О журнале
Общая информацияЦели и задачи журналаРедакционная коллегияСтраница журнала в РИНЦКонтакты
Архив номеровПодписка
Авторам
Авторский договорПорядок рецензированияТребования к публикациямОтправить статьюДекларация о приватностиДекларация о конфликте интересовКритерии авторства
Стандарты этики
ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128
О журнале
Общая информацияЦели и задачи журналаРедакционная коллегияСтраница журнала в РИНЦКонтакты
Архив номеровПодписка
Авторам
Авторский договорПорядок рецензированияТребования к публикациямОтправить статьюДекларация о приватностиДекларация о конфликте интересовКритерии авторства
Стандарты этики
Выйти из аккаунта
2023№2
Механизмы потери альбумина на фоне...

Механизмы потери альбумина на фоне применения современных методов заместительной почечной терапии

DOI
https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2023.2.79-87

Литвинов А.С., Гасанов М.З., Кузнецова Ю.В., Гергия С.Р., Шевченко С.В.

1) ООО «Балтийская Медицинская Компания», Владикавказ, Россия; 2) Партнерство с ограниченной ответственностью «Metaco LLP», Лондон, Великобритания; 3) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава РФ, Ростов-на-Дону, Россия; 4) ООО «ДЦ Нефрос-Дон», Ростов-на-Дону, Россия
В статье рассматриваются вопросы заместительной почечной терапии (ЗПТ) с учетом новейших знаний в области физики
и химии полимерных диализных мембран. Приведены существующие и исторические сведения о классификации мембран для гемодиализа. В обзоре также рассматриваются вопросы классификации диализных мембран, исходя из целесообразности их применения для конкретной клинической ситуации, с целью достижения более эффективного гемодиализа и его модификаций, а также увеличения безопасности процедуры и снижения эпизодов реакции бионесовместимости. Оценено влияние потери альбумина при применении различных методов экстракорпоральной аппаратной детоксикации и перитонеального диализа на качество жизни и выживаемость пациентов с терминальной почечной недостаточностью. Описаны механизмы потери белков при ЗПТ путем адсорбции на мембране гемодиализатора, конвективного переноса и элиминации в диализат. Кроме того, представлены возможности анализа адсорбированных белковых фракций при различных патологических состояниях. Обсуждаются вопросы потенцирующего влияния гипоальбуминемии в качестве независимого фактора риска неблагоприятных исходов у пациентов, получающих ЗПТ. Определение уровня альбумина и его потерь в ходе процедур замещения утраченной функции почек представляется рутинным методом, позволяющим косвенно контролировать основной и энергетический обмены, от активности которых зависит прогноз лечения методами экстракорпоральной детоксикации.

Ключевые слова

альбумин
гемодиализ
мембрана со средней отсечкой
мембрана с высокой отсечкой
коэффициент просеивания
адсорбция белковых фракций
синтетические диализные мембраны
гемодиафильтрация
перитонеальный диализ
хроническая болезнь почек
терминальная почечная недостаточность
Полный текст статьи
доступен в "Библиотеке Врача"

Список литературы

  1. Румянцева Е.И. Хроническая болезнь почек как глобальная проблема для общественного здоровья: динамика заболеваемости и смертности. Проблемы стандартизации в здравоохранении. 2021;1–2:41–9. Doi: 10.26347/1607-2502202101-02041-049. 
  2. Клинические рекомендации. Хроническая болезнь почек (ХБП). Нефрология. 2021;5:10–84. Doi: 10.36485/1561-6274-2021-25-5-10-84. 
  3. Liyanage T., Ninomiya T., Jha V. Worldwide access to treatment for end-stage kidney disease: a systematic review. Lancet. 2015;385:1975–82. Doi: 10.1016/S0140-6736(14)61601-9.
  4. Imbeault B., Nadeau-Fredette A.C. Optimization of Dialysis Modality Transitions for Improved Patient Care. Can. J. Kidney Health Dis. 2019;6:2054358119882664. Doi: 10.1177/2054358119882664.
