарат ФК пациенткам с генотипом MTHFR1298АА через месяц саплементации (к визиту 2) наблюдалось увеличение уровня фолатов в плазме крови на 1,3% по отношению к исходному, которое оказалось статистически значимым (p<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит уровень фолатов увеличился на 1,6% (p<0,001, визит 3). Аналогичная тенденция выявлена и у женщин с генотипом MTHFR-1298АС: уровень фолатов в плазме крови через месяц саплементации (к визиту 2) увеличился статистически значимо на 0,7% (р<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит выявлено статистически значимое повышение уровня фолатов на 0,8% (р<0,001). У женщин с генотипом MTHFR-1298СС статистически значимое незначительное увеличение уровня фолатов отмечено в интервале с 1-го по 2-й визит на 0,6% (p=0,005). В период со 2-го по 3-й визит также отмечено незначительное увеличение содержания уровня фолатов на 0,6%, которое явилось статистически значимым (p=0,005) (см. табл. 2).

Таким образом, через 3 месяца применения, несмотря на статистическое увеличение, у женщин 2-й группы с генотипами MTHFR-1298АС, MTHFR-1298СС средний уровень фолатов оставался низким и составил 6,7±0,5 и 4,9±0,6 нг/мл соответственно.

Сравнительный анализ динамики уровня фолатов у женщин с генотипами MTR-2756AА, MTR-2756AG, MTR-2756GG

• В 1-й группе (Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК) у пациенток с генотипом MTR-2756AА через месяц саплементации (к визиту 2) наблюдалось увеличение уровня фолатов в плазме крови в 1,6 раза по отношению к исходному, которое стало статистически значимым (p<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит уровень фолатов увеличился статистически незначимо на 1,6% (p=0,386, визит 3). Аналогичная тенденция выявлена и у женщин с генотипом MTR2756AG: уровень фолатов в плазме крови через месяц саплементации (к визиту 2) увеличился статистически значимо в 2,3 раза (р<0,001). За период времени со 2-го по 3-й визит выявлено незначительное статистически незначимое снижение уровня фолатов с 19,0±1,9 до 17,5±1,2 нг/мл. У женщин с генотипом MTR2756GG статистически значимое увеличение уровня фолатов отмечено в интервале с 1-го по 2-й визит на 6,9% (р<0,001). В период со 2-го по 3-й визит отмечено увеличение содержания уровня фолатов на 1,5%, которое оказалось статистически незначимым р=0,386 (см. табл. 2).

• Во 2-й группе (монопрепарат ФК) оценка динамики уровня фолатов выявила достоверное увеличение данного показателя, при всех полиморфизмах гена A2756G MTR уровень фолатов в плазме крови к 3-му визиту достоверно вырос всего в 1,3 раза (р<0,05), однако у женщин с генотипом MTR-2756GG через 3 месяца саплементации уровень фолатов остался низким – 4,5±0,3 нг/мл.

Таким образом, наиболее значительное повышение уровня фолатов в плазме крови наблюдалось у женщин 1-й группы, особенно с гетерозиготным и гомозиготным вариантами носительства редкой аллели G (данные представлены в табл. 2). У пациенток 2-й группы с генотипом MTR-2756GG через 3 месяца саплементации уровень фолатов остался низким – 4,5±0,3 нг/мл.

Сравнительный анализ динамики уровня фолатов у женщин с генотипами MTRR-66AА, MTRR-66AG, MTRR66GG

• В 1-й группе (Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК) выявлено достоверное увеличение данного показателя. Так, у женщин с генотипом MTRR-66AА через месяц саплементации наблюдалось достоверное увеличение уровня фолатов в плазме крови в 1,6 раза по отношению к исходному уровню (p<0,001); в дальнейшем значимых колебаний выявлено не было и на визите 3 уровень фолатов оставался на прежнем, оптимальном, уровне (р=0,373). Аналогичная тенденция прослеживалась и у женщин с генотипами MTRR-66AG, MTRR-66GG.

У женщин с генотипом MTRR-66AG рост уровня фолатов наблюдался в 2,3 раза на визите 2 по отношению к исходному уровню (р<0,001). На визите 3 достоверных колебаний данного показателя также выявлено не было (р=0,333). У женщин с генотипом MTRR-66GG отмечен достоверный рост уровня фолатов на протяжении всего исследования. При этом данный показатель увеличился в 3,2 раза и составил на визите 3 12,3±0,9 против 4,7±0,4 нг/мл (р<0,001) (см. табл. 2).

• Во 2-й группе пациенток, получавших монопрепарат ФК, при оценке динамики уровня фолатов выявлено достоверное увеличение данного показателя до оптимальных уровней уже после 1 месяца саплементации, как и у женщин 1-й группы (см. табл. 2).

Обсуждение

Проведено сравнение эффективности двух режимов микронутриентной коррекции фолатного статуса: 1-й режим: 451 мкг Метафолина и 2,6 мкг витамина В12, 1 таблетка 1 раз в сутки; 2-й режим: 400 мкг ФК, 1 таблетка 1 в сутки.

Исследование показало, что у женщин с генотипами, при которых отсутствует носительство редкой аллели, а именноMTHFR-677CС, MTHFR-1298AА, MTR-2756AА, MTRR-66AА, оба режима микронутриентной фолатной коррекции эффективны и могут быть использованы с целью прегравидарной подготовки. Уже через месяц применения женщинами достигнуты оптимальные уровни фолатов, к 3-му визиту достоверных колебаний значений выявлено не было, они остаются оптимальными.

