ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Современные подходы к лечению и профилактике грибковой инфекции мочевых путей

Стуров Н.В., Попов С.В., Шмельков И.Ю.

Кафедра общей врачебной практики Медицинского института РУДН, Москва, Россия
Исследования, проведенные за последние годы, демонстрируют увеличение частоты грибковой инфекции мочевых путей (ИМП). Наиболее распространенными возбудителями грибковой ИМП являются представители рода Candida. Противогрибковая терапия показана при выявлении грибов в моче пациентов с симптомами ИМП, иммунокомпрометированных больных, новорожденных с низкой массой тела, а также перед урологическими оперативными вмешательствами. Для лечения кандидоза мочевых путей рекомендуется применение препаратов группы триазолов, амфотерицина B и флуцитозина. Наиболее распространенным препаратом лечения грибковой инфекции мочевых путей является флуконазол. В отличие от других азолов флуконазол доступен для перорального приема, растворим в воде, до 80% препарата выводится почками в неизменном виде, создавая эффективную концентрацию в моче. Частота чувствительных к флуконазолу штаммов возбудителей грибковой ИМП постепенно снижается. Терапию грибковой ИМП рекомендовано проводить флуконазолом в течение 7–14 дней. Профилактика грибковой ИМП в большинстве случаев не требует лекарственной терапии. В основе мероприятий по предотвращению развития грибковой ИМП лежит коррекция факторов риска развития данного заболевания: своевременное удаление или замена мочевого дренажа, прекращение антибактериальной терапии и восстановление пассажа мочи по мочевым путям.

Ключевые слова

Candida
грибковая инфекция
мочевые пути
флуконазол

Введение

В последние годы причиной инфекций различных локализаций все чаще становятся условно-патогенные возбудители [1]. Частота инфекций зависит от состояния иммунного статуса, возраста, пола и тяжести сопутствующих заболеваний [1, 2]. В этиологической структуре инфекций возрастает роль грибковых возбудителей [3, 4].

Грибы Candida занимают 3-е место в мире по частоте выявлений среди инфекций различных локализаций, связанных с оказанием медицинской помощи [5]. Пять представителей: Candida albicans, Candida parapsilosis, Candida tropicalis, Candida krusei и Candida glabrata вызывают 95–97% инвазивных грибковых инфекций всех локализаций [6].

Инфекция мочевых путей (ИМП) – наиболее частый вариант нозокомиальной инфекции [6, 7]. Исследования, проведенные за последние годы, выявили увеличение частоты грибковой ИМП. В масштабном европейском исследовании с 2008 по 2017 г. продемонстрировано увеличение доли грибковых возбудителей при микробиологическом исследовании мочи с 0,11 до 0,75% у амбулаторных и с 5,01 до 10,63% у госпитализированных пациентов [8].

Наиболее часто появление грибов в моче связано с контаминацией, колонизацией или ИМП, однако в части случаев эти микроорганизмы могут вызывать и диссеминированный грибковый процесс [8, 9]. Наличие Candida в моче (кандидурия) не всегда сопровождается клиническими проявлениями ИМП и может быть связано с колонизацией мочевых путей по дренажу [10–13]. В этиологической структуре катетер-ассоциированной ИМП у пациентов отделений интенсивной терапии грибы Candida составляют 27–40% и занимают одно из ведущих мест среди всех возбудителей, а у амбулаторных пациентов их доля достигает 5% [10, 13, 14].

Противогрибковая терапия показана при выявлении грибов в моче пациентов: с симптомами ИМП, у иммунокомпрометированных больных, новорожденных с низкой массой тела, а также перед урологическими оперативными вмешательствами [8, 15–17]. Проведение противогрибковой терапии при фунгурии перед урологическими вмешательствами позволяет снижать риск развития инвазивной грибковой инфекции, ассоциированной с высокой летальностью и длительными сроками стационарного лечения [8].

Лечение грибковой ИМП

Обнаружение грибов в моче не всегда требует назначения противогрибковых препаратов. При бессимптомной кандидурии противогрибковая терапия должна проводиться при ее сохранении после удаления или замены мочевого дренажа и наличия предрасполагающих факторов развития инвазивного кандидоза [4, 6, 10, 12, 16, 18–21]. Противогрибковая терапия бессимптомной кандидурии в отсутствие факторов риска инвазивного кандидоза имеет кратковременный эффект и способствует селекции резистентных штаммов Candida spp. [18, 19].