  5. Marshall M.R., Polkinghorne K.R., Kerr P.G., et al. Temporal Changes in Mortality Risk by Dialysis Modality in the Australian and New Zealand Dialysis Population. Am. J. Kidney Dis. 2015;66(3):489–98. Doi: 10.1053/j.ajkd.2015.03.014.
  6. Wakasugi M., Kazama J.J., Narita I. Mortality trends among Japanese dialysis patients, 1988–2013: a joinpoint regression analysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2016;31(9):1501–507. Doi: 10.1093/ndt/gfw249.
  7. Kalantar-Zadeh K., Abbott K.C., Kronenberg F., et al. Epidemiology of dialysis patients and heart failure patients. Semin. Nephrol. 2006;26(2):118–33. Doi: 10.1016/j.semnephrol.2005.09.005.
  8. Bradbury B.D., Fissell R.B., Albert J.M., et al. Predictors of early mortality among incident US hemodialysis patients in the Dialysis Outcomes and Practice Patterns Study (DOPPS). Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2007;2(1):89–99. Doi: 10.2215/CJN.01170905.
  9. Jansz T.T., Noordzij M., Kramer A., et al. Survival of patients treated with extended-hours haemodialysis in Europe: an analysis of the ERA-EDTA Registry. Nephrol. Dial. Transplant. 2020;35(3):488–95. Doi: 10.1093/ndt/gfz208.
  10. Sharma A.P., Gupta A., Sharma R.K., et al. Does serum albumin at start of continuous ambulatory peritoneal dialysis (CAPD) or its drop during CAPD determine patient outcome? Adv. Perit. Dial. 2000;16:119–22.
  11. Iseki K., Kawazoe N., Fukiyama K. Serum albumin is a strong predictor of death in chronic dialysis patients. Kidney Int. 1993;44(1):115–19. Doi: 10.1038/ki.1993.220.
  12. Avram M.M., Fein P.A., Bonomini L., et al. Predictors of survival in continuous ambulatory peritoneal dialysis patients: a five-year prospective study. Perit. Dial. Int. 1996;16(Suppl. 1):S190–94.
  13. Jones C.H., Newstead C.G., Wills E.J., Davison A.M. Serum albumin and survival in CAPD patients: the implications of concentration trends over time. Nephrol. Dial. Transplant. 1997;12(3):554–58. Doi: 10.1093/ndt/12.3.554.
  14. Lo W.K., Tong K.L., Li C.S., et al. Relationship between adequacy of dialysis and nutritional status, and their impact on patient survival on CAPD in Hong Kong. Perit. Dial. Int. 2001;21(5):441–47. Doi: 10.1177/089686080102100504.
  15. Kalantar-Zadeh K., Kilpatrick R.D., Kuwae N., et al. Revisiting mortality predictability of serum albumin in the dialysis population: time dependency, longitudinal changes and population-attributable fraction. Nephrol. Dial. Transplant. 2005;20(9):1880–88. Doi: 10.1093/ndt/gfh941.
  16. Chen J.B., Cheng B.C., Yang C.H., Hua M.S. An association between time-varying serum albumin level and the mortality rate in maintenance haemodialysis patients: a five-year clinical cohort study. BMC. Nephrol. 2016;17:117. Doi: 10.1186/s12882-016-0332-5.
  17. Hao N., Cheng B.C., Yang H.T., et al. Time-varying serum albumin levels and all-cause mortality in prevalent peritoneal dialysis patients: a 5-year observational study. BMC. Nephrol. 2019;20(1):254. Doi: 10.1186/s12882-019-1433-8.
  18. Owen W.F., Lew N.L., Liu Y., et al. The urea reduction ratio and serum albumin concentration as predictors of mortality in patients undergoing hemodialysis. N. Engl. J. Med. 1993;329:1001–6. Doi: 10.1056/NEJM199309303291404.
