ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Перекисное окисление липидов в организме больных туберкулезом

Румянцев Е.К., Краснова Н.М., Николаев В.М., Прокопьев Е.С., Кириллина М.П., Сычев Д.А.

1) Якутский научный центр комплексных медицинских проблем, Якутск, Россия; 2) Северо-Восточный федеральный университет им. М.К. Аммосова, Якутск, Россия; 3) Научно-практический центр «Фтизиатрия» им. Е.Н. Андреева, Якутск, Россия; 4) Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования, Москва, Россия
Целью настоящей работы стала сравнительная оценка активности свободно-радикального окисления липидов в организме больных туберкулезом и здоровых добровольцев. В исследовании приняли участие 76 пациентов с лекарственно-чувствительным и лекарственно-устойчивым туберкулезом легких (средний возраст – 42,97±15,38 года) и 40 относительно здоровых добровольцев (средний возраст – 42,45±11,56 года). Материалом для исследования служила венозная кровь.
В сыворотке крови определяли концентрацию малонового диальдегида (Costa et al. [2006]), в гемолизате эритроцитов определяли активность ферментов системы глутатиона: глутатион пероксидаза (Paglia et al. [1967]), глутатион-S-трансфераза (Habig et al. [1974]), глутатион редуктаза (Mannervik et al. [1978]) и концентрацию восстановленного глутатиона (Tietze et al. [1969]). Согласно результатом нашего исследования, в организме больных туберкулезом происходит повышение интенсивности свободно-радикального окисления на фоне снижения антиоксидантной защиты. Интенсивность свободно-радикального окисления липидов и показатели системы глутатиона среди пациентов с лекарственно-чувствительным
и лекарственно-устойчивым туберкулезом легких значимо не различались.

Ключевые слова

туберкулез
глутион редуктаза
глутатон трансфереза
глутатион пероксидаза
восстановленный глутатион
свободно-радикальное окисление липидов
детоксикация кленобиотиков

Введение

Туберкулез – инфекционное заболевание, вызванное Mycobacterium tuberculosis (М. tuberculosis). Согласно отчету ВОЗ, в 2021 г. во всем мире туберкулезом заразились 10 млн человек, причем данное заболевание стало причиной смерти для 1,5 млн [1].

Патогенез туберкулеза начинается с проникновения М. tuberculosis в организм человека. Попав в организм, микобактерия часто закрепляется в тканях легких. На заражение бактерией M. tuberculosis организм отвечает активацией иммунной системы в тканях легких, и первыми вступают в борьбу с инфекцией альвеолярные макрофаги. Макрофаги запускают механизмы активации воспалительных процессов, которые приводят к высвобождению активных форм кислорода и инициации свободно-радикальных процессов. Первичные и вторичные продукты свободно-радикальных реакций обладают выраженной цитотоксичностью [2].

В организме инициаторами свободно-радикального окисления (СРО) также могут служить лекарственные препараты и их токсичные метаболиты, используемые для лечения туберкулеза. В процессе лечения больных лекарственно-чувствительным туберкулезом легких используют противотуберкулезные препараты: изониазид, рифампицин, пиразинамид, этамбутол. Для лечения лекарственно-устойчивого туберкулеза назначаются одновременно пять-шесть противотуберкулезных препаратов c доказанной или предполагаемой лекарственной чувствительностью против возбудителя (капреомицин, пиразинамид, протеонамид, моксифлоксацин/левофлоксацин, бедаквилин, линезолид и др.) [3].

Детоксикация лекарственных средств происходит в две фазы. В первой фазе под действием суперсемейства ферментов цитохрома Р-450 происходит монооксигеназное окисление, которое может приводить к образованию токсичных продуктов, например гидразин и ацетилгидразин (при детоксикации изониазида) [4], деацетилрифампицин (при детоксикации рифампицина) [5], пиразиноевая кислота (при детоксикации пиразинамида) [6], капреомицин (не метаболизируется) [7], сульфоксид протионамида (при детоксикации протионамида) [8], деметиллевофлоксацин и N-оксид левофлоксацин (при детоксикации левофлоксацина) [9], моксифлоксацин (не метаболизируется, неактивные сульфосоединения [М1] и глюкурониды [М2]) [10], гидроксиэтилглицин (при детоксикации линезолида) [11] и т.д. Данные токсичные продукты приводят к усиленной генерации активных форм кислорода, инициации липоперексиных процессов.

Защита тканей клеток от активных форм кислорода и продуктов СРО выполняет антиоксидантная система организма. Чрезмерная активация свободно-радикальных реакций приводит к повреждению клеток, свободные радикалы могут реагировать с липидами клеточной мембраны, вызывая перекисное окисление липидов. Свободные радикалы также могут вызывать окислительную модификацию белков, которые влияют на функции ферментов и других структурных белков [12].