У пациентов с симптомами ИМП и кандидурией на фоне антибактериальной терапии без мочевого дренажа прекращение такого лечения часто не приводит к самопроизвольному исчезновению кандидурии и определяет необходимость назначения противогрибковой терапии [4, 18].

Проведение противогрибковой терапии показано пациентам с бессимптомной кандидурией и с риском развития инвазивного кандидоза: после абдоминальных хирургических вмешательств или трансплантации почки, при нейтропении, тяжелом течении сахарного диабета, при распространенных глубоких ожогах, тяжелой травме, до и после урологических операций и у новорожденных с низкой массой тела [6, 12, 19, 20]. Кроме того, длительная бессимптомная кандидурия определяет необходимость исключения гематогенного почечного кандидоза и дальнейшего обследования пациентов с нейтропенией [4, 12, 18].

Для лечения кандидоза мочевых путей или диссеминированного кандидоза рекомендуется применение препаратов группы триазолов, амфотерицина B и флуцитозина [21]. Многие штаммы грибов обладают природной или приобретенной устойчивостью к противогрибковым препаратам. Например, для штамма Candida tropicalis, выделенного из мочевых путей, уровень резистентности к флуконазолу достигает 50% [22]. В настоящее время считается, что резистентность к азольным препаратам может быть результатом изменений в целевом энзиме – стерол 14α-деметилазе либо сверхэкспрессии, либо в точечных мутациях гена ERG11 [23].

Некоторые представители Aspergillus и Trichosporon asahii устойчивы к амфотерицину В, а большинство представителей зигомицет устойчивы к флуконазолу, итраконазолу и вориконазолу [19]. Проведение точной идентификации грибкового возбудителя ИМП необходимо для успешной терапии грибковой ИМП [4, 19].

Флуконазол – препарат выбора в лечении кандидоза мочевых путей [3, 19, 24, 25]. В отличие от других азолов флуконазол растворим в воде, до 80% препарата выводится почками в неизменном виде, создавая эффективную концентрацию в моче [26]. Флуконазол не активен в отношении Aspergillus spp., однако обладает широким спектром активности и эффективен в отношении наиболее частых возбудителей кандидоза [4, 6, 12, 18, 19]. Известно, что C. albicans и более 55% других представителей этого рода обладают чувствительностью к флуконазолу [19, 23, 25, 27]. У C. glabrata часто определяется дозозависимый эффект при его применении, а C. krusei резистентна к флуконазолу [4, 18, 19, 28].

Чувствительность штаммов Candida к флуконазолу показана в табл. 1, 2 соответственно.

28-1.jpg (180 KB)

Приведенные данные отражают снижение числа штаммов Candida, отличных от С. albicans, чувствительных к флуконазолу. Это может быть связано с широким и нерациональным применением данного препарата в медицинской практике [28, 31].

Флуконазол обладает длительным периодом полувыведения (более 24 часов) и высокой биодоступностью при приеме внутрь (>90%). Препарат увеличивает проницаемость клеточной мембраны и нарушает ее рост. Это происходит в результате блокировки превращения ланостерола клеток грибов в эргостерол. Флуконазол обладает низкой гепатотоксичностью, т.к. высокоспецифичен для изоферментов цитохрома P-450 грибов и в меньшей степени угнетает их в организме человека. Флуконазол увеличивает период полувыведения пероральных гипогликемических препаратов. Также флуконазол не обладает антиандрогенной активностью [26]. При условии коррекции дозы применение флуконазола возможно больными почечной недостаточностью [26].

В России Национальные рекомендации по диагностике и лечению грибковых инфекций в отделениях реанимации и интенсивной терапии, опубликованные в 2015 г., определяют длительность терапии флуконазолом при грибковой ИМП в течение 7–14 дней в дозе 3 мг/кг/сут. [18]. При диссеминированном кандидозе и кандидозе верхних мочевых путей доза препарата должна составлять 5–10 мг/кг/сут. При системном кандидозе показана длительная терапия продолжительностью до 4–6 недель [4, 6, 18].

Согласно практическим рекомендациям общества инфекционных болезней США (IDSA) по лечению кандидоза мочевых путей от 2016 г., терапию кандидозного цистита препаратом флуконазол рекомендовано проводить в течение 14 дней [17]. Масштабное исследование эффективности флуконазола при бессимптомной кандидурии в течение 14 дней показало его почти 100%-ную эффективность в краткосрочной перспективе [24]. При этом целесообразность назначения флуконазола при бессимптомной кандидурии остается сомнительной [12, 16, 19].