  19. Churchill D.N., Taylor D.W., Cook R.J., et al. Canadian hemodialysis morbidity study. Am. J. Kidney Dis. 1992;19:214–34. Doi: 10.1016/S0272-6386(13)80002-9.
  20. Kaysen G.A., Stevenson F.T., Depner T.A. Determinants of albumin concentration in hemodialysis patients. Am. J. Kidney Dis. 1997;29:658–68. Doi: 10.1016/S0272-6386(97)90117-7.
  21. Chan M., Kelly J. Batterham M., Tapsell L. Malnutrition (subjective global assessment) scores and serum albumin levels, but not body mass index values, at initiation of dialysis are independent predictors of mortality: a 10-year clinical cohort study. J. Ren. Nutr. 2012;22:547–57. Doi: 10.1053/j.jrn.2011.11.002.
  22. Steiber A.L. Clinical indicators associated with poor oral intake of patients with chronic renal failure. J. Ren. Nutr 1999;9:84–8. Doi: 10.1016/S1051-2276(99)90005-5.
  23. Kopple J.D. Nutritional status as a predictor of morbidity and mortality in maintenance dialysis patients. ASAIO J. 1997;43(3):246–50. Doi: 10.1097/00002480-199743030-00026.
  24. Jung H.Y., Kim S.H., Jang H.M., et al. Individualized prediction of mortality using multiple inflammatory markers in patients on dialysis. PLoS One. 2018;13(3):e0193511. Doi: 10.1371/journal.pone.0193511.
  25. Chan H.W., Clayton P.A., McDonald S.P., et al. Risk factors for dialysis withdrawal: an analysis of Australia and New Zealand Dialysis and transplant (ANZADATA) registry, 1999-2008. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2012;7(5):775–81. Doi: 10.2215/CJN.07420711.
  26. Mizuno M., Ito Y., Tanaka A., et al. Peritonitis is still an important factor for withdrawal from peritoneal dialysis therapy in the Tokai area of Japan. Clin. Exp. Nephrol. 2011;15(5):727–37. Doi: 10.1007/s10157-011-0471-8.
  27. Birmele B., Francois M., Pengloan J., et al. Death after withdrawal from dialysis: the most common cause of death in a French dialysis population. Nephrol. Dial. Transplant. 2004;19(3):686–91. Doi: 10.1093/ndt/gfg606.
  28. Chan C., Noble H., Lo S., et al. Palliative care for patients with end-stage renal disease: experiences from Hong Kong. Int. J. Palliat. Nurs. 2007;13(7):310–14. Doi: 10.12968/ijpn.2007.13.7.24342.
  29. McDade-Montez E.A., Christensen A.J., Cvengros J.A., Lawton W.J. The role of depression symptoms in dialysis withdrawal. Health Psychol. 2006;25(2):198–204. Doi: 10.1037/0278-6133.25.2.198.
  30. Remón-Rodríguez C., Quirós-Ganga P., Portolés-Pérez J, et al. Results of the cooperative study of Spanish peritoneal dialysis registries: analysis of 12 years of follow-up. Nefrol. 2014;34(1):18–33. Doi: 10.3265/Nefrologia.pre2013.Jul.12106.
  31. Workeneh B., Guffey D., Minard C.G., Mitch W.E. Causes for withdrawal in an urban peritoneal. Int. J. Nephrol. 2015;2015:652953. Doi: 10.1155/2015/652953.
  32. Heaf J.G., Sarac S., Afzal S. A high peritoneal large pore fluid flux causes hypoalbuminaemia and is a risk factor for death in peritoneal dialysis patients. Nephrol. Dial. Transplant. 2005;20:2194–201. Doi: 10.1093/ndt/gfi008.
  33. Nakamoto H., Imai H., Kawanishi H., et al. Effect of diabetes on peritoneal function assessed by personal dialysis capacity test in patients undergoing CAPD. Am. J. Kidney Dis. 2002;40:1045–54. Doi: 10.1053/ajkd.2002.36343.