Важнейшим антиоксидантом в организме является глутатион за счет высокой концентрации (внутри клетки 1 до 10 мMоль) и системы ферментов (глутатион пероксидаза, глутатион редуктаза, глутатион трансфераза), которые используют его восстановленную форму для нейтрализации продуктов СРО и обезвреживания токсичных веществ. Кроме того, глутатион регулирует другие жизненно важные процессы в клетке (репарации поврежденной ДНК в ядре; активный транспорт аминокислот; участвует в модуляции иммунного ответа и т.д.) [13, 14].

Цель работы: сравнительная оценка активности СРО липидов в организме больных туберкулезом и здоровых добровольцев.

Методы

Исследование проведено в государственном бюджетном учреждении Республики Саха (Якутия) «Научно-практический центр “Фтизиатрия” им. Е.Н. Андреева» в Якутске. Протокол исследования рассмотрен и одобрен этическим комитетом при ГБУ РС(Я) НПЦ «Фтизиатрия». Все участники исследования подписали информированное согласие.

В исследовании приняли участие 76 пациентов с туберкулезом легких (средний возраст – 42,97+15,38 года), из которых 44 (43,48±8,85 лет) – с лекарственно-чувствительным и 32 (41,48±16,84 года) – с лекарственно-устойчивым туберкулезом. В контрольную группу вошли 40 здоровых добровольцев в возрасте 42,45±11,56 года, по полу и этнической принадлежности соответствовавших группе больных.

Материалом исследования служила венозная кровь, которую брали натощак из локтевой вены. Интенсивность СРО оценивали в сыворотке крови по накоплению концентрации малонового диальдегида при высокой температуре в кислой среде; малоновый диальдегид реагирует с 2-тиобарбитуровой кислотой, образуя окрашенный триметиновый комплекс, согласно протоколу, ранее описанному в работе Costa et al. (2006) [15]. Показатели системы глутатиона были сделаны в гемолизате эритроцитов, приготовленном в соотношении (1:10) в бидистиллированной воде. Концентрацию восстановленного глутатиона оценивали на взаимодействии восстановленного глутатиона с 5,5'-дитио-бис-2-нитробензойной кислотой с образованием окрашенного в желтый цвет аниона 2-нитро-5-тиобензоата по методу Tietze et al. (1969) [16], активности ферментов: глутатион пероксидаза, которая катализирует реакцию взаимодействия восстановленного глутатиона с гидроперекисью трет-бутила, активность фермента при этом может быть оценена по изменению содержания восстановленного глутатиона в пробах до и после инкубации с модельным субстратом в ходе цветной реакции с 5,5'-дитио-бис-2-нитробензойной кислотой по методу Paglia et al. (1967) [17]; глутатион-S-трансфераза, активность которой определяли по скорости образования глутатион-S-коньюгатов между восстановленным глутатионом и 1-хлор-2,4-динитробензолом по методу Habig et al. (1974) [18]; глутатион редуктаза, активность которой определяли по количеству израсходованного в ходе ферментативной реакции кофермента НАДФН по методу Mannervik et al. (1978) [19].

Статистическую обработку проводили с помощью пакета программ SPSS 24 for Windows и Microsoft Excel. Данные статистического анализа представлены в виде средних значений. Значимость различий оценивали с помощью критерия U-критерия Манна–Уитни. Статистически значимыми считали различия при р<0,05.

Результаты и обсуждение

В результате проведенного исследования в крови больных туберкулезом концентрация малонового диальдегида была значимо (в 2,3 раза) выше (р=0,03), а концентрация восстановленного глутатиона ниже в 1,3 раза (р=0,00), чем у здоровых добровольцев (табл. 1).

130-1.jpg (51 KB)

При сравнительном анализе активности ферментов системы глутатиона установлено, что активность глутатион пероксидазы и глутатион трансферазы в крови больных туберкулезом была значимо выше, соответственно в 1,5 (р=0,00) и 1,1 раза (р=0,68), по сравнению с активностью данных ферментов в крови здоровых добровольцев. Установлено значимое снижение активности глутатион редуктазы в 1,5 раза (р=0,00) в крови больных туберкулезом (табл. 1).

При сравнительном анализе активности перекисного окисления липидов в крови среди больных лекарственно-чувствительным туберкулезом, лекарственно-устойчивым туберкулезом и здоровых добровольцев установлено, что в крови больных с различными формами чувствительности микобактерий к противотуберкулезным препаратам концентрации восстановленного глутатиона значимо ниже, чем у здоровых добровольцев. Активность таких ферментов, как глутатион пероксидаза и глутатион редуктаза, в крови больных чувствительными и устойчивыми формами туберкулеза была значимо выше, чем у здоровых добровольцев (табл. 2).