Флуцитозин (не зарегистрирован в РФ) – пероральный противогрибковый препарат, нарушающий синтез ДНК грибов путем взаимодействия с м-РНК. Препарат хорошо растворим в воде и создает высокие концентрации в моче, однако отличается ограниченным спектром активности, включающим Candida и Criptococcus spp. Флуцитозин – эффективный противогрибковый препарат для лечения кандидоза мочевых путей, вызванного грибами, отличными от C. albicans [3, 19, 32]. Применение флуцитозина ограничено в связи с высокой частотой выраженных побочных эффектов, таких как нейрои миелотоксичность. Препарат флуцитозин при грибковой ИМП рекомендуется принимать в дозе 25 мг/кг 4 раза в сутки, однако при его применении часто происходит формирование резистентных штаммов у Candida. Применение флуцитозина противопоказано при почечной недостаточности [18, 19]. В большинстве случаев грибковой инфекции рекомендуется использование флуцитозина не в качестве монотерапии, а в комбинации с других противогрибковым препаратом, например с амфотерицином В [32].

Амфотерицин В – противогрибковый препарат группы полиеновых антибиотиков. Амфотерицин В связывается с эргостеролом клеточной стенки грибов, что приводит к их гибели. К амфотерицину В чувствительно большинство возбудителей микозов, в т.ч. Candida spp., Aspergillus spp., Candida neoformans и др. Чувствительность штаммов Candida к амфотерицину В достигает 100% [28, 33, 34]. К амфотерицину В устойчивы Candida lusitaniae, Aspergillus terreus, Aspergillus nidulans и Aspergillus conicus, Trichosporon spp. Применение данного препарата ограничено в связи с его высокой токсичностью, отсутствием пероральной формы и низкой концентрацией в моче при внутривенном введении [11, 19].

При почечной недостаточности эффективная концентрация амфотерицина В в моче снижается. Из-за высокой токсичности и парентерального способа введения системная терапия амфотерицином В показана только при тяжелых инфекциях, вызванных резистентными к флуконазолу возбудителями (например, C. krusei), у пациентов без почечной недостаточности [19].

Амфотерицин B применяют в течение 1–7 дней в виде внутривенных инфузий в дозе от 0,3 до 1,0 мг/кг/сут [18, 19, 32]. Существуют липосомальные формы амфотерицина В, которые используют при тяжелых инфекциях, обусловленных резистентными к флуконазолу возбудителями и при наличии почечной недостаточности или других противопоказаний к амфотерицину В, однако эффективность данной формы при лечении ИМП очень низкая [18, 19].

Амфотерицин В может быть введен внутрипузырно при кандидозном цистите [3, 19]. Однако результаты сравнительного исследования пероральной терапии флуконазолом и внутрипузырного введения амфотерицина B выявили равнозначную их эффективность [35]. Рекомендации по тактике лечения различных форм кандидоза мочевых путей представлены в табл. 3. К альтернативным препаратам при лечении грибковой ИМП можно отнести вориконазол группы триазолов и каспофунгин, микафунгин, анидулафунгин группы эхинокандинов, нитроксолин – производное 8-оксихинолина.

29-1.jpg (158 KB)

Вориконазол – противогрибковый препарат второго поколения триазолов, в отличие от флуконазола он обладает более широким спектром противогрибковой активности. Существуют внутривенные и пероральные формы вориконазола. В отношении большей части плесневых грибов вориконазол действует фунгицидно, а против дрожжевых – фунгистатически [37].

Вориконазол отличается высокой активностью в отношении Candida spp., в т.ч. резистентных к флуконазолу C. krusei и C. glabrata [19]. In vitro вориконазол обладает высокой активностью и в отношении других возбудителей микозов, например Cryptococcus neoformans и Trichosporon asahii. Вориконазол проявляет высокую активность в отношении Aspergillus spp., в т.ч. резистентных к амфотерицину В A. terreus и A. nidulans. В отношении ряда представителей Aspergillus, в т.ч. A. fumigatus и A. flavus, вориконазол действует фунгицидно. При этом препарат активен в отношении штаммов A. fumigatus, резистентных к итраконазолу [19, 37]. Метаболизируется данный препарат в печени, менее 2% препарата выводится с мочой в неизменном виде. Низкая концентрация препарата в моче не позволяет использовать его в качестве средства лечения грибковой ИМП, однако применение вориконазола оправданно в случаях грибкового поражения почек и при диссеминированном кандидозе [19, 37].