Для женщин с гетерозиготным вариантом носительства редкой аллели c генотипами MTHFR-1298AC, MTR-2756AG предпочтителен режим Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК, этот режим обеспечивает быстрое устранение дефицита фолатов (через 1 месяц применения). Использование монопрепарата ФК менее эффективно – только через 3 месяца саплементации уровень фолатов достиг оптимального.

Для женщин с гетерозиготным вариантом носительства редкой аллели, c генотипами: MTHFR-677CТ, MTRR66AА оба режима микронутриентной фолатной коррекции эффективны и могут быть использованы с целью прегравидарной подготовки, однако более значимое повышение уровня фолатов выявлено у женщин 1-й группы, которые применяли 451 мкг Метафолина и 2,6 мкг витамина В12.

Женщинам с гомозиготным вариантом носительства редкой аллели c генотипами MTHFR-677ТT, MTHFR-1298СC, MTR-2756GG, MTRR-66GG предпочтителен режим Метафолин и цианокобаламин в составе ВМК, только этот режим обеспечивает быстрое устранение дефицита фолатов. Использование монопрепарата ФК не эффективено для этих пациенток, через 3 месяца саплементации дефицит фолатов не был скорректирован. У женщин с генотипами MTHFR-677ТT, MTR-2756GG дефицит цианкобаламина усугублялся.

Заключение

Полученные данные свидетельствуют о целесообразности включения в регламент прегравидарной подготовки женщин репродуктивного возраста генетического скрининга для выявления редких аллелей полиморфизмов генов основных ферментов фолатного цикла. Это позволит персонализированно подойти к режиму микронутриентной поддержки и обеспечит достаточное насыщение организма фолатами с целью эффективной профилактики врожденных пороков развития и других осложнений беременности.

Дополнительная информация

Проведение работы одобрено локальным Этическим Комитетом ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), протокол № 14-22 от 07.07.2022.

Согласие пациентов на публикацию: пациенты подписали информированное согласие на обработку полученных результатов и публикацию своих данных. Обмен исследовательскими данными: данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.

Вклад авторов. Ших Е.В. – постановка проблемы, разработка концепции статьи, критический анализ литературы. Путинцева А.В. – сбор статистических данных, табличное и графическое представление результатов, описание результатов и формирование выводов исследования, работа с литературой.

Финансирование. Работа выполнена без спонсорской поддержки.

Список литературы

1. Здравоохранение в России. 2021: Статистический сборник Росстат. М., 2021. 171 с.

2. Rogers L.M., Cordero A.M., Pfeiffer C.M., et al. Tsang et al. Global folate status in women of reproductive age: a systematic review with emphasis on methodological issues. Ann New York Acad Sci. 2018;1431(1):35–57. Doi: 10.1111/nyas.13963.

3. WHO. Guideline: Optimal serum and red blood cell folate concentrations in women of reproductive age for prevention of neural tube defects. Geneva: World Health Organization; 2015.

4. Farrell C.J., Kirsch S.H., Herrmann M. Red cell or serum folate: what to do in clinical practice? Clin Chem Lab Med. 2013;51(3):555–569.

5. Fox J. T., Stover P. J. Folate-mediated one-carbon metabolism. Vitamins and hormones. 2008; 79:1–44.

6. Yan Zhang, Wenli Zhan, et al. Variants c.677 C>T, c.1298 A>C in MTHFR, and c.66 A>G in MTRR Affect the Occurrence of Recurrent Pregnancy Loss in Chinese Women. Genet Test Mol biomarkers. 2020;24(11). Doi: 10.1089/gtmb.2020.0106.

7. Botto L.D., Yang Q. 5,10-Methylene- tetrahydrofolate reductase gene variants and congenital anomalies: A HuGE review. Am J Epidemiol. 2000;151:862–877.

8. Menezo Y., Elder K., Clement A., Clement P. Folic Acid, Folinic Acid, 5 MethylTetraHydroFolate Supplementation for Mutations That Affect Epigenesis through the Folate and One-Carbon Cycles. Biomolecules. 2022;12:197. Doi: 10.3390/biom12020197.

9. Erdal Peker, Nihat Demir, Oguz Tuncer, et al. The levels of vitamın B12, folate and homocysteine in mothers and their babies with neural tube defects. J Maternal-Fetal Neonatal Med. 2016;29(18):2944–2948. Doi: 10.3109/14767058.2015.1109620.

10. Ferrazzi E., et al. Folic acid versus 5- methyl tetrahydrofolate supplementation in pregnancy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2020;253:312–19. Doi: 10.1016/j.ejogrb. 2020.06.012.

11. Вкладыш по применению ВМК Элевит® Планирование и Первый Триместр биологически активной добавки (БАД) к пище, свидетельство о государственной регистрации № RU.77.99.88.003.E.001560.04.17от 03.04.2017.

12. Инструкция по медицинскому применению лекарственного препарата 9 месяцев Фолиевая кислота, регистрационный номер: ЛСР-005902/08 от 23.07.08.

13. Bosco P., Gueant-Rodriguez R.M., Anello G., et al. Methionine synthase (MTR) 2756 (A --> G) polymorphism, double heterozygosity methionine synthase 2756 AG/methionine synthase reductase (MTRR) 66 AG, and elevated homocysteinemia are three risk factors for having a child with Down syndrome. Am J Med Genet A. 2003;121(3):219–24. Doi: 10.1002/ ajmg.a.20234.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Евгения Валерьевна Ших, д.м.н., профессор, зав. кафедрой клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней Института клинической медицины им. Н.В. Склифосовского, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет), Москва, Россия; shikh_e_v@staff.sechenov.ru

ORCID:
Е.В. Ших (E.V. Shikh), https://orcid.org/0000-0001-6589-7654
А.В. Путинцева (A.V. Putintseva), https://orcid.org/0000-0001-7749-0851 

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.