  34. Szeto C.C., Chow K.M., Lam C.W., et al. Peritoneal albumin excretion is a strong predictor of cardiovascular events in peritoneal dialysis patients: a prospective cohort study. Perit. Dial. Int. 2005;25:445–52.
  35. Qazi H.A., Chen H., Zhu M. Factors influencing dialysis withdrawal: a scoping review. BMC. Nephrol. 2018;19(1):96. Doi: 10.1186/s12882-018-0894-5.
  36. Watanabe Y., Kawanishi H., Suzuki K., et al. Japanese society for dialysis therapy clinical guideline for "Maintenance hemodialysis: hemodialysis prescriptions". Ther. Apher. Dial. 2015;19(Suppl. 1):67–92. Doi: 10.1111/1744-9987.12294.
  37. Saito A. Definition of high-performance membranes - from the clinical point of view. Contrib. Nephrol. 2011;173:1–10. Doi: 10.1159/000328938.
  38. Yamashita A.C. Mass transfer mechanisms in high-performance membrane dialyzers. Contrib. Nephrol. 2011;173:95–102. Doi: 10.1159/000328946.
  39. 39. National Kidney Foundation: Clinical practice guidelines for hemodialysis adequacy. Am. J. Kidney Dis. 2006;48(Suppl. 1): s12–47.
  40. Tattersall J., Martin-Malo A. Pedrini L., et al. EBPG guideline on dialysis strategies. Nephrol. Dial. Transplant. 2007;22(Suppl. 2):ii5–21. Doi: 10.1093/ndt/gfm022.
  41. Cheung A.K., Levin N.W., Greene T., et al. Effects of high-flux hemodialysis on clinical outcomes: results of the HEMO study. J. Am. Soc. Nephrol. 2003;14(12):3251–63. Doi: 10.1097/01.asn.0000096373.13406.94.
  42. Boschetti-de-Fierro A., Voigt M. Storr M., Krause B. MCO Membranes: Enhanced Selectivity in High-Flux Class. Sci. Rep. 2015;5:18448. Doi: 10.1038/srep18448.
  43. Kirsch A.H., Lyko R., Nilsson L.G., et al. Performance of hemodialysis with novel medium cut-off dialyzers. Nephrol. Dial. Transplant. 2017;32(1):165–72. Doi: 10.1093/ndt/gfw310.
  44. Ward R.A. Protein-leaking membranes for hemodialysis: a new class of membranes in search of an application? J. Am. Soc. Nephrol. 2005;16(8):2421–30. Doi: 10.1681/ASN.2005010070.
  45. Boschetti-de-Fierro A., Voigt M., Storr M., Krause B. Extended characterization of a new class of membranes for blood purification: the high cut-off membranes. Int. J. Artif. Organs. 2013;36(7):455–63. Doi: 10.5301/ijao.5000220.
  46. Storr M., A Ward R. Membrane innovation: closer to native kidneys. Nephrol. Dial. Transplant. 2018;33(3):22–7. Doi: 10.1093/ndt/gfy228.
  47. Lamy T., Henri P., Lobbedez T., et al. Comparison between on-line high-efficiency hemodiafiltration and conventional high-flux hemodialysis for polyclonal free light chain removal. Blood Purif. 2014;37(2):93–8. Doi: 10.1159/000357968.
  48. Hutchison C.A., Bradwell A.R., Cook M., et al. Treatment of acute renal failure secondary to multiple myeloma with chemotherapy and extended high cut-off hemodialysis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2009;4(4):745–54. Doi: 10.2215/CJN.04590908.
  49. Gondouin B., Hutchison C.A. High cut-off dialysis membranes: current uses and future potential. Adv. Chron. Kidney Dis. 2011;18(3):180–87. Doi: 10.1053/j.ackd.2011.02.006.