Каспофунгин – препарат, относящийся к группе эхинокандинов. Механизм действия заключается в блокаде синтеза 1,3-β-D-глюкана – важного структурного и функционального компонента клеточной стенки грибов. Так как 1,3-β-D-глюкан отсутствует в организме человека, прием эхинокандинов сопровождается минимальным числом побочных эффектов. Спектр активности эхинокандинов включает Aspergillus spp. (в т.ч. резистентных к амфотерицину В), Candida spp. (включая резистентные к флуконазолу и итраконазолу) [6, 19].

В отношении всех представителей рода Candida, в т.ч. резистентных (C. krusei) и со сниженной чувствительностью (C. glabrata) к азолам или резистентных к амфотерицину В (C. lusitaniae), каспофунгин проявляет высокую фунгицидную активность [6, 19].

Каспофунгин применяется только в виде внутривенных инфузий. Препарат растворим в воде. Отличается высокой (97%) связью с белками. Создает высокие концентрации в почках, печени, селезенке и легких. Каспофунгин метаболизируется в печени, метаболизм неокислительный, не связанный с изоферментами цитохрома Р-450, модификации дозы при почечной недостаточности не требуется. Время полувыведения – 9–11 часов [6, 19]. Отличительной особенностью каспофунгина является его безопасность даже при продолжительном применении. Исследования показали, что побочные эффекты (лихорадка, тошнота, рвота, флебит) отмечают у менее 3% больных, что в большинстве случаев не требует снижения дозы или отмены препарата [6, 19].

Основные показания к применению каспофунгина: инвазивный аспергиллез у пациентов, резистентных к стандартной терапии или не переносящих ее, и инвазивный кандидоз (включая кандидемию) у пациентов с нейтропенией и без нее [6, 19]. Сравнение эффективности и безопасности каспофунгина и флуконазола при лечении кандидемии не выявило преимуществ одного препарата перед другим [38].

Микафунгин – еще один представитель эхинокандинов. Препарат вводится в/в в дозе 100 мг/сут. в течение 10 дней, и хотя лишь 11% выводится в неизменном виде с мочой, по данным S. Gabardi et al., микафунгин показал эффективность более 75% у пациентов с кандидозом мочевых путей [39].

Препараты вориконазол, каспофунгин и микафунгин обладают широким спектром действия и относительно низким уровнем возникновения побочных эффектов. Они с успехом применяются в терапии инвазивного кандидоза и аспергиллеза или как альтернативные препараты в терапии почечного кандидоза. Однако они не создают высоких концентраций в моче, что ограничивает их применение при грибковой ИМП [3, 6, 19, 40]. Проблема увеличения частоты резистентных к флуконазолу штаммов грибов Candida может быть решена с помощью комбинированной терапии с другими противомикробными препаратами. Так, исследование E. Edward et al. выявило преодоление резистентности штаммов Candida к флуконазолу при одновременном применении данного препарата с амикацином пациентами с кандидозом мочевых путей [41]. Каспофунгин может быть эффективным в виде инстилляций мочевых путей в сочетании с пероральной терапией флуцитозином пациентов с кандидозом почки и резистентностью возбудителя к флуконазолу [40].

Нитроксолин – производное 8-оксихинолина, селективно ингибирует синтез микробной ДНК, образует комплексы с металлосодержащими ферментами микробной клетки, вызывает бактериостатический эффект. В 2017 г. H. Hof предоставил данные исследования, показавшего высокую in vitro эффективность нитроксолина в отношении различных штаммов грибов Candida. Высокая антимикотическая активность нитроксолина была продемонстрирована в т.ч. в отношении грибковых биопленок [42].

Во всех случаях абсцесса простаты, вызванного грибковой флорой, необходимо проводить этиотропную противогрибковую терапию длительностью не менее 14 дней в сочетании c трансуретральной резекцией предстательной железы [9]. Чрескожная пункция и дренирование абсцесса неэффективны [9].

Лечение криптококкурии независимо от наличия или отсутствия симптомов требует системной противогрибковой терапии в виде флуконазола в дозе 5–10 мг/кг/сут или внутривенного амфотерицина В в дозе 0,7 мг/ кг/сут. При обнаружении криптококков в крови пациентов без поражения центральной нервной системы или положительного титра криптококкового антигена >1:8, или при симптомах поражения мочевых путей длительность терапии флуконазолом должна составлять 3–6 месяцев. При признаках мочевой инфекции и криптококкурии у ВИЧ-инфицированных пациентов флуконазол назначают в дозе 200–400 мг/сут. При этом всем ВИЧинфицированным больным рекомендуется пожизненная антифунгальная терапия [19, 43].