130-2.jpg (84 KB)

Значимых различий активности СРО липидов в крови больных лекарственно-чувствительным и лекарственно-устойчивым туберкулезом не установлено (табл. 2).

Активные формы кислорода, вырабатываемые организмом в ответ на воздействия M. tuberculosis, приводят к инициации свободнорадикальных реакций [20]. Основная функция глутатиона заключается в обезвреживании активных форм кислорода и продуктов перекисного окисления липидов (перекиси и липоперекиси). Фермент глутатион пероксидаза катализирует восстановление гидроперекисей липидов в соответствующие спирты и восстанавливает пероксид водорода до воды [21]. Кроме антиоксидантной функции глутатион принимает участие в детоксикации лекарственных препаратов и их токсичных метаболитов. Функцию детоксикации осуществляет фермент глутатион трансфераза. Глутатион трансфераза способна катализировать конъюгацию восстановленной формы глутатиона с субстратами ксенобиотиков, превращая их в растворимые в воде менее токсичные вещества [22]. Реакции с участием глутатион пероксидазы и глутатион трансферазы приводят к уменьшению концентрации восстановленной формы глутатиона. Фермент, который восстанавливает окисленную форму глутатиона за счет энергии НАДФ-Н, – глутатион редуктаза [23].

В организме больных туберкулезом отмечено достоверное увеличение интенсификации свободнорадикальных реакций, о чем свидетельствует статистически значимое повышение конечного продукта перекисного окисления липидов – малонового диальдегида (табл. 1).

В ответ на увеличение интенсификации окислительных процессов в организме больных туберкулезом активируется система антиоксидантной защиты. В нашем исследовании достоверно повышается концентрация восстановленной формы глутатиона, а также активности ферментов глутатион пероксидазы и глутатион редуктазы. Активность глутатион трансферазы имела тенденцию к повышению, но изменения значений не достигали уровня статистической значимости (табл. 1). Вероятно, основной причиной снижения концентрации восстановленной формы глутатиона в крови является интенсификация перекисного окисления липидов, а не токсическое действие лекарственных препаратов. Кроме того, истощение уровня восстановленной формы глутатиона у больных туберкулезом усугубляется достоверным снижением в крови активности глутатион редуктазы, чем у здоровых добровольцев.

В исследовании мы предположили, что лекарственно-устойчивый M. tuberculosis может быть связан с системой глутатиона. Но наши результаты показали, что изменения значений концентраций восстановленного глутатиона, а также активности ферментов: глутатион пероксидазы, глутатион редуктазы, глутатион трансферазы, статистически не различались между больными, не имевшими и имевшими лекарственную устойчивость.

Заключение

Таким образом, согласно результатом нашего исследования, можно сделать вывод: в организме больных туберкулезом легких происходит повышение интенсивности СРО на фоне снижения антиоксидантной защиты. Интенсивность СРО липидов и активность системы глутатиона не зависят от лекарственной чувствительности микобактерий, вызвавших туберкулез.

Список литературы

1. Global tuberculosis report 2022 URL: https://www.who.int/teams/global-tuberculosis-programme/tb-reports/global-tuberculosis-report-2022

2. Даренская М.А., Колесникова Л.И., Колесников С.И. Свободнорадикальные реакции при социально значимых инфекционных заболеваниях: Вич-инфекции, Гепатитах, туберкулезе. Вестник РАМН. 2020;3:196–203.

3. Singh R., Dwivedi S.P., Gaharwar U.S,. et al. Recent updates on drug resistance in Mycobacterium tuberculosis. J Appl Microbiol. 2020;128(6):1547–67. Doi: 10.1111/jam.14478.

4. Соловьева С.А. Характеристические профили биологически активных веществ образцов плазмы крови больных туберкулезом, полученные методом ВЭЖХ. Журнал аналитической химии. СПб., 2019;74(6):421–25.

5. Abulfathi A.A., Decloedt E.H., Svensson E.M., Diacon A.H., Donald P., Reuter H. Clinical Pharmacokinetics and Pharmacodynamics of Rifampicin in Human Tuberculosis. Clin Pharmacokinet. 2019;58(9):1103–29. Doi: 10.1007/s40262-019-00764-2. PMID: 31049868.

6. Stehr M., Elamin A.A., Singh M. Pyrazinamide: the importance of uncovering the mechanisms of action in mycobacteria. Expert Rev Anti Infect Ther. 2015;13(5):593–603. Doi: 10.1586/14787210.2015.1021784.

7. Chowdhury A.S., Khaledian E., Broschat S.L. Capreomycin resistance prediction in two species of Mycobacterium using a stacked ensemble method. J Appl Microbiol. 2019 Dec;127(6):1656–64. Doi: 10.1111/jam.14413.