  50. Vanholder R., Glorieux G., De Smet R., Lameire N. European uremic toxin work G: new insights in uremic toxins. Kidney Int. Suppl. 2003;84:S6–10. Doi: 10.1046/j.1523-1755.63.s84.43.x.
  51. Krishnasamy R., Hawley C.M., Jardine M.J., et al. Design and methods of the REMOVAL-HD study: a tRial Evaluating Mid cut-Off Value membrane clearance of Albumin and Light chains in HaemoDialysis patients. BMC. Nephrol. 2018;19(1):89. Doi: 10.1186/s12882-018-0883-8.
  52. Urbani A., Sirolli V., Lupisella S., et al. Proteomic investigations on the effect of different membrane materials on blood protein adsorption during haemodialysis. Blood Transfus. 2012;10(Suppl. 2):s101–12. Doi: 10.2450/2012.014S.
  53. Bonomini M., Pieroni L., Di Liberato L., et al. Examining hemodialyzer membrane performance using proteomic technologies. Ther. Clin. Risk Manag. 2017;14:1–9. Doi: 10.2147/TCRM.S150824.
  54. Daugirdas J.T., Bernardo A.A. Hemodialysis effect on platelet count and function and hemodialysis-associated thrombocytopenia. Kidney Int. 2012;82(2):147–57. Doi: 10.1038/ki.2012.130.
  55. Macleod A.M., Campbell M., Cody J.D., et al. Cellulose, modified cellulose and synthetic membranes in the haemodialysis of patients with end-stage renal disease. Cochrane Database Syst. Rev. 2005;(3):CD003234. Doi: 10.1002/14651858.CD003234.pub2.
  56. Pascual M., Tolkoff-Rubin N., Schifferli J.A. Is adsorption an important characteristic of dialysis membranes? Kidney Int. 1996;49(2):309–13. Doi:10.1038/ki.1996.47.
  57. Campistol JM, Torregrosa JV, Ponz E, Fenollosa B. Beta-2-microglobulin removal by hemodialysis with polymethylmethacrylate membranes. Contrib Nephrol. 1999;125:76–85. Doi: 10.1159/000059951.
  58. Galli F., Benedetti S., Buoncristiani U., et al. The effect of PMMA-based protein-leaking dialyzers on plasma homocysteine levels. Kidney Int. 2003;64(2):748–55. Doi: 10.1046/j.1523-1755.2003.00134.x.
  59. Cohen G., Rudnicki M., Schmaldienst S., et al. Effect of dialysis on serum/plasma levels of free immunoglobulin light chains in end-stage renal disease patients. Nephrol. Dial. Transplant. 2002;17:879–83. Doi: 10.1093/ndt/17.5.879.
  60. Oshihara W., Nagao H., Megano H., et al. Trial use of a polymethylmethacrylate membrane for the removal of free immunoglobulin light chains in dialysis patients. NDT. Plus. 2010;3(Suppl. 1):i3–7. Doi: 10.1093/ndtplus/sfq029.
  61. Galli F., Benedetti S., Floridi A., et al. Glycoxidation and inflammatory markers in patients on treatment with PMMA-based protein-leaking dialyzers. Kidney Int. 2005;67(2):750–9. Doi: 10.1111/j.1523-1755.2005.67138.x.
  62. Abe M., Hamano T., Wada A., et al. Renal Data Registry Committee, Japanese Society for Dialysis Therapy. Effect of dialyzer membrane materials on survival in chronic hemodialysis patients: Results from the annual survey of the Japanese Nationwide Dialysis Registry. PLoS One. 2017;12(9):e0184424. Doi: 10.1371/journal.pone.0184424.
  63. Niwa T., Asada H., Tsutsui S., Miyazaki T. Efficient removal of albumin-bound furancarboxylic acid by protein-leaking hemodialysis. Am. J. Nephrol. 1995;15(6):463–7. Doi: 10.1159/000168887.