При аспергиллезе с внелегочными поражениями необходима специфическая противогрибковая терапия. При папиллярном некрозе и пиелонефрите, вызванном аспергиллами, может формироваться участок очаговой инфекции с распадом ткани – аспергиллема. При обнаружении аспергиллемы показано хирургическое лечение в сочетании с системной противогрибковой терапией [44]. Оправданно назначение амфотерицина В в дозе 1,0–1,5 мг/кг/сут, также возможно применение назначения липосомальных форм амфотерицина В в дозе 3–5 мг/кг/сут с повышением дозы до 6 мг/кг/сут. Возможно назначение итраконазола 400–600 мг/сут, 4 дня, затем 200 мг дважды в сутки. Длительность курса терапии окончательно не определена и зависит от времени исчезновения признаков инфекции Aspergillus spp. [44].

В настоящее время ведутся перспективные разработки новых противогрибковых препаратов с новыми белковыми мишенями у Candida, однако арсенал антимикотиков все еще остается ограниченным.

Профилактика грибковой ИМП

В основу профилактики грибковой ИМП входит соблюдение мер асептики и антисептики пациентами с мочевым дренажем. Внедрение рекомендаций по ведению пациентов с мочевым дренажем в отделениях интенсивной терапии позволяет снижать риск грибковой ИМП на 22–83%. К профилактическим мероприятиям относят антисептическую обработку рук медицинских работников, туалет наружных половых органов и промежности перед установкой дренажа, антисептическое соединение дренажа и мочеприемника, соблюдение правил фиксации мочевого мешка ниже уровня мочевого пузыря, недопущение переполнения мочеприемника более чем на 80%, по возможности раннее удаление мочевого дренажа [31]. Следует отметить, что обработка катетера и промежности антисептиком перед установкой не приводит к снижению частоты возникновения грибковой инфекции, при этом достаточно только соблюдения стерильных условий установки дренажа [45].

Масштабное исследование, проведенное в 43 госпиталях США, показало высокую эффективность универсальной деколонизации для предотвращения ИМП, вызванной бактериями и грибами кандида у пациентов мужского пола в блоках интенсивной терапии [46]. Проведение ежедневной обработки наружных половых органов и проксимального участка мочевого катетера (24 см) 2%-ным раствором хлоргексидина совместно с коротким курсом мупироцина интраназально позволило значимо снижать риск нозокомиальной бактериальной и грибковой ИМП [46].

Для предотвращения образования биопленки многие годы изучается возможность покрытия мочевых катетеров ионами серебра, антисептиками и антимикробными препаратами, однако в большинстве случаев это приводит к токсическому повреждению клеток мочевых путей или селекции резистентных штаммов грибов [7]. Существуют перспективные разработки включения на поверхность мочевых дренажей β-пептида, естественного, не токсичного агента, препятствующего образованию биопленок C. albicans [7]. Также получены данные о высокой эффективности фитохимических препаратов, таких как Plumbago, при нанесении их на поверхность дренажа для предотвращения инфицирования C. albicans и образования биопленок [47]. Исследование in vitro эффективности экстракта клюквы для предотвращения формирования биопленок на поверхности мочевого катетера определило достоверное изменение в адгезии и метаболизме железа у штаммов C. albicans [48]. Применение оксида цинка также продемонстрировало снижение адгезивной способности грибов Candida и уменьшение образования биопленок [49]. С 2016 г. проходят исследования мочевых катетеров, позволяющих по требованию менять геометрию поверхности с механическим разрушением биопленок, что повышает эффективность противогрибковых препаратов in vitro на 90% [29].

Оправдано профилактическое назначение противогрибковых препаратов больным, находящимся в отделениях реанимации и интенсивной терапии 6 и более суток [31].

Таким образом, профилактика грибковой ИМП в большинстве случаев не требует назначения лекарственной терапии. В основе мероприятий по предотвращению развития грибковой ИМП лежит коррекция факторов риска развития данного заболевания: своевременное удаление или замена мочевого дренажа, прекращение антибактериальной терапии и восстановление пассажа мочи по мочевым путям [31].