8. Yun H.Y., Chang M.J., Jung H., et al. Prothionamide Dose Optimization Using Population Pharmacokinetics for Multidrug-Resistant Tuberculosis Patients. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(9):e0189321. Doi: 10.1128/aac.01893-21.

9. Deshpande D., Pasipanodya J.G., Mpagama S.G., et al. Levofloxacin Pharmacokinetics/Pharmacodynamics, Dosing, Susceptibility Breakpoints, and Artificial Intelligence in the Treatment of Multidrug-resistant Tuberculosis. Clin Infect Dis. 2018;67(suppl_3):S293-S302. Doi: 10.1093/cid/ciy611.

10. Shee S., Singh S., Tripathi A., et al. Moxifloxacin-Mediated Killing of Mycobacterium tuberculosis Involves Respiratory Downshift, Reductive Stress, and Accumulation of Reactive Oxygen Species. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(9):e0059222. Doi: 10.1128/aac.00592-22.

11. Kishor K., Dhasmana N., Kamble S.S., Sahu R.K. Linezolid Induced Adverse Drug Reactions – An Update. Curr Drug Metab. 2015;16(7):553–59. Doi: 10.2174/1389200216666151001121004.

12. Yew W.W., Chang K.C., Chan D.P. Oxidative Stress and First-Line Antituberculosis Drug-Induced Hepatotoxicity. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(8):e02637-17. Doi: 10.1128/AAC.02637-17. Erratum in: Antimicrob Agents Chemother. 2018 Sep 24;62(10):

13. Forman H.J., Zhang H., Rinna A. Glutathione: overview of its protective roles, measurement, and biosynthesis. Mol Aspects Med. 2009;30(1-2):1-12. Doi: 10.1016/j.mam.2008.08.006.

14. Wu G., Fang Y.Z., Yang S., et al. Glutathione metabolism and its implications for health. J Nutr. 2004;134(3):489–92. Doi: 10.1093/jn/134.3.489.

15. Costa C.M., Santos R.C.C., eLima E.S. A simple automated procedure for thiol measurement in human serum samples. J Bras Patol Med Lab 2006;42:345–50.

16. Tietze F. Enzymic method for quantitative determination of nanogram amounts of total and oxidized glutathione: Applications to mammalian blood and other tissues. Analytical Biochemistry. 1969;27(3):502–22. Doi: 10.1016/0003-2697(69)90064-5.

17. Paglia D.E., Valentine W.N. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J Lab Clin Med. 1967;70(1):158–69.

18. Habig W.H., Pabst M.J., Jakoby W.B. Glutathione S-transferases. The first enzymatic step in mercapturic acid formation. J Biol Chem. 1974;249(22):7130-9.

19. Boggaram V., Larson K.&Mannervik B. Characterization of glutathione reductase from porcine erythrocytes. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Enzymology. 1978;527(2):337–37. Doi:10.1016/0005-2744(78)90348-0.

20. Dharmaraja A.T. Role of Reactive Oxygen Species (ROS) in Therapeutics and Drug Resistance in Cancer and Bacteria. J Med Chem. 2017;60(8):3221–40. Doi: 10.1021/acs.jmedchem.6b01243.

21. Разыграев А.В., Матросова М.О., Титович И.А. Роль глутатионпероксидаз в ткани эндометрия: факты, гипотезы, перспективы изучения. Журнал акушерства и женских болезней. 2017;66(2):104–11.

22. Калинина Е.В. Роль глутатиона, глутатион трансферазы и глутаредоксина в регуляции редокс-зависимых процесов. Успехи биологической химии. 2014;54:299–348.

23. Deponte M. Glutathione catalysis and the reaction mechanisms of glutathione-dependent enzymes. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – General Subjects. 2013;1830(5):3217–66. Doi: 10.1016/j.bbagen.2012.09.018.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Егор Константинович Румянцев, младший науч. сотр., Арктического медицинского центра, Якутский научный центр комплексных медицинских проблем, Якутск, Россия; Tzeentch1993@mail.ru; eLibrary SPIN: 1081-6314 

ORCID:
Е.К. Румянцев (E.K. Rumyantsev), https://orcid.org/0000-0001-9843-3098
Н.М. Краснова (N.M. Krasnova), https://orcid.org/0000-0002-4811-7801
В.М. Николаев (V.M. Nikolaev), https://orcid.org/0000-0003-4490-8910
Е.С. Прокопьев (E.S. Prokopiev), https://orcid.org/0000-0001-7489-9221
М.П. Кириллина (M.P. Kirillina), https://orcid.org/0000-0002-8629-1296
Д.А. Сычев (D.A. Sychev), https://orcid.org/0000-0002-4496-3680

Также по теме