  64. Duranton F., Cohen G., De Smet R., et al. Normal and pathologic concentrations of uremic toxins 
  65. Vanholder R., De Smet R., Glorieux G., et al. Review on uremic toxins: classification, concentration, and interindividual variability. Kidney Int. 2003;63(5):1934–43. Doi: 10.1046/j.1523-1755.2003.00924.x.
  66. Vanholder R., Schepers E., Pletinck A., et al. The uremic toxicity of indoxyl sulfate and p-cresyl sulfate: a systematic review. J. Am. Soc. Nephrol. 2014;25(9):1897–907. Doi: 10.1681/ASN.2013101062.
  67. Baurmeister U., Vienken J., Ward R.A. Should dialysis modalities be designed to remove specific uremic toxins? Semin. Dial. 2009;22(4):454–7. Doi: 10.1111/j.1525-139X.2009.00599.x.
  68. Lekawanvijit S., Krum H. Cardiorenal syndrome: role of protein-bound uremic toxins. J. Ren. Nutr. 2015;25(2):149–54. Doi: 10.1053/j.jrn.2014.10.009.
  69. Werner C., Jacobasch H. Surface characterization of polymers for medical devices. Int. J. Artif. Organs. 1999;22(3):160–76. Doi: 10.1177/039139889902200309.
  70. Vanholder R.C., Eloot S., Glorieux G.L. Future Avenues to Decrease Uremic Toxin Concentration. Am. J. Kidney Dis. 2016;67(4):664–76. Doi: 10.1053/j.ajkd.2015.08.029.
  71. Stenvinkel P., Heimbürger O., Paultre F., et al. Strong association between malnutrition, inflammation, and atherosclerosis in chronic renal failure. Kidney Int. 1999;55(5):1899–911. Doi: 10.1046/j.1523-1755.1999.00422.x.
  72. Bonomini M., Sirolli V., Pieroni L., et al. Proteomic Investigations into hemodialysis therapy. Int. J. Mol. Sci. 2015;16(12):29508–21. Doi: 10.3390/ijms161226189.
  73. Pertosa G., Grandaliano G., Gesualdo L., Schena F.P. Clinical relevance of cytokine production in hemodialysis. Kidney Int. Suppl. 2000;76:S104–11. Doi: 10.1046/j.1523-1755.2000.07613.x.
  74. Chanard J., Lavaud S., Randoux C., Rieu P. New insights in dialysis membrane biocompatibility: relevance of adsorption properties and heparin binding. Nephrol. Dial. Transplant. 2003;18(2):252–57. Doi: 10.1093/ndt/18.2.252.
  75. shikawa I., Chikazawa Y., Sato K., et al. Proteomic analysis of serum, outflow dialysate and adsorbed protein onto dialysis membranes (polysulfone and pmma) during hemodialysis treatment using SELDI-TOF-MS. Am. J. Nephrol. 2006;26(4):372–80. Doi: 10.1159/000094779.
  76. Kawanishi H., Mineshima M., Tomo T., et al. Classification of dialyzers (hollow fiber dialyzers) by functions 2013. J. Jap. Soc. Dial. Ther. 2013;46:501–6 (In Japanese).
  77. Kaiser T., Hermann A., Kielstein J.T., et al. Capillary electrophoresis coupled to mass spectrometry to establish polypeptide patterns in dialysis fluids. J. Chromatogr. A. 2003;1013(1–2):157–71. Doi: 10.1016/S0021-9673(03)00712-X.
  78. Dihazi H., Muller C.A., Mattes H., Muller G.A. Proteomic analysis to improve adequacy of hemo- and peritoneal dialysis: Removal of small and high molecular weight proteins with high- and low-flux filters or a peritoneal membrane. Proteom. Clin. Appl. 2008;2(7–8):1167–82. Doi: 10.1002/prca.200780143.
  79. Woods H.F., Nandakumar M. Improved outcome for haemodialysis patients treated with high-flux membranes. Nephrol. Dial. Transplant. 2000;15(Suppl. 1):36–42. Doi: 10.1093/oxfordjournals.ndt.a027962.