Заключение

В настоящее время вопросы оптимизации лечения и профилактики грибковой ИМП становятся более актуальными. Это связано с повышением частоты выявления данного заболевания и ростом резистентности возбудителей грибковой ИМП к флуконазолу. Назначение противогрибковой терапии показано во всех случаях обнаружения в моче грибковых возбудителей, отличных от Candida, перед урологическими инструментальными вмешательствами, а также при кандидурии, сопровождающейся симптомами ИМП или при наличии нескольких факторов риска развития инвазивного кандидоза. Флуконазол – препарат выбора для лечения грибковой ИМП.

Своевременное удаление или замена мочевого дренажа, прекращение антибактериальной терапии, восстановление оттока мочи по мочевым путям служат основными мероприятиями для профилактики грибковой ИМП.

Список литературы

1. Rishpana M., Kabbin J. Candiduria in Catheter Associated Urinary Tract Infection with Special Reference to Biofilm Production. J Clin Diagnost Res. 2015;9(10):DC11–3. Doi: 10.7860/ JCDR/2015/13910.6690.

2. Sohail M., Khurshid M., Saleem H., et al. Characteristics and Antibiotic Resistance of Urinary Tract Pathogens Isolated From Punjab, Pakistan. Jundish. J Microbiol. 2015;8(7):e19272. Doi: 10.5812/jjm.19272v2.

3. Alfouzan W.A. Candiduria: Evidence-based approach to management, are we there yet? J Mycol Med. 2017;27(3):293–302. Doi: 10.1016/j.mycmed.2017.04.005.

4. Gharanfoli A., Mahmoudi E., Torabizadeh R., et al. Isolation, characterization, and molecular identification of Candida species from urinary tract infections. Curr Med Mycol. 2019;5(2):33–6. Doi: 10.18502/cmm.5.2.1159.

5. Suzuki M., Hiramatsu M., Fukazawa M., et al. Effect of SGLT2 inhibitors in a murine model of urinary tract infection with Candida albicans. Diab Obes Metab. 2014;16(7):622–27. Doi: 10.1111/dom.12259.

6. Peman A. Ruiz-Gaitan Candidemia from urinary tract source: the challenge of candiduria. Hospital Pract. 2018;46(5):243–45. Doi: 10.1080/21548331.2018.1538623.

7. Raman N., Lee M., Rodriguez Lopez A., et al. Antifungal Activity of a β-Peptide in Synthetic Urine Media: Toward Materials-Based Approaches to Reducing Catheter-Associated Urinary Tract Fungal Infections. Acta Biomater. 2016;43:240– 50. Doi: 10.1016/j.actbio.2016.07.016.

8. Gajdacs M., Doczi I., Abrok M., et al. Epidemiology of candiduria and Candida urinary tract infections in inpatients and outpatients: results from a 10-year retrospective survey. Cent Eur J Urol. 2019;72:209–14. Doi: 10.5173/ ceju.2019.1909.

9. Li Z., Wen J., Zhang N., et al. Emphysematous prostatic abscess due to candidiasis: A case report and review of the literature. Med. 2020;99(9): e19391. Doi: 10.1097/ MD.0000000000019391.

10. Behzadi P., Behzadi E., Ranjbar P. Urinary tract infections and Candida albicans. Cent Eur J Urol. 2015;68:96–101. Doi: 10.5173/ ceju.2015.01.474.

11. Datta P., Kaur M., Chander J. Epidemiology and Antifungal Susceptibility of Candida Species Isolated from Urinary Tract Infections: A Study from an Intensive Care Unit of a Tertiary Care Hospital. Indian J Crit Care Med. 2018;22(1):56– 7. Doi: 10.4103/ijccm.IJCCM_130_17.

12. Odabasi Z., Mert A. Candida urinary tract infections in adults. W J Urol. 2020;38(11):2699–707. Doi: 10.1007/s00345-019-02991-5.

13. Toner L., Papa N., Aliyu S., et al. Candida growth in urine cultures: a contemporary analysis of species and antifungal susceptibility profiles. An Int J Med. 2016;10:325–29. Doi: 10.1093/qjmed/ hcv202.

14. Ozer T., Durmaz S., Yula Ozer E. Antifungal susceptibilities of Candida species isolated from urine culture. J Infect Chemother. 2016;9:629– 32. Doi: 10.1016/j.jiac.2016.06.012.

15. Benjamin M.D., Jolivet E., Desbois N., et al. Fungal colonization in preterm neonates weighing less than 1500g admitted to the neonatal intensive care unit. Arch Pediatr. 2016;23(9):887–94. Doi: 10.1016/j.arcped.2016.05.018.

16. Jacobs D., Dilworth T., Beyda N., et al. Overtreatment of Asymptomatic Candiduria among Hospitalized Patients: a Multi-institutional Study. Antimicrob. Agent. Chemother. 2017;62(1):e01464–17. Doi: 10.1128/ AAC.01464-17.

17. Pappas P., Kauffman C., Andes D., et al. Clinical Practice Guidelines for the Management of Candidiasis: 2016 Update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Inf Dis. 2016;62:e1–50. Doi: 10.1093/cid/civ933.

18. Климко Н.Н. Диагностика и лечение микозов в отделениях реанимации и интенсивной терапии: Российские рекомендации. М., 2015. 96 с.

19. Fisher J., Sobel J., Kauffman C., et al. Candida Urinary Tract Infections – Treatment. Clin Inect Dis. 2011;52(6):S457–66. Doi: 10.1093/cid/ cir112.

20. Sutcu M., Acar M., Genc G., et al. Evaluation of Candida species and antifungal susceptibilities among children with invasive candidiasis. Turk Pediatri Ars. 2017;52:145–53. Doi: 10.5152/ TurkPediatriArs.2017.5291.

21. Gubbins P.O., McConnell S.A., Penzak S.R. Current management of funguria. Am J Health-Syst Pharm. 1999;56:1929–35.

22. Wang Q., Li C., Tang D., et al. Molecular epidemiology of Candida tropicalis isolated from urogenital tract infections. Microbiologyopen. 2020;9:e1121. Doi: 10.1002/mbo3.1121.

23. Wu Y., Wu M., Wang Y., et al. ERG11couples oxidative stress adaptation, hyphalelongation and virulence in Candida albicans. FEMS Yeast Res. 2018;18(7):1–7. Doi: 10.1093/femsyr/foy057.

24. Chaari A., Ismail M., Abdel Hakim K., et al. Effectiveness of Systemic Fluconazole in Adult Patients With Asymptomatic Candiduria: A Systematic Review and Meta-Analysis. Am J Ther. 2017;24(6):e758–62. Doi: 10.1097/ MJT.0000000000000403.

25. Ding R., Li X., Zhang X., et al. The Epidemiology of Symptomatic Catheter-associated Urinary Tract Infections in the Intensive Care Unit: A 4-year Single Center Retrospective Study. Miscellaneous. 2019;16(03):312–17. Doi: 10.22037/ uj.v0i0.4256.

26. FDA Approved Drug Products Diflucan (fluconazole)

27. Cho-Han C., Sung-Ching P., Tyan-Shin Y., et al. Healthcare-associated infections in intensive care units in Taiwan, South Korea, and Japan: recent trends based on national surveillance reports. Antimicrob Resist Inf Control. 2018;7:129. Doi: 10.1186/s13756-018-0422-1.

28. Lima G., Nunes M., Chang M., et al. Identification and antifungal susceptibility of Candida species isolated from the urine of patients in a university hospital in Brazil. Rev Inst Med Trop S o Paulo. 2017;59:e75–83. Doi: 10.1590/S1678- 9946201759075.

29. Maskarineca S., Parlakb Z., Tub Q., et al. On-demand release of Candida albicans biofilms from urinary catheters by mechanical surface deformation. Biofouling. 2018;34(6):595–604. Doi: 10.1080/08927014.2018.1474461.

30. Веселов А.В. In vitro активность флуконазола и вориконазола в отношении более 10000 штаммов дрожжей: результаты 5-летнего проспективного исследования ARTEMIS Disk в России. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2008;4:345–54.

31. Lai C., Lee C., Chiang H., et al. Implementation of a national bundle care program to reduce catheter- associated urinary tract infection in high-risk units of hospitals in Taiwan. J Microbiol. Immunol Infect. 2017;50:464–70. Doi: 10.1016/j. jmii.2017.01.006.

32. Padda I., Parmar M. Flucytosine. StatPearls. 2020; URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/ NBK557607.

33. Liu Y., Xiao D., Xiao-hui S. Urinary tract infection control in intensive care patients. Med. 2018;97:38–40. Doi: 10.1097/ MD.0000000000012195.

34. Van Dijck P., Sjollema J., Cammue B. Methodologies for in vitro and in vivo evaluation of efficacy of antifungal and antibiofilm agents and surface coatings against fungal biofilms. Microbial. Cell. 2018;5(7):300–26. Doi: 10.15698/ mic2018.07.638.