  80. Ficheux A., Gayrard N., Szwarc I., et al. The use of SDS-PAGE scanning of spent dialysate to assess uraemic toxin removal by dialysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2011;26(7):2281–89. Doi: 10.1093/ndt/gfq709.
  81. Muñoz R., Gallardo I., Valladares E., et al. Online hemodiafiltration: 4 years of clinical experience. Hemodial. Int. 2006;10(Suppl. 1):S28–32. Doi: 10.1111/j.1542-4758.2006.01187.x.
  82. Orasan R.A., Patiu I.M., Anghel D., et al. Variation of clinical and laboratory features in chronic dialysis patients treated with high-flux hemodialysis after switching to on-line hemodiafiltration. Int. Urol. Nephrol. 2013;45(5):1415–22. Doi: 10.1007/s11255-012-0341-7.
  83. Jean G., Hurot J.M., Deleaval P., et al. Online-haemodiafiltration vs. conventional haemodialysis: a cross-over study. BMC. Nephrol. 2015;16:70. Doi: 10.1186/s12882-015-0062-0.
  84. Movilli E., Camerini C., Gaggia P., et al. Total Convection Affects Serum β2 Microglobulin and C-Reactive Protein but Not Erythropoietin Requirement following post-Dilutional Hemodiafiltration. Am. J. Nephrol. 2015;41(6):494–501. Doi: 10.1159/000437171.
  85. Vilar E., Fry A.C., Wellsted D., et al. Long-term outcomes in online hemodiafiltration and high-flux hemodialysis: a comparative analysis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2009;4(12):1944–53. Doi: 10.2215/CJN.05560809.
  86. Weng C.H., Hsu C.W., Hu C.C., et al. Association Between Hemodiafiltration and Hypoalbuminemia in Middle-Age Hemodialysis Patients. Medicine (Baltimore). 2016;95(15):e3334. Doi: 10.1097/MD.0000000000003334.
  87. Bolasco P., Altieri P., Sorba G., et al. Adequacy in pre-dilution haemofiltration: Kt/V or infusion volume? The Sardinian Collaborative Study Group on Haemofiltration On-line. Nephrol. Dial. Transplant. 2000;15(Suppl. 2):60–4. Doi: 10.1093/ndt/15.suppl_1.60.
  88. Krieter D.H., Hackl A., Rodriguez A., et al. Protein-bound uraemic toxin removal in haemodialysis and post-dilution haemodiafiltration. Nephrol. Dial. Transplant. 2010;25(1):212–8. Doi: 10.1093/ndt/gfp437.
  89. Pedrini L.A., Cozzi G., Faranna P., et al. Transmembrane pressure modulation in high-volume mixed hemodiafiltration to optimize efficiency and minimize protein loss. Kidney Int. 2006;69(3):573–79. Doi: 10.1038/sj.ki.5000110.
  90. Susantitaphong P., Siribamrungwong M., Jaber B.L. Convective therapies versus low-flux hemodialysis for chronic kidney failure: a meta-analysis of randomized controlled trials. Nephrol. Dial. Transplant. 2013;28(11):2859–74. Doi: 10.1093/ndt/gft396.
  91. Sakurai K. Biomarkers for evaluation of clinical outcomes of hemodiafiltration. Blood Purif. 2013;35(Suppl. 1):64–8. Doi: 10.1159/000346364.
  92. Tsuchida K., Minakuchi J. Albumin loss under the use of the high-performance membrane. Contrib. Nephrol. 2011;173:76–83. Doi: 10.1159/000328957.
  93. Nagai K., Tsuchida K., Ishihara N., et al. Implications of Albumin Leakage for Survival in Maintenance Hemodialysis Patients: A 7-year Observational Study. Ther. Apher. Dial. 2017;21(4):378–86. Doi: 10.1111/1744-9987.12526.