35. Sullivan K., Caylor M., Lin F., et al. Comparison of AmphotericinBBladderIrrigationsVersusFluconazole for the Treatment of Candiduria in Intensive Care Unit Patients.. Pharm Pract. 2017;30(3):347–52. Doi: 10.1177/0897190016645032.

36. Lundstrom T., Sobel J. Nosocomial Candiduria: A Review. Clin Infect Dis. 2001;32:1602–7. Doi: 10.1086/320531.

37. Караев З.О. Нозокомиальные микозы: состояние и перспективы решения проблемы. Проблемы медицинской микологии. 2007;9:21–3.

38. Cuervo G., Garcia-Vidal C., Puig-Asensio M., et al. Echinocandins Compared to Fluconazole for Candidemia of a Urinary Tract Source: A Propensity Score Analysis. Clin Infect Dis. 2017;64(10):1374–79. Doi: 10.1093/cid/ cix033.

39. Gabardi S., Martin S., Sura M., et al. Micafungin treatment and eradication of candiduri0a among hospitalized patients. Int Urol Nephrol. 2016;48(11):1881–85. Doi: 10.1007/s11255-016-1410-0.

40. Garcia H., Guitard J., Peltier J., et al. Caspofungin irrigation through percutaneous calicostomy catheter combined with oral flucytosine to treat fluconazole-resistant symptomatic candiduria. J Mycol Med. 2015;25(1):87–90. Doi: 10.1016/j. mycmed.2014.12.003.

41. Edward E.A., Mohamed N.M., Zakaria A.S. Resensitization of Fluconazole-Resistant Urinary Candida spp. Isolates by Amikacin through Downregulation of Efflux Pump. Gen. Polish J Microbiol. 2020;69(1):73–84. Doi: 10.33073/ pjm-2020-010.

42. Hof H. Candiduria! What now? Therapy of urinary tract infections with Candida. Urol. 2017;56(2):172–79. Doi: 10.1007/s00120- 016-0219-x.

43. Saag M., Graybill R., Larsen R., et al. IDSA practice guidelines for the management of cryptococcal disease. Clin Inf Dis. 2000;30:710–18. Doi: 10.1086/313757.

44. Pouladfar G., Jafarpour Z., Firoozifar M., et al. Urinary Tract Infections Among Hospitalized Adults in the Early Post-Liver Transplant Period: Prevalence, Risk Factors, Causative Agents, and Microbial Susceptibility. Exp Clin Transplantat. 2017;15(1):190–93. Doi: 10.6002/ect. mesot2016.P68.

45. Rahimkhani M., Saberian M., Mordadi A., et al. Urinary Tract Infection with Candida glabrata in a Patient with Spinal Cord Injury. Acta Med Iranica. 2015;53(8):516–17.

46. Huang S., Septimus E., Hayden M., et al. Effect of body surface decolonisation on bacteriuria and candiduria in intensive care units: an analysis of a cluster-randomised trial

47. Nair S., Baranwal G., Chatterjee M., et al. Antimicrobial activity of plumbagin, a naturally occurring naphthoquinone from Plumbago rosea, against Staphylococcus aureus and Candida albicans. Int J Microbiol. 2016;4:237–48. Doi: 10.1016/j.ijmm.2016.05.004.

48. Sundararajan A., Rane H., Ramaraj T., et al. Cranberry-derived proanthocyanidins induce a differential transcriptomic response within Candida albicans urinary biofilms. PLoS ONE. 2018;13(8):e0201969. Doi: 10.1371/journal. pone.0201969.

49. Hosseini S., Ghaemi E., Noroozi A., et al. Zinc Oxide Nanoparticles Inhibition of Initial Adhesion and ALS1 and ALS3 Gene Expression in Candida albicans Strains from Urinary Tract Infections. Mycopathol. 2019;184(2):261–71. Doi: 10.1007/s11046-019-00327-w.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Сергей Витальевич Попов, д.м.н., профессор кафедры общей врачебной практики, Медицинский институт РУДН, Москва, Россия; popov-serv@rudn.ru">href="mailto:popov-serv@rudn.ru">popov-serv@rudn.ru

ORCID:
Н.В. Стуров (N.V. Sturov), https://orcid.org/0000-0002-3138-8410
С.В. Попов (S.V. Popov), https://orcid.org/0000-0002-0567-4616
И.Ю. Шмельков (I.Yu. Shmelkov), https://orcid.org/0000-0002-7373-7156 

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.