  94. Nagai K., Tsuchida K., Hirose D., et al. The effect of albumin leakage in hemodialysis patients on redox status of serum albumin. J. Artif. Organs. 2016;19(3):310–14. Doi:10.1007/s10047-016-0900-2.
  95. Masakane I., Sakurai K. Current approaches to middle molecule removal: room for innovation. Nephrol. Dial. Transplant. 2018;33(Suppl. 3):iii12–21. Doi: 10.1093/ndt/gfy224.
  96. Locatelli F., Martin-Malo A., Hannedouche T., et al. Effect of membrane permeability on survival of hemodialysis patients. J. Am. Soc. Nephrol. 2009;20(3):645–54. Doi: 10.1681/ASN.2008060590.

Об авторах / Для корреспонденции

Литвинов Александр Сергеевич – к.м.н., ведущий научный специалист; главный врач ООО «Балтийская Медицинская Компания».
Адрес: 362047 Республика Северная Осетия-Алания, Владикавказ, ул. Морских Пехотинцев, 15 «Б»; e-mail: dirge@yandex.ru. ORCID: 0000-0001-5251-145X
Гасанов Митхат Зульфугар-оглы – к.м.н., доцент ФГБОУ ВО Ростовский государственный медицинский университет Минздрава РФ, кафедра внутренних
болезней №1. Адрес: 344022 Россия, Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, 29; e-mail: mitkhat@mail.ru. ORCID: 0000-0001-5856-0404
Кузнецова Юлия Витальевна – студентка ФГБОУ ВО Ростовский государственный медицинский университет Минздрава РФ. Адрес: 344022 Россия, Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, 29; e-mail: ul.kuznetsova04@mail.ru. ORCID: 0000-0002-5740-3009
Гергия Саид Романович – врач-нефролог ООО «ДЦ Нефрос-Дон». Адрес: 344000 Россия, Ростов-на-Дону, ул. Текучева, 22; e-mail: boss.gergiya@mail.ru.
ORCID: 0009-0004-3799-0674
Шевченко Сергей Владимирович – врач-терапевт ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава РФ.
Адрес: 344022 Россия, Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, 29; e-mail: shevchenko19967@mail.ru. ORCID: 0000-0002-0151-0761

Также по теме

№3 / 2024
Жмуров В.А., Ермакова П.А., Ермакова А.А., Жмуров Д.В., Вануйто Е.Я.
Оценка эффективности нефропротективной терапии у пациентов с хронической болезнью почек и артериальной гипертензией
№3 / 2024
Жмуров В.А., Вануйто Е.Я., Жмуров Д.В., Осколков С.А., Петрова Ю.А., Жмурова Е.А., Ермакова А.А., Ермакова П.А.
Возрастные и гендерные особенности хронической болезни почек у жителей Приполярного Севера
№2 / 2024
Михайлова Н.А.
Роксадустат: лечение анемии и дополнительные клинические эффекты (обзор литературы)
№4 / 2024
Муркамилов И.Т., Айтбаев К.А., Фомин В.В., Юсупов Ф.А., Юсупова Т.Ф., Юсупова З.Ф., Дуйшеева Г.К., Хакимов Ш.Ш., Солижонов Ж.И., Ыманкулов Д.С.
Маркеры системы гемостаза (факторы коагуляции) и геометрия левого желудочка при протеинурических вариантах хронической болезни почек
№3 / 2024
Kai Ming Chow, Philip Kam-Tao Li, Yeoungjee Cho, Ali Abu-Alfa, Sunita Bavanandan, Edwina A Brown, Brett Cullis, Dawn Edwards, Isabelle Ethier, Helen Hurst, Yasuhiko Ito, Thyago Proenc¸ a de Moraes, Johann Morelle, Naomi Runnegar, Anjali Saxena, Simon Wai-Yin So, Na Tian, David W Johnson.
Рекомендации ISPD, связанные с катетер-ассоциированными инфекциями 2023